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方法文章

利用RNA介导的干扰喂养策略筛选参与线虫 C. elegans 体尺寸调控的基因

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DOI:

10.3791/4373

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2013年2月13日

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本文内容

摘要

我们演示了如何利用RNAi饲喂技术在C. elegans中敲低目标基因,并评估其体长表型。该方法可用于大规模筛选,以鉴定潜在的感兴趣遗传组分,例如参与DBL-1/TGF-β信号通路调控体长的基因。

摘要

双链RNA介导的干扰(RNAi)是一种有效抑制靶基因表达的策略1-3已将其应用于多种模式系统,包括植物、无脊椎动物和脊椎动物。实现RNAi的方法有多种 体内4,5例如,可将目的基因插入RNAi载体中,随后永久性或瞬时性地转染至细胞系或原代细胞,以实现基因敲低效果;或者,可将针对特定目的基因合成的双链寡核苷酸(RNAi寡核苷酸)瞬时转染至细胞系或原代细胞,以沉默目的基因;亦可通过显微注射将合成的双链RNA分子导入生物体内。由于线虫 秀丽隐杆线虫 以细菌作为食物来源,通过喂食表达针对目标基因的双链RNA的细菌,提供了一种可行的策略6在此,我们介绍一种通过RNAi饲喂法来评估体型表型的方法。体型在 秀丽隐杆线虫 主要由类似TGF-β的配体DBL-1调控,因此该检测适用于鉴定TGF-β信号通路组分7我们使用了不同品系,包括两种RNAi超敏感品系,重复了RNAi饲喂实验。结果显示 rrf-3 该品系产生了最符合预期的RNAi表型。该方法操作简便、可重复性强,且易于量化。此外,我们的实验方案最大限度减少了对专用设备的依赖,因此适用于规模较小的实验室或以本科生为主的教学科研机构。

方案

1. 准备含有靶基因序列的RNAi饲喂平板

  1. 若使用市售的RNAi文库(例如 来自 Source BioScience LifeSciences),进行步骤 1.4。或者,将目标基因序列克隆至载体 L4440,一种常用的线虫 RNAi 质粒8,按照标准克隆实验方案。
  2. 将重组质粒转化至HT115(DE3)菌株中,在含有25 μg/ml羧苄青霉素和12.5 μg/ml四环素的LB琼脂平板上培养,并挑取单克隆用于后续实验。
  3. 同时,将空载体L4440转化至细菌菌株HT115中,作为实验的对照。
  4. 在含有100 μg/ml氨苄青霉素的1 ml LB培养基中,于37 °C过夜培养携带重组质粒和空L4440质粒的细菌。不添加四环素,因其会降低RNA干扰效率。
  5. 加入5 ml含100 μg/ml氨苄青霉素的LB肉汤至过夜培养物中,于37 °C继续孵育4–6小时。
  6. 将0.5 ml携带重组或空L4440质粒的细菌培养物接种至RNAi线虫培养板上。用克隆名称标记所有培养板。
  7. 标记培养皿,并在37 °C下过夜培养以形成细菌菌苔;这些为含有或不含目标基因序列的RNAi培养皿。每种条件至少应准备2个培养皿。

2. 在RNAi喂养平板上培养线虫

  1. 用火焰灭菌铂金丝接种针的尖端。使用该接种针将6-....

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结果

在我们的研究中,我们关注 DBL-1/TGF-β 信号通路对体形大小的调控作用。DBL-1 通路功能缺失会导致体型变小,包括与野生型动物相比体长缩短7,10,11。因此,对 C. elegans 体形大小突变体的筛选能够鉴定出 TGF-β 信号通路的组分及其调控因子。DBL-1 信号通过一条保守的 TGF-β 信号转导通路介导,该通路包括细胞表面受体和细胞内 Smad 信号转导蛋白12。为了检验通过喂养方式进行 RNAi 干扰在鉴定体形大小突变体中的有效性,我们利用该技术敲低了 DBL-1 通路的多个组分:dbl-1/配体;sma-2、sma-3、sma-4/Smad 蛋白;以及 sma-6/受体。在本研究中,我们采用了两种不同的 RNAi 超敏感 C. elegans 品系进行实验:eri-1;lin-15b 和 rrf-313,14。同时,我们也使用了 N2(标准野生型)品系以及 lin-36 品系,后者是 lin-15 通路.......

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讨论

在本实验方案中,我们描述了利用RNAi饲喂法鉴定C. elegans体形缺陷突变体的方法。该方法适用于TGF-β信号通路组分的鉴定。由于这些组分在进化过程中高度保守15,此类筛选对于阐明所有后生动物中TGF-β信号转导的分子机制具有重要意义。设计此类筛选实验时需考虑的一个重要因素是起始菌株的选择。我们已证实,eri-1;lin-15b和rrf-3菌株对RNAi饲喂的敏感性均高于对照菌株,这与先前的研究结果一致12,13。然而,尽管eri-1;lin-15b表现出最显著的表型,但其动物生长状况较差且子代数量较少。因此,在大规模筛选中,该菌株无法提供足够数量的个体用于表型评分。基于此,我们倾向于选用rrf-3菌株,将其应用于体形调控的RNAi饲喂实验。选择起始菌株时还需考虑的第二个因素是:应使用DBL-1通路完整的菌株进行筛选,还是采用DBL-1通路功能受损或过度激活的致敏菌株作为起始材料。这两种不同的起始策略可能会鉴定出部分重叠但又各自独特的信号通路组分。本实验方案也可经修改后用于研究其他胚后表型。在此情况.......

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致谢

我们感谢 James Clark 提供了动物在不同发育阶段的图像。C. elegans 菌株由得到美国国立卫生研究院研究资源中心(NCRR)支持的线虫遗传学中心(Caenorhabditis Genetics Center)提供。本研究由纽约市立大学(CUNY)向 J.L. 和 C.S.D. 资助的 CIRG 1817 项目支持;同时由 NIH 1R15GM073678-01 和 1R15GM097692-01 项目向 C.S.D. 资助。我们感谢 William J Rice 博士、Nathalia Holtzman 博士和 Melissa Silvestrini 对稿件提出的修改意见。本工作部分完成了纽约市立大学研究生中心博士学位的要求(S. Xiong)。

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材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
RNAi 蚕食平板
17.7 g 线虫培养基混合物
60 g 琼脂
加入 H20 至 3 升。高压灭菌。
加入3 ml 1M IPTG(无菌)和3 ml 25 mg/ml氨苄西林(无菌);然后倒入60 mm培养皿中。

线虫培养板

17.7 克线虫培养基混合物
0.6 g 硫酸链霉素
60 g 琼脂
加入 H20 至 3 升。高压灭菌。倒入 60 mm 培养皿中。

线虫培养基混合物
55 g Tris-Cl
24 g Tris-OH
310 g 胰蛋白胨
800 mg 胆固醇
200 g NaCl
充分混匀,确保无结块;该粉末混合物可在使用前储存数月。

2% 琼脂糖
0.5 g 琼脂糖
加入 25 ml dH₂O2O. 微波加热至溶解。

1 M 异丙基 β-D-1-硫代半乳糖吡喃糖苷(IPTG)
2 g IPTG
溶解于10 ml dH₂O中2O

1M NaN3
6.5 g NaN3
加入 dH₂O20 至 100 毫升

25 mM NaN3
2.5 ml 1M NaN3
加入 dH₂O20 至 100 毫升

秀丽隐杆线虫 来自秀丽隐杆线虫遗传学中心
L4440 质粒(携带氨苄青霉素抗性基因)
细菌菌株 HT115 (DE3)(含有 IPTG 诱导型 T7 聚合酶;缺乏 RNase III 基因(一种 dsRNA 酶),并携带四环素抗性基因)16
60 mm 培养皿
100 mm 培养皿
14 ml 圆底 Falcon 培养管
载玻片
玻璃盖玻片
1-20 μl 移液器
20-200 μl 移液器
200-1000 μl 移液器
1-200 μl 移液器吸头
200-1000 μl 移液器吸头
1.5 ml 离心管
铂金丝线虫挑取针

参考文献

  1. Melnyk, C. W., Molnar, A., Baulcombe, D. C. Intercellular and systemic movement of RNA silencing signals. Embo J. 30, 3553-3563 (2011).
  2. Wall, N. R., Shi, Y. Small RNA: can RNA interference be exploited for therapy. Lancet. 362, 1401-1403 (2003).
  3. Kalantidis, K., Schumacher....

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重印与许可

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