为了理解乙醇诱导的发育损伤的分子机制,我们建立了一种乙醇暴露的斑马鱼模型,并正在探索乙醇暴露后发生的物理、细胞和遗传改变1。随后,我们试图在此动物模型中寻找潜在的干预措施并快速对其进行测试。
方法文章
为了理解乙醇诱导的发育损伤的分子机制,我们建立了一种乙醇暴露的斑马鱼模型,并正在探索乙醇暴露后发生的物理、细胞和遗传改变1。随后,我们试图在此动物模型中寻找潜在的干预措施并快速对其进行测试。
胎儿酒精综合征(FAS)是胚胎期暴露于乙醇所引起的一种严重表现,其特征为面部和器官的典型缺陷,以及因大脑发育紊乱和损伤导致的智力障碍。胎儿酒精谱系障碍(FASD)是一个涵盖性术语,用于描述由母亲孕期饮酒所引发的一系列出生缺陷,在美国约有4%的新生儿受此影响。由于约50%育龄女性报告曾饮酒,且一半以上的妊娠为非计划妊娠,因此乙醇的非故意暴露仍是一个持续存在的问题2。为了更好地理解乙醇造成的损害,并建立可用于测试潜在干预措施的模型,我们开发了一种利用斑马鱼胚胎研究发育期乙醇暴露的模型。斑马鱼非常适合此类致畸物研究3-8。每对斑马鱼可产下数百枚卵,且收集过程不会对成鱼造成伤害。斑马鱼胚胎具有透明特性,可方便地使用多种染色方法进行成像观察。通过对不同剂量、不同暴露时长和施用时间的乙醇处理后胚胎进行分析,发现乙醇引起的整体发育缺陷与人类出生缺陷具有一致性。本文将介绍用于研究和操作斑马鱼FAS模型的基本技术。
1. 胚胎的乙醇处理
2. 用于RNA提取的胚胎收集 原位 杂交、抗体与软骨染色
3. 评估乙醇诱导的基因表达变化及发育影响
| (实验基因扩增效率)(对照样本Ct值 - 处理样本Ct值) |
| ------------------------------------------------------------------------------------- |
| (参照基因扩增效率)(对照样本Ct值 - 处理样本Ct值) |
4. 斑马鱼胚胎的操作
5. 代表性结果
斑马鱼胚胎暴露于乙醇会导致多种发育和遗传缺陷,这些缺陷与其他脊椎动物中观察到的表型相关。我们已记录到轴向组织的异常发育,包括脊索(数据未显示14)。乙醇引起的发育延迟显然会破坏脊索的正常伸长过程,导致脊索变短且偶尔出现断裂(数据未显示14)。这种早期的发育延迟及脊索缺陷可能部分导致了体节后续出现的异常(图2),表现为体节失去了未处理对照组中明显的V形结构,而更接近于声波信号通路减弱时所典型的U形体节表型14。体节的角度可通过标准软件进行测量,未处理对照组胚胎的体节角度为92.1 ± 4.6°,而乙醇处理组则升高至122.6 ± 6.6°(p < 0.001)。
乙醇暴露的另一个后果可能是早期发育延迟以及后期脊索缺陷的下游效应,即胚胎体长缩短(图3)。即使在测量时已校正乙醇暴露引起的胚胎弯曲,乙醇暴露仍会导致躯干缩短,且缩短程度依赖于胚胎所暴露的乙醇剂量(图3E14)。这一发现与在发育期间暴露于乙醇的儿童中观察到的青春期前身材矮小持续存在的现象相似16, 17,提示斑马鱼模型对于理解人类先天性出生缺陷具有相关性。
胎儿酒精综合征(FAS)的经典特征之一是典型的面部表型,包括下颌发育不良、眼裂较小以及人中平滑。这些特征大多与中线组织的发育减少有关。动物模型研究表明,严重的乙醇暴露会导致更为显著的表型,包括并眼和独眼畸形。当对斑马鱼胚胎施加较高剂量的乙醇时,其眼内距(IOD)呈剂量依赖性减小(图4),这与人类出生缺陷的特征一致。独眼畸形仅在极高剂量下出现,但较低剂量已能显著减小眼内距(图4),提示该动物模型在面部中线发育方面存在类似的缺陷10。
为了理解乙醇暴露导致机体和面部缺陷的潜在机制,我们试图确定在发育早期发生的基因表达变化,这些变化可能合理地预期会促成后续的发育缺陷。我们通过两种方法实现这一目标:从胚胎中提取 mRNA,可对乙醇处理组胚胎与对照组之间的基因表达水平进行定量评估(图1A)。此外,我们还可进行原位杂交,以观察基因的表达模式,无论其信号是否下降(图1B-G18)。在此示例中,展示了两个在乙醇暴露后表达水平降低的基因:gli1和six3b。当我们检测six3b的原位杂交模式时,确实发现乙醇暴露胚胎中该基因的表达空间范围有所缩小(图1 E-G)。在基因gsc中也观察到类似的表达减少现象(图B-D)。six3b和gsc均在将发育为颅面中线组织的细胞中表达。因此,在8 hpf时这些基因的表达减少与后续观察到的眼间距(IOD)减小结果一致,如图4所示。
一旦鉴定出受乙醇影响的基因,便可采用相应机制来上调或下调这些基因的表达。在此特定示例中,我们展示了2个表达下调的基因(gli1 和 six3b通过qPCR检测。我们选择注射mRNA,以确定逆转这些基因变化是否能够改善结局。在本实验中,不采用注射 gli1,我们选择注射 shh,一种能够增加的配体 gli1 水平。对于 six3b 我们能够注射 six3b 其本身。我们在注射后未发现任何变化 six3b (数据未显示),但通过补充剂能够基本挽救斑马鱼胚胎的严重缺陷 shh 注射(图5).

图1. 乙醇暴露改变了早期发育基因的表达模式和所选发育基因的表达水平。A)8小时受精胚胎(8hpf)的qPCR结果。显示了两个基因的结果: six3b 和 gli1结果显示为三次独立实验的平均值,所示乙醇剂量为2.5%。与对照组相比,两个基因的表达均显著降低(t检验, p < 0.05)。B-G) 原位 8小时受精龄斑马鱼胚胎的杂交。两者 gsc 和 six3b 此时点的模式与对照组相比发生改变。(经Loucks许可修改) 等 2007).

图 2. 经处理的胚胎中体节发育发生改变。在48小时后受精(hpf)时观察体节结构和角度。对照组胚胎(A)中,体节呈V形且角度尖锐。经乙醇暴露的斑马鱼体节则更多呈I形或U形,且角度更钝。(经Loucks和Ahlgren 2009年许可修改)。

图 3. 乙醇处理显著降低斑马鱼的体长。在受精后5天测量未经处理和暴露于乙醇的胚胎长度。所有经处理的胚胎均表现出显著的长度减少(ANOVA, p < 0.001)。B-D. 经1.0%和1.5%乙醇处理的胚胎总长度略有但显著的减少,而经2.0%和2.5%乙醇处理的胚胎则表现出更明显的长度减少。E. 为控制每批卵块的大小差异,将每次实验的对照组胚胎标准化为100,其兄弟胚胎的处理组结果以对照组的百分比表示。(经Loucks和Ahlgren 2009年许可修改)。

图 4. 乙醇暴露导致斑马鱼胚胎眼内距离(iod)减小。A)胚胎的正面观显示正常和眼睛融合的表型。B)在原肠胚形成期间给予不同剂量的乙醇处理3小时,24小时后检测鱼类的iod均出现减小。眼睛融合和独眼畸形仅在测试的最高剂量(2.4%)下观察到。* 表示与对照组相比,iod显著降低。(经Ahlgren, 2004许可修改)。

图 5. shh-NmRNA 注射可挽救乙醇暴露引起的斑马鱼胚胎整体发育缺陷。在单细胞至两细胞期胚胎中注射 100 pg/nl 的 shh-NmRNA,其中一半注射胚胎在 4.3 至 24 hpf 期间接受标准乙醇处理。在 5 dpf 时对胚胎进行分析。经 2.0% 乙醇处理的胚胎表现出尾部背侧弯曲、I 形体节以及包括独眼畸形在内的视眼缺陷。在 76 个注射胚胎中的 71 个(93%)观察到上述表型的挽救。在这些胚胎中,身体呈直线形,体节呈 V 字形,眼睛完全分离。
本文所述方法及展示的结果仅揭示了斑马鱼在研究发育缺陷方面的部分应用潜力。由于其胚胎易于获取、每次产卵数量众多,且实验结果具有高度可重复性,这些脊椎动物非常适用于致畸研究。此外,斑马鱼还可经基因改造以表达荧光分子,作为特定基因或通路的可视化报告系统19。在乙醇相关研究中,所使用的剂量相较于哺乳动物的血液酒精浓度似乎较高;然而,这些数值反映的是水中的乙醇浓度,而非全部乙醇均能进入胚胎体内。
综上所述,上述所描述并详述的方法表明,斑马鱼胚胎在模拟与乙醇暴露相关的人类出生缺陷方面具有重要价值。此外,斑马鱼中发现的基因表达变化已在哺乳动物模型系统中被其他研究者证实20,提示乙醇对发育的影响在脊椎动物中具有保守性。上述许多技术也可用于其他环境或药物损伤,以快速、简便地检测潜在致畸物,并确定参与特定物质致畸作用的潜在机制。
我们没有需要披露的内容。
我们感谢Monte Westerfield、Makoto Kobayashi和Jacek Topczewski惠赠质粒 原位 杂交与 mRNA 显微注射。我们感谢 Steph Erhard 出现在视频中。我们还要感谢 William Goossens 在视频所示共聚焦显微镜实验中的协助。Tyler Schwend 提供了视频中使用的图像,Rodney Dale 协助了视频的准备工作。我们同时感谢 CMRC 动物护理团队在斑马鱼饲养管理方面的工作。本研究由 NIH 基金 R21 AA13596 资助,项目负责人为 SCA。
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