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方法文章

RNA结合蛋白的检测方法 体外 脂肪细胞培养中的RNA下拉实验

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DOI:

10.3791/54207

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2016年7月22日

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本文内容

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摘要

本文优化了一种RNA下拉实验方案,用于检测RNA结合蛋白(RBPs)与非编码RNA以及编码RNA之间的相互作用。以雄激素受体(AR)的RNA片段为例,展示了如何从原代棕色脂肪细胞的裂解液中富集与其结合的RNA结合蛋白。

摘要

RNA结合蛋白(RBPs)在脂肪组织的发育和功能中正逐渐被视为一种重要的调控层次。RBPs通过影响靶标mRNA的稳定性和翻译效率,在转录后水平上对基因表达起关键调控作用。RNA pull-down技术已被广泛用于研究RNA-蛋白质相互作用,这对于阐明RBPs以及长链非编码RNA(lncRNAs)功能的分子机制至关重要。然而,脂肪细胞中富含脂质,为该实验的实施带来了技术上的挑战。本文提供了一种针对原代脂肪细胞培养体系优化的详细RNA pull-down实验方案。以雄激素受体(AR)3'非翻译区(3'UTR)中包含腺苷酸-尿苷酸富集元件的一段RNA片段为例,展示了如何从脂肪细胞裂解液中富集其RBP结合蛋白HuR。本方法可广泛应用于检测RBPs与非编码RNA之间,以及RBPs与编码RNA之间的相互作用。

引言

RNA结合蛋白(RBPs)是一类能够与细胞内的双链或单链RNA结合并参与形成RNA-蛋白质复合物的蛋白质。RBPs可结合多种RNA分子,包括mRNA和长链非编码RNA(lncRNA),并在转录后水平发挥调控作用。目前,RBPs和lncRNA正被逐步揭示为脂肪组织发育与功能中的新型调控因子1,2,3。为了理解RBPs和lncRNA介导的细胞通路调控机制,通常需要检测特定RNA分子与一个或多个RBPs之间的相互作用,有时还需鉴定某一RNA转录本所结合的全部蛋白质伙伴。然而,由于脂肪细胞中含有大量脂质,此类实验往往具有挑战性。本文所述的RNA下拉(pull-down)实验方案可用于从原代培养的脂肪细胞裂解液中富集特定RNA的蛋白质结合伙伴4,5。

本方案的原理总结如下。一种RNA诱饵 体外 从DNA模板转录而来,经生物素标记后与链霉亲和素包被的磁珠偶联4将RNA诱饵与细胞裂解液共同孵育,以形成RNA-蛋白质复合物,随后在磁力架上进行下拉。具体而言,下述RNA下拉实验方案采用来自AR 3'非翻译区(3'UTR)的RNA片段作为诱饵,用于富集HuR蛋白——一种广泛表达的RNA结合蛋白,可结合mRNA的3'UTR区域。6,7,来自原代培养的脂肪细胞裂解液。为检测该实验的结合特异性,设置无关RNA以及链霉亲和素磁珠阴性对照。本方案可与蛋白质印迹(western blotting)或质谱....

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方案

注意:本研究中的目标 RNA 是 AR 3'非翻译区的一个片段。

1. 生物素标记RNA的制备

  1. 通过PCR扩增T7-AR-oligo以获得RNA,随后 体外 使用商业试剂盒并按照制造商说明进行转录11.
    注意:PCR 引物列于 表 4T7-AR-F 和 T7-AR-R
  2. 作为非特异性结合对照,从 psiCHECK-2 质粒通过 PCR 扩增萤火虫荧光素酶(FL)DNA 的部分序列,随后 体外 转录
    注意:PCR 引物列于 表4:hluc(+)-T7-探针-F 和 hluc(+)-探针-R。 表4PCR扩增所用的模板和引物序列。
  3. 对于一个50 µl的PCR反应,混合以下组分:50 ng DNA(寡核苷酸或质粒)、4 µl dNTPs(每种dNTP浓度为2.5 mM)、5 µl 10×反应缓冲液、1 µl DNA聚合酶(2.5 U/µl)、2 µl 10 µM正向引物、2 µl 10 µM反向引物,以及无核酸酶水。
    1. 使用以下程序在热循环仪中进行PCR扩增。第一步:95 °C预变性2分钟,1个循环;第二步:95 °C变性30秒、55 °C退火30秒、72 °C延伸30秒(AR)或60秒(FL),共35个循环;第三....

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结果

在本演示实验中,使用AR RNA片段作为诱饵来捕获其结合蛋白HuR。同时设置与HuR蛋白无关的全长RNA(FL RNA)诱饵以及未偶联的空白链霉亲和素磁珠等分试样作为阴性对照。RNA-蛋白质相互作用可能发生在细胞核或细胞质中,本沉淀实验方案可适用于全细胞裂解液或分馏后的(核或胞质)细胞裂解液。通过蛋白质印迹分析显示,15 µl未分馏细胞裂解液样品(见第4.8节)作为无磁珠输入对照呈阳性结果,表明利用单克隆抗体可在小鼠原代培养脂肪细胞裂解液中检测到HuR蛋白。AR RNA洗脱组分也呈阳性结果,表明在RNA沉淀实验中,使用AR RNA偶联磁珠可从脂肪细胞裂解液中检测到HuR蛋白。而FL RNA洗脱组分和空白磁珠样品均呈阴性结果,表明FL RNA片段与HuR蛋白之间以及空白磁珠与HuR蛋白之间的非特异性相互作用在本RNA沉淀方法中无法被检测到。这两个阴性对照的结果也表明,本研究所述的RNA沉淀实验方案成功检测到了AR RNA片段与HuR蛋白之间的特异性相互作用。

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讨论

长链非编码RNA(lncRNA)和RNA结合蛋白(RBP)在健康与疾病中具有重要作用,但这些分子的分子机制尚不明确。鉴定与lncRNA分子相互作用的蛋白质是阐明其调控机制的关键步骤。RNA下拉实验系统通过在溶液中捕获相互作用复合物来富集RBP,从而利用结合在链霉亲和素磁珠上的生物素化RNA探针从细胞裂解液中选择性地提取目标蛋白。其他一些方法如ChIRP、CHART和RAP也可实现相同目的,但相比RNA下拉技术,这些方法的建立更为复杂16,17,18。

RNA 沉淀法的主要优势在于其操作相对简单且易于实施。CHIRP 和 RAP 均包含交联步骤,可保留天然存在的 RNA-蛋白质复合物,并需要设计覆盖整个目标 RNA 的反向互补寡核苷酸探针组(RAP 中为 90 个核苷酸长度,ChIRP 中为 20 个核苷酸长度)16,17,18RNA 折叠是 RNA 拉下实验中的关键步骤。该方案的主要局限性在于目标 RNA 是体外合成的 体外 且可能无法正确折叠成天然结构,从而无法与其RNA结合蛋白(RBP)正常结合。错误折叠的非天然RN.......

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致谢

本工作由新加坡国家研究基金会资助(NRF-2011NRF-NRFF001-025)以及CBRG(NMRC/CBRG/0070/2014)资助。

....

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材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
本研究使用的主要材料。
MEGAscript 试剂盒 Ambion
Biotin-14-CTP Invitrogen
NucAway 离心柱 Ambion
Dynabeads M-280 链霉亲和素磁珠 Invitrogen
HuR (3A2) 小鼠单克隆抗体 (sc-5261) Santa Cruz Biotechnology
Goat anti-mouse IgG-HRP (sc-2005) Santa Cruz Biotechnology
Hypure 分子生物学级水(无核酸酶) HyClone
磷酸盐缓冲液 (1×PBS) HyClone
RNase 抑制剂 Bioline
蛋白酶抑制剂 Sigma
Pfu Turbo DNA 聚合酶 Agilent Technologies
TRIsure Bioline
名称公司货号备注
本研究使用的主要设备。
Sorvall Legend Micro 21R 离心机 Thermo Scientific
Sorvall Legend X1R 离心机 Thermo Scientific
Bio-Rad T100 梯度PCR仪 Bio-Rad
Nanodrop 2000 Thermo Scientific
BOECO 多管旋转混合仪 Multi Bio RS-24 BOECO, Germany
蛋白质凝胶电泳及转膜装置 Bio-Rad
DynaMag-2 磁力架 Life Technologies

参考文献

  1. Huot, M. É, et al. The Sam68 STAR RNA-binding protein regulates mTOR alternative splicing during adipogenesis. Mol Cell. 46 (2), 187-199 (2012).
  2. Sun, L., et al. Long noncoding RNAs regulate adipogenesis. Proc Natl Acad Sci U S A. 110

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重印与许可

勘误


Formal Correction: Erratum: Detection of RNA-binding Proteins by In Vitro RNA Pull-down in Adipocyte Culture
Posted by JoVE Editors on 8/20/2016. Citeable Link.

A correction to the author list was made to: Detection of RNA-binding Proteins by In Vitro RNA Pull-down in Adipocyte Culture.

The author list has been updated from:

Qianfan Bai1*, Zhiqiang Bai1*, Lei Sun1,2

1Cardiovascular and Metabolic Disorders Program, Duke-NUS Medical School

2Institute of Molecular and Cell Biology, Singapore

*These authors contributed equally

to:

Qianfan Bai1*, Zhiqiang Bai1*, Shaohai Xu3, Lei Sun1,2

1Cardiovascular and Metabolic Disorders Program, Duke-NUS Medical School

2Institute of Molecular and Cell Biology, Singapore

3Division of Bioengineering, School of Chemical & Biomedical Engineering, Nanyang Technological University

*These authors contributed equally

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