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通过DNA含量测定进行哺乳动物全基因组复制时间的确定

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DOI:

10.3791/55157

2017年1月19日

本文内容

摘要

本文介绍一种相对快速且简便的方法,用于绘制哺乳动物全基因组复制时间图谱,涵盖从细胞分离到测序结果基础分析的全过程。按照本方案操作后,将获得一份代表性复制程序的基因组图谱。

摘要

基因组的复制发生在细胞周期的S期,这是一个受到高度调控的过程,以确保DNA复制的保真度。每个基因组区域在S期通过多个复制起点的同时激活而于特定时间进行复制。复制时间(ToR)与许多基因组和表观遗传特征相关联,并与突变率及癌症的发生有关。全面理解健康与疾病状态下基因组复制程序的完整图景,是未来的重要目标和挑战。

本文详细描述了"通过S期与G1期拷贝数比率绘制基因组复制时间图谱"的方法(以下简称:CNR-ToR),这是一种用于绘制哺乳动物细胞全基因组复制时间(ToR)图谱的简便方法。该方法基于S期细胞与G1期细胞之间的DNA拷贝数差异。CNR-ToR方法共分为6个步骤:1. 细胞准备并用碘化丙啶(PI)染色;2. 利用荧光激活细胞分选技术(FACS)分选G1期和S期细胞;3. DNA纯化;4. 超声破碎;5. 文库构建与测序;以及6. 生物信息学分析。CNR-ToR方法操作快速简便,可获得高分辨率的DNA复制图谱。

引言

哺乳动物的DNA复制受到严格调控,以确保在细胞周期中每条染色体精确地复制一次。复制按照高度有序的时序进行——多个较大的基因组区域(约兆碱基级别)在S期早期开始复制(称为早期复制区),而其他基因组区域则在S期中晚期复制(称为中期和晚期复制区)1。大部分基因组在所有组织中的复制时间相同(称为组成型复制时序区),而约30%至50%的基因组区域在不同组织之间2、细胞分化过程中3,4,以及在较小程度上的癌症转化过程中5,其复制时序会发生改变。此外,某些基因组区域表现为异步复制6,7,8,即两个等位基因之间的复制时序存在差异。

ToR 与多种基因组和表观基因组特征相关,包括转录水平、GC 含量、染色质状态、基因密度 等等。1,9ToR 还与突变率和突变类型相关10<....

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方案

注意:ToR 只能在生长中的非同步细胞上进行测量。实验应从至少 1 - 2 × 106 个快速生长的细胞开始,通常可获得约 1 × 105 个处于 S 期的细胞(这是限速步骤)。建议每个实验设置两到三个重复。CNR-ToR 的整个流程可在一周内完成——前两天用于完成文库构建前的所有步骤,一到两天用于测序,另需一天进行初步数据分析。

1. 从培养物中收集细胞

注意:本实验方案适用于在10 cm培养皿中培养的细胞(细胞数量约为2 - 5 × 106个),但可轻松调整用于其他培养平台。

  1. 对于悬浮培养的细胞,直接进行固定(第2节)。
  2. 对于贴壁细胞,吸除液体,并用 3 mL 不含 Ca2+ 和 Mg2+ 的 PBS 洗涤培养板。
  3. 弃去 PBS,加入 1 mL 商品化胰蛋白酶-EDTA 溶液,37 °C 孵育 5 分钟,直至细胞脱落。
    注意:胰蛋白酶处理时间应根据细胞类型进行调整。
  4. 加入 3 mL 培养基以中和胰蛋白酶,将细胞收集至 15 mL 圆锥形离心管或 5 mL 聚苯乙烯管中,置于冰上保存。

2. 固定

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结果

典型的ToR图谱如图所示 图3 用于小鼠胚胎成纤维细胞(MEFs)。该图展示了分析过程,因为它同时显示了点状图(代表各个窗口的标准化S/G1比值,步骤8.3)和经三次平滑与插值处理后得到的曲线(步骤8.5)。

这类图谱可揭示复制程序的组织方式,该程序由两种类型的复制时间(ToR)区域拼接而成:i)大规模区域(数量级为兆碱基),在S期的早期、中期或晚期同时进行复制(CTR = 复制时间恒定区域);以及 ii)复制时间转换区域(TTR),在这些区域中复制时间逐渐变化。CTR通过TTR相互连接,这两类复制组织共同覆盖整个基因组。

尽管ToR定位所用的测序覆盖度相对较低(每300 bp一个读段),所获得的定位图仍相当稳健。图4展示了MEF细胞三组重复样本之间的ToR图谱与小.......

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讨论

原则上,任何可通过流式细胞术(FACS)分离出S期和G1期的增殖性真核细胞群体均可进行CNR-ToR分析(Rhind N. 和 Gilbert DM20综述)。本文所述方法已针对基因组大小约为3 Gb的哺乳动物细胞(如人和小鼠细胞)进行了优化。若需将其应用于其他真核生物,则需对CNR-ToR实验方案进行少量调整(如细胞制备和测序深度)。必须注意收集足够数量的S期细胞,因为这是限速步骤。因此,应先进行初步的细胞周期FACS分析,以确认实验的可行性,并验证S期细胞的数量。对于细胞周期不规则的细胞,建议预先用BrdU对细胞进行染色以标记分裂细胞,并按照抗BrdU试剂盒生产商的说明书操作至FACS步骤。通常情况下,细胞用10–20 µM BrdU染色30分钟。

建议每个实验设置生物学重复三次,以检测可能由细胞生长差异和分选过程不同引起的不一致结果。这对于识别不同细胞类型和条件下 ToR 图谱中的微小变化尤为重要。对于快速生长的细胞,每次重复建议使用一个 10 cm 的组织培养皿或培养瓶(含有约 2–5 × 106 个细胞.......

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披露

未声明任何利益冲突。

致谢

感谢Oriya Vardi在生成图表过程中提供的帮助。IS课题组的工作得到了以色列科学基金会(资助号567/10)和欧洲研究理事会启动资助(#281306)的支持。

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材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
PBSBI (Biological Industries)02-023-1A
胰蛋白酶-EDTABI (Biological Industries)03-052-1B
15 mL 圆锥形离心管Corning430790
5 mL 聚苯乙烯圆底试管,带细胞筛网帽 BD-Falcon352235
乙醇Gadot64-17-5
RNase-A 10 mg/mLSigmaR4875
碘化丙啶 1 mg/mLSigmaP4170
Parafilm 封口膜ParafilmPM-996
1.5 mL DNA LoBind Eppendorf 管 Eppendorf22431021
BSASigmaA7906
1.7 mL MaxyClear 管 AxygenMCT-175-C
磁珠 - Agencourt AMPure XP Beckman CoulterA63881
超声破碎仪CovarisM系列  -530092
50 µL microTUBE AFA 纤维螺口管 6 x 16 mmCovaris520096
Qubit 荧光计Invitrogen
Qubit dsDNA 高灵敏度(HS)检测试剂盒InvitrogenQ32854
电泳 2200 TapeStation 系统AgilentD1000 ScreenTape
测序 - Illumina NextSeq 系统IlluminaSY-415-1001
DNeasy DNA 纯化试剂盒Qiagen69504
PureProteom 磁力架MilliporeLSKMAGS08
抗 BrdU/FITC 抗体DAKOF7210
FACS 分选仪BDFACSARIA III
FACS 软件BDFACSDiva v 8.0.1

参考文献

  1. Farkash-Amar, S., Simon, I. Genome-wide analysis of the replication program in mammals. Chromosome Res. 18 (1), 115-125 (2010).
  2. Yaffe, E., et al. Comparative analysis of DNA replication timing reveals conserved large-scale chromosomal architecture.<....

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S G1 DNA

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