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方法文章

手术获取、分离与 体外 用于组织工程应用的人前交叉韧带来源细胞的扩增

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DOI:

10.3791/51597

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2014年4月30日

本文内容

摘要

为将来作为修复前交叉韧带(ACL)部分撕裂的补片应用,从重建手术中获取的组织分离出人源ACL细胞,并进行扩增 体外 并在组织工程支架上培养。随后进行细胞黏附与形态学分析,以确认支架表面的生物相容性。

摘要

前交叉韧带(ACL)损伤是活动人群中常见的问题。即使是这种关节内膝关节韧带的部分撕裂,也会导致生物力学缺陷,影响关节功能和稳定性。目前对于部分ACL撕裂的治疗方案包括从非手术的保守治疗到多种手术方法,例如:热力修复、单束修复、完全重建以及对原有韧带受损部分的重建。然而,几乎没有研究能够证明其中任何一种治疗方法具有持续的优越性,在许多情况下,患者仍表现出持续的不稳定及其他合并症。

本研究的目的是确定一种潜在的细胞来源,用于开发一种组织工程补片,以应用于部分撕裂的前交叉韧带(ACL)修复。我们建立了一种新型方案,用于扩增来自接受ACL重建手术患者的细胞。为分离细胞,将ACL重建过程中获取的人前交叉韧带(hACL)组织切碎后,在胶原酶溶液中进行消化。细胞扩增使用添加了10%胎牛血清(FBS)和1%青霉素/链霉素(P/S)的DMEM/F12培养基进行。扩增后的细胞以含有DMSO、FBS和扩增培养基的冻存液在-80 ºC或液氮中保存。解冻后,将hACL来源的细胞接种至组织工程支架PLAGA(聚乳酸-共-乙醇酸)以及对照组组织培养聚苯乙烯(TCPS)上。培养7天后,通过扫描电子显微镜(SEM)比较细胞在PLAGA与对照组TCPS表面的黏附情况。同时采用免疫荧光染色法评估细胞形态。SEM显微图像显示,细胞在PLAGA和TCPS表面均能生长并牢固黏附,并在第7天时在整个表面达到融合状态。免疫荧光染色结果显示,两种表面上的细胞均呈现正常、无应激的形态特征。该技术在前交叉韧带再生与重建应用中具有良好的前景。

引言

前交叉韧带(ACL)是膝关节内常见的损伤性关节内韧带。在美国,每年约报告20万例前交叉韧带(ACL)损伤。超过75%的前交叉韧带损伤患者选择骨科重建手术1,2,3,4。由于前交叉韧带自身愈合能力较差,通常需要手术干预3。前交叉韧带重建通常采用自体肌腱移植或同种异体肌腱移植。自体移植和同种异体移植被视为重建的金标准,因其成功率高;而另一种治疗选择——原发性缝合修复——失败率高达94%5,6,7。

前交叉韧带(ACL)部分撕裂占所有ACL撕裂的10%至28%8。在一项前瞻性研究中,Noyes 等估计,对于ACL受累超过一半的部分撕裂患者,经非手术治疗后有50%进展为完全性ACL功能不全9。其他研究报道,持续性关节不稳定和功能下降较为常见,仅有不到30%的患者能够恢复至受伤前的活动水平9,10,11,12,13。目前治疗选择有限,包括保守治疗、残余ACL的热收缩处理或ACL重建手术。近年来,增强型原位修复技术受到越来越多关注。这些技术利用生物材料来增强原位缝合修复的效果14。近期研究尝试获取类似间充质干细胞的源自人前交叉韧带(hACL)的干细胞,以克服移植物来源的局限性31,32,但这些细胞的有效性和可靠性仍不明确。在组织工程应用中,理想的细胞来源似乎是源自hACL的非间充质型成纤维细胞。

当前研究的重点是为组织工程支架寻找合适的基质材料和细胞来源。在前交叉韧带(ACL)重建手术中,撕裂的ACL通常作为手术废弃物被丢弃,然而,这种受损韧带可能是获取构建和优化理想组织工程ACL替代物所需细胞的优质来源。本实验室已建立了一套从撕裂的ACL中分离和培养韧带来源细胞的实验方案。 体外 扩增这些收获的源自人前交叉韧带(hACL)的细胞。利用一种负载了源自hACL细胞的工程化二维基质,我们设计了一种补片,有望用于增强部分前交叉韧带修复,并强化撕裂的韧带。

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方案

1. 手术取材

注意:已获得机构审查委员会(IRB)批准,可在前交叉韧带(ACL)重建手术期间采集ACL残端组织。由于所使用的ACL残端通常作为手术废弃物丢弃,因此获得了IRB豁免。共采集了20名患者的ACL残端组织。

  1. 根据所在机构的规程,为患者实施全身麻醉并给予术前抗生素。
  2. 应用止血带并充气至高于收缩压 100 mmHg。
  3. 将患者置于仰卧位,在膝关节屈曲 30–45° 时做一水平前外侧切口,建立 5 mm 入路,以 30° 角将关节镜套管和镜头插入髌上囊。
  4. 进行常规诊断性关节镜检查。
  5. 进入髁间窝,清除覆盖于撕裂前交叉韧带(ACL)上的膜状滑膜组织。
  6. 使用 4.5 mm 刨削刀和消融器识别前交叉韧带残端。
  7. 使用直喙钳从残留的前交叉韧带残端多点取样。
  8. 将样本保存在无菌容器内的生理盐水中。
  9. 将样本送至病理科进行解码,并最终递送至实验室设施。
  10. 按机构规程对患者进行复苏及术后护理。

2. 组织消化与人前交叉韧带分离

  1. 将病理科提供的前交叉韧带组织转移至含有无菌生理盐水/PBS(磷酸盐缓冲液)的培养皿中。
  2. 使用无菌剪刀将组织剪碎成 1–2 mm3 的小块,并用生理盐水至少清洗 3 次。
  3. 用含 10% 胎牛血清(FBS)和 1% 青霉素/链霉素的 DMEM/F-12(50/50,1×)培养基配制的 0.4% 胶原酶,在 37 °C 条件下消化剪碎的组织 4–6 小时。
  4. 在 1,000 × g 条件下离心 5 分钟,然后将细胞重悬于培养基中。
  5. 用培养基清洗细胞 2–3 次,随后接种于 T-25 培养瓶中培养 2–3 天。

3. 细胞扩增、冻存与复苏

  1. 使用光学显微镜观察在T-25培养瓶中培养2-3天的细胞。
  2. 将细胞维持在37 °C条件下,培养基为添加10%胎牛血清(FBS)和1%青霉素/链霉素(P/S)的DMEM/F-12(50/50,1x)培养液。
    注意:当细胞出现贴壁现象并呈现标准形态时,需更换培养基。使用光学显微镜观察细胞状态。
  3. 在第7天用PBS洗涤汇合的细胞(约1.3 × 106 个细胞/瓶)。加入胰蛋白酶(0.5 g/L),于37 °C孵育5分钟。向悬浮细胞中加入培养基以中和胰蛋白酶。将细胞-培养基混合液等分为三份,分别接种至三个T-25培养瓶中。
  4. 用PBS洗涤汇合的细胞,加入胰蛋白酶(0.5 g/L),并将细胞重悬于冷冻保存液中,该冷冻液由DMSO、FBS和完全培养基(DMEM/F-12培养基 + 10% FBS + 1% P/S)按1:2:7的比例配制而成。
  5. 若细胞将在一个月内使用,可将冻存管置于-80 °C保存;若需长期储存,则应置于液氮中保存。
  6. 再次使用时,在37 °C水浴中解冻冻存管。
    注意:通常细胞存活率为90-95%。

4. 组织工程二维聚乳酸-羟基乙酸共聚物(PLAGA)支架的制备

  1. 在20 ml闪烁瓶中,将1 g PLAGA溶于12 ml二氯甲烷中,并以恒定速度(800 rpm)涡旋搅拌8小时。
    注意:详见Gupta et al.15
  2. 将溶解后的溶液转移至铺有氟化保护纸的玻璃培养皿中。
  3. 将培养皿置于真空罩下30分钟。随后将培养皿于-20 °C放置过夜,再转移至室温。将培养皿放入冷冻干燥机中,以确保溶剂完全蒸发,从而获得聚合物薄膜。
  4. 将聚合物薄膜置于干燥器中24小时。
  5. 将聚合物薄膜切割成直径为12 mm的圆形片状,储存于干燥器中备用。

5. 扫描电子显微镜(SEM)

  1. 用 PBS 清洗接种于对照 TCPS 和 PLAGA 支架上的细胞(每片 50,000 个细胞),接种后第 7 天进行。
  2. 使用1.5%戊二醛溶于0.1 M卡考基酸缓冲液固定细胞,以及2.5%四氧化锇4 在0.1 M卡考得缓冲液中进行后固定。
  3. 用0.1 M卡考基酸盐缓冲液洗涤固定后的细胞。使用梯度乙醇脱水(50%、70%、80%、90%和100%)对固定细胞进行脱水处理,每种浓度处理15分钟,随后在六甲基二硅氮烷(HMDS)中过夜进一步干燥。
  4. 使用按钮阀释放SEM溅射镀膜系统的腔室压力,并升起顶板。
  5. 将干燥的样品放入腔室中,降下上部平板。
  6. 将控制旋钮切换至“泵”以开始抽空腔体。
  7. 打开氩气泄漏阀。等待真空度降至0.05 mbar。
  8. 用一层薄金/钯(0.13 nm)镀覆干燥样品。
  9. 将氩气泄漏阀恢复至关闭位置。
  10. 将控制旋钮切换至关闭位置。
  11. 使用按钮阀释放腔室压力,并升起顶板。
  12. 取出样品,置于干燥器中保存24小时。
  13. 在扫描电子显微镜下观察样品。

6. 免疫荧光染色

  1. 在接种后第7天,用PBS洗涤接种于对照TCPS和PLAGA支架上的细胞(每片50,000个细胞)。
  2. 用70%乙醇(冷)固定细胞,作用10分钟。
  3. 将固定后的细胞在室温下用含0.05% Triton X-100的PBS配制的1%牛血清白蛋白(BSA)溶液孵育20分钟。
  4. 将样品浸入1% Tween溶液中,在室温下孵育20分钟。
  5. 加入单克隆小鼠抗-β-actin抗体(1:400稀释),4 °C下孵育过夜。
  6. 用0.05% Tween洗涤细胞,加入二抗(与荧光探针偶联的山羊抗小鼠IgG F(ab')₂片段,1:400稀释),室温孵育1小时。
  7. 用PBS洗涤细胞,用核染料对细胞染色,并用80%甘油封片。
  8. 在共聚焦显微镜下观察细胞。

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结果

人前交叉韧带(hACL)来源细胞的手术获取、组织消化及分离工作模型见图1。细胞从组织块中迁移并贴附于T-25培养瓶中。这些细胞培养3天后,在光学显微镜下进行观察(图2)。至第7天获得融合的单层细胞。健康且具有活力的细胞的存在表明已成功获取并培养出hACL来源细胞。

通过扫描电镜(SEM)定性评估细胞在PLAGA和TCPS表面的黏附情况。图3展示了来源于人前交叉韧带(hACL)的细胞在每种聚合物表面的黏附与增殖情况。在PLAGA和TCPS表面均观察到细胞融合生长。

通过免疫荧光染色法测定细胞形态和黏附性分析。β-actin 染色显示,来源于人前交叉韧带(hACL)的细胞能够黏附并在 PLAGA 和 TCPS 表面增殖。图4 展示了聚合物上的细胞黏附情况,并突出了 hACL 细胞正常的、无应激状态下的形态特征。

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讨论

本项hACL/2D支架研究的主要目标是利用获取的细胞制成补片,以增强部分前交叉韧带(ACL)撕裂的原位修复。对于部分ACL撕裂的非手术治疗,可能包括短暂的制动、支具固定、渐进式康复训练以及定期随访评估13,16,17。然而,许多研究表明,运动员采用保守治疗常导致疗效不佳和治疗失败。Buckley et al. 对25例部分ACL撕裂患者进行中期随访评估,发现仅有44%的患者恢复至受伤前的运动水平,72%的患者报告存在与活动相关的症状8。Bak et al. 对56例孤立性部分ACL撕裂患者进行了平均5.3年的随访,仅有30%的患者恢复了受伤前的活动能力10。Fritschy et al. 发现,在43例部分ACL撕裂患者中,有18例在5年随访期间进展为完全断裂11。这些研究结果表明,亟需开发创新技术以治疗和修复部分ACL撕裂。

本研究的目的是建立一种实验方案,以展示一种新技术,即获取人前交叉韧带(hACL)细胞、进行培养,并使其在工程化支架上...

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披露

作者声明不存在任何竞争性经济利益。

致谢

作者感谢南伊利诺伊大学医学院的启动资金和外科研究基金,以及纪念医疗基金会的资助。

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材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
培养皿Fisher Scientific08-757-103C
磷酸盐缓冲液(PBS)Fisher ScientificBP3994
胶原酶Gibco17018-0294 °C 保存
DMEM/F-12Cellgro10-092-CV4 °C 保存。使用前在 37 °C 水浴中预热。
胎牛血清(FBS)Gibco10082-80 °C 保存
青霉素/链霉素Lonza17-602E4 °C 保存
离心管 - 15 mlCorning430790
T-25 培养瓶BD Falcon3013
胰蛋白酶-Versene 混合液Lonza17-161E4 °C 保存。使用前在 37 °C 水浴中预热。
DMSOFisher ScientificBP231-100可燃液体。可引起皮肤、眼睛和呼吸道刺激。
冻存管Corning430489
PLAGAPurac BiomaterialsPurasorb PLG8523-80 °C 保存
TCPS 圆片Fisher Scientific12-545-82
二氯甲烷Fisher ScientificAC36423-0010可能致癌。应存放在干燥、阴凉处。
Bytac 纸Saint gobin performance plastics1420652
闪烁瓶Fisher Scientific03-339-21G
牛血清白蛋白(BSA)Sigma AldrichA79064 °C 保存
TweenFisher ScientificBP337-500
小鼠抗-β-肌动蛋白抗体(1° Ab)Sigma AldrichA5441-20 °C 保存
山羊抗小鼠抗体(2° Ab)Cell Signaling4408-20 °C 保存
Hoechst 染料Sigma Aldrich14530-20 °C 保存
甘油Fisher ScientificBP229-1
戊二醛Fisher ScientificBP2547-1吸入或吞咽有毒。所有接触途径均可引起灼伤。
六甲基二硅氮烷Fisher ScientificAC43085-1000易燃液体和蒸气。所有接触途径均可引起灼伤。
无菌剪刀McKesson25-716
离心机Eppendorf5804R
光学显微镜OlympusCK40
水浴锅Thermo scientific2845
涡旋振荡器LabnetVX-200
玻璃培养皿fisher ScientificS31473
Acu-PunchAcuderm Inc.P1225Acu-Punch 用于切割 12 mm 圆片
卡可基酸缓冲液Sigma Aldrich97068易燃液体,致癌物,刺激物。
四氧化锇Sigma Aldrich201030剧毒
Triton X-100Sigma AldrichT8787吞咽有害
乙醇Decon Labs2705远离热源、火花、火焰及其他点火源。
全身/区域麻醉剂Amphastar pharmaceuticals1% 利多卡因,0.25% 布比卡因,用于诱导和维持麻醉的麻醉剂
抗生素Hospira0409-0805-01Ancef 1 g 静脉注射
关节镜穿刺器Smith and Nephew
关节镜摄像系统Smith and Nephew
关节镜抓钳和咬钳Arthrex
4.5 mm 刨削器Arthrex
干涉螺钉Arthrex不锈钢螺钉
溅射镀膜仪PolaronE5400

参考文献

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