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方法文章

肉瘤细胞中诱导间充质-上皮转化

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DOI：

10.3791/55520

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2017年4月7日

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Medicine, Duke University, 2Department of Bioengineering, Rice University, 3Department of Molecular Genetics and Microbiology, Duke University, 4Solid Tumor Program and the Duke Prostate Center, Duke University Medical Center, 5Duke University Medical Center

本文内容

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摘要

本文介绍一种基于过表达miR-200家族成员与grainyhead样2（GRHL2）来诱导肉瘤细胞发生间充质-上皮转化（MET）的细胞培养方法。该方法适用于深入理解表型可塑性对癌症侵袭性及治疗反应的生物学影响。

摘要

表型可塑性是指细胞短暂获得其他谱系特征的一种现象。在癌进展过程中，表型可塑性驱动了肿瘤的侵袭、播散和转移。事实上，尽管大多数关于表型可塑性的研究集中在上皮来源的癌，但研究发现起源于间充质组织的肉瘤也表现出表型可塑性，其中一部分肉瘤会发生类似于间充质-上皮转化（MET）的现象。在此，我们建立了一种利用miR-200家族和grainyhead样2（GRHL2）的方法，以模拟在肉瘤患者样本中观察到的这种类似MET的现象。我们分别通过细胞转导和转染依次表达GRHL2和miR-200家族，以更深入地理解肉瘤细胞中这些表型转变的分子基础。表达miR-200和GRHL2的肉瘤细胞在细胞形态上表现出增强的上皮特征，并伴有上皮和间充质生物标志物的改变。未来利用该方法的研究可进一步阐明类似MET过程对肉瘤细胞表型的影响，例如迁移、侵袭、转移倾向以及治疗耐药性。

引言

表型可塑性是指细胞表型之间可逆的转变，通常分为两种类型：上皮-间质转化（EMT）和间质-上皮转化（MET）。这种表型可塑性在多细胞生物的正常生理过程中发挥重要作用，例如发育和伤口愈合1；然而，相同的通路和基因表达程序也可能导致疾病，如纤维化（综述见2,3,4）和癌转移（综述见参考文献5,6,7,8）。例如，在转移过程中，EMT会破坏细胞极性和细胞间相互作用，并促进侵袭9,10。总体而言，EMT有助于形成一种促进癌细胞播散的表型状态。此外，EMT还会引发一系列其他表型改变，从而驱动更具侵袭性的表型，包括癌细胞代谢失调6、耐药性形成11,12、肿瘤起始能力增强13,14以及逃避免疫系统监视15。

表型可塑性在癌进展中已被广泛研究；然而，肉瘤也表现出表型可塑性。有趣的是，似乎某些驱动癌表型可塑性的相同因素也参与了肉瘤的可塑性与侵袭性。例如，已发现来自肉瘤患者的循环肿瘤细胞（CTCs）表达EpCAM，这是一种通常存在于上皮细胞表面的蛋白质16。此外，250例软组织肉瘤样本根据基因表达被分类为上皮样或间质样。具有上皮样生物标志物特征的患者预后优于具有间质样生物标志物特征的患者17。这与多种癌一致：相较于具有更强间质样特征的肿瘤患者，具有更强上皮样特征的癌患者预后更好18。

尽管某些肉瘤表现出与间质-上皮转化（MET）一致的生物标志物和基因表达通路，但这种表型可塑性的分子基础仍不清楚。为了研究肉瘤中MET的机制和驱动因素，我们建立了一个MET诱导模型，使用了两个上皮特异性因子：microRNA（miR）-200家族和grainyhead样2（GRHL2）。miR-200是一类小分子非编码RNA，通过与信使RNA的3'非翻译区（3' UTR）结合，阻止其翻译成蛋白质，从而调控基因表达。miR-200家族包含两个亚组：一个包含miR-141和miR-200a，另一个包含miR-200b、miR-200c和miR-429。 miR-200b、miR-200c 和 miR-429。miR-200 家族成员在上皮组织中富集，miR-200 的缺失与癌瘤的转移相关19miR-200 家族在软组织肉瘤中相较于正常组织也呈下调状态20与miR-200家族类似，GRHL2是上皮发育过程中的一个关键调控因子21GRHL2 转录因子通过两种方式上调上皮基因（如 E-cadherin）：1）在上皮细胞中，GRHL2 直接抑制 EMT 主要调控因子 ZEB122；以及 2) GRHL2 直接激活上皮基因的转录23我们之前的研究表明，在肉瘤细胞中共同表达miR-200s和GRHL2可诱导类似MET的表型24在此，我们提供了一种详细的方案，用于构建一个 体外 使用miR-200s和GRHL2异位表达构建肉瘤细胞中MET诱导的模型

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方案

1. 试剂的准备

  1. 通过向500 mL DMEM中加入50 mL胎牛血清（FBS）和5 mL青霉素-链霉素溶液（5,000 U/mL）来配制细胞培养用DMEM。该培养基可在4 °C保存长达六个月。
  2. 用无核酸酶水重悬冻干引物，使其终浓度为10 µM。将重悬后的引物储存在-20 °C。
  3. 配制放射免疫沉淀分析（RIPA）缓冲液（150 mM NaCl、0.5% 脱氧胆酸钠、0.1% SDS、50 mM Tris，pH 8.0）。使用前加入蛋白酶抑制剂混合物，并在使用过程中将缓冲液置于冰上。4 °C保存。
  4. 将聚凝胺（hexadimethrine bromide）以水配制成10 mg/mL溶液，并使用0.45 µm聚醚砜滤膜通过注射器滤器进行除菌过滤。溶液可在4 °C保存长达六个月。
  5. 将10 mg硝基蓝四氮唑氯化物溶于10 mL PBS中，配制成1 mg/mL的工作溶液。4 °C保存。

2. GRHL2 的慢病毒转导

第1天

  1. 在6孔板的每孔中接种3 × 105个HEK293T细胞，加入2 mL含补充物的DMEM培养基。使用自动细胞计数仪对细胞进行定量。在37 °C、5% CO2条件下过夜培养后，细胞融合度应达到40–60%。

第2天

  1. 在200 µL无血清培养基中稀释2 µg空载体（pCMV-UBC-EGFP）或2 µg pCMV-GRHL2-UBC-EGFP24,25，同时加入1.8 µg pΔ8.9和0.2 µg pCMV-VSV-G辅助质粒。另取一管，每转染样本用200 µL无血清培养基稀释4 µL脂质体转染试剂（两个样本则用400 µL稀释8 µL）。将200 µL转染试剂混合物加入各质粒溶液中，室温孵育20分钟。
  2. 孵育期间，通过真空抽吸弃去培养基，并用1 mL PBS洗涤HEK293T细胞，随后弃去PBS并加入800 µL无血清培养基。20分钟后，将步骤2.2中得到的200 µL转染试剂:质粒混合物逐滴加入每孔中，于37 °C、5% CO2条件下孵育2小时。
  3. 小心通过真空抽吸去除转染培养基，更换为2 mL含补加物的DMEM培养基。将细胞放回培养箱中过夜培养。
    ​注意：HEK293T细胞贴壁较松。更换培养基时需格外小心，以尽量减少细胞从培养皿或培养瓶底部脱落。

第3天

  1. 更换转染后的 HEK293T 细胞的培养基，并在 2 mL 添加物补充的 DMEM 中，将 3 × 105 个 RD 细胞接种至 6 孔板的每个孔中。过夜培养细胞。RD 细胞是一种 commercially-available 的人横纹肌肉瘤细胞系。

第4天

  1. 收集HEK293T细胞的病毒上清。用移液器将HEK293T细胞中的DMEM培养基转移至新的15 mL离心管中。小心更换为新的DMEM培养基，并将HEK293T细胞放回培养箱中继续培养至第二天。
  2. 在两个新的50 mL离心管中（一个用于空载体转染，另一个用于GRHL2转染），每毫升病毒上清中加入2 µL的10 mg/mL聚凝胺。通过从3 mL注射器中取出活塞，并在针头处连接一个0.45 µm聚醚砜滤器，对病毒上清进行注射器过滤。
    1. 将步骤2.6中收集的病毒上清加入注射器筒内，推动活塞将上清注入含有聚凝胺的50 mL离心管中。用真空抽吸法去除RD细胞中的培养基，然后向RD细胞中加入过滤后的病毒上清。

第5天

  1. 重复第4天的操作。收集病毒液后，可弃去HEK293T细胞。

第7天

  1. 用 1 mL PBS 清洗 RD 细胞，每孔加入 200 µL 0.05% 胰蛋白酶。在 37 °C 下孵育 5 分钟，加入 2 mL 完全培养基，将细胞悬液转移至新的 15 mL 圆锥形离心管中。在室温下以 250 × g 离心 5 分钟，吸除上清液。用 1 mL DMEM（添加 5% FBS 和 1% 青霉素-链霉素）重悬细胞。
    ​注意：使用更高浓度的 FBS 可能在流式细胞术过程中引起堵塞
    1. 对细胞进行流式细胞术过滤。用移液器将 1 mL RD 细胞悬液通过 30 µm 滤膜加入流式细胞术管中，并将管子置于冰上。
    2. 将 EGFP+ 细胞26 分选至含有 0.5 mL DMEM（添加 10% FBS 和 1% 青霉素-链霉素）的 1.5 mL 微量离心管中，置于冰上。将分选后的 EGFP+ 细胞以总共 1 mL 完全 DMEM 接种至 12 孔板的一个孔中，并放入培养箱中进行培养。
      ​注意：在此转导后，通过流式细胞术获得的 EGFP+ 细胞产量通常较低（50,000–100,000 个细胞）。在进入步骤 3 之前，可能需要将细胞培养 10–14 天。

3. miR-200s 的逆转录转染

  1. 使用无核酸酶的 H2O 配制 50 µM 的 miR-200 模拟物储备液。将储备液分装后于 -20 °C 保存，以避免反复冻融。
  2. 将每种 50 µM 的 miR-200 模拟物（miR-200a、miR-200b 和 miR-200c）各取 3 µL 加入 300 µL 无血清培养基中，或取 9 µL 的 50 µM 阴性对照 miRNA 加入 300 µL 无血清培养基中。
  3. 将 6 µL 的 siRNA 特异性转染试剂加入 600 µL 无血清培养基中，混匀后将 300 µL 该混合液分别加入两个离心管中，用于与步骤 3.2 中的两种 miR 混合物分别结合。将步骤 3.2 中的每种 300 µL miR 混合液与 300 µL 转染试剂混合液合并，室温孵育 20 分钟。
  4. 在孵育期间，将第 2 部分中构建的表达 EV 或 GRHL2 的 EGFP+ RD 细胞以 600,000 个细胞/2.4 mL（250 个细胞/µL）的密度重悬于无血清培养基中，每种处理各准备一份。
  5. 在 24 孔板中，将步骤 3.3 中的 miR-200 混合液或阴性对照混合液各取 100 µL 加入六个孔中，随后将每种细胞悬液各取 400 µL 分别加入对应 miR 混合液的三个孔中。
  6. 将细胞在 37 °C、5% CO2 条件下孵育过夜，次日更换为完全补充的 DMEM 培养基。两天后收集细胞，使用适当的缓冲液进行分析（见下文）。RD 肉瘤细胞发生 MET 过程的时间序列成像作为补充材料提供。使用自动活细胞成像仪27，以 10X 物镜每 2 小时对每个孔进行一次成像。

4. RNA 提取、逆转录和 qPCR

  1. 使用标准RNA提取试剂盒，按照制造商说明书提取RNA24。提取的RNA可在-80 °C下长期保存。
  2. 测定RNA浓度。将RNA样品在冰上解冻并操作。为测定RNA浓度，根据制造商方案，使用酶标仪分光光度计在260 nm处测量紫外吸光度。用无核酸酶水将所有样品稀释至最低浓度。
  3. 将总RNA逆转录为互补DNA（cDNA）。在20 µL反应体系中，加入不少于100 ng的总RNA，以及PCR缓冲液、dNTP混合物（100 mM）、随机六聚体引物、逆转录酶和无核酸酶水24。按照制造商方案运行逆转录（RT）程序。cDNA可在-20 °C下长期保存。
  4. 向20 µL反应体系中加入80 µL无核酸酶H2O，稀释至总体积100 µL。
  5. 每份样品中加入5 µL基于荧光嵌入染料的2x qPCR预混液、0.06 µL的10 µM正向和反向引物各一种，以及2 µL稀释后的逆转录反应产物，混匀。
  6. 按照基于荧光的预混液制造商方案运行qPCR程序。
  7. 采用ΔCT法计算mRNA的相对含量，并以GAPDH作为内参进行归一化。对每个处理组的生物学重复样本，绘制平均mRNA表达量±标准差的图表。
    注意：操作RNA时应采取特殊预防措施，避免接触RNase，例如使用无RNase的塑料制品和试剂。非一次性使用的实验设备在使用前应进行处理以去除RNase。

5. 免疫荧光染色

  1. 完成步骤 3.6 后，使用真空抽吸法从 24 孔板中的 RD 细胞中吸除培养基。
  2. 每孔加入 500 µL 的 4% 多聚甲醛（PFA）固定细胞，在室温（RT）下孵育 15 分钟。固定完成后，将细胞置于磷酸盐缓冲液（PBS）中，如需可于 4 °C 下保存过夜。
  3. 每孔加入 500 µL 含 0.2% Triton-X100 的 PBS（PBS+0.2% Triton-X100），在室温下孵育 30 分钟以通透细胞。使用真空抽吸法去除通透液，并用 PBS 洗涤三次。
  4. 每孔加入 500 µL 含 5% 牛血清白蛋白（BSA）的 PBS 进行封闭，在室温下孵育 30 分钟。如需可于 4 °C 下保存过夜。
  5. 配制一抗稀释液。每孔取 200 µL 含 5% BSA 的 PBS 加入 15 mL 圆底离心管中（12 孔共需 2.4 mL），每毫升 5% BSA/PBS 中加入 1 µL 一抗。使用真空抽吸法去除封闭液，每孔加入 200 µL 稀释后的一抗。
    1. 在含 5% BSA/PBS 的溶液中，以 1:1,000 稀释比例加入一抗，于室温孵育 1 小时，或于 4 °C 过夜。孵育结束后，用 PBS 洗涤两次。
  6. 以与上述相同体积的 5% BSA/PBS 配制二抗稀释液。使用 1:2,000 的稀释比例加入远红外荧光染料标记的二抗，同时在混合液中加入 1 µg/mL 的 Hoechst 染料。吸除 PBS 后，每孔加入 200 µL 混合液。
    1. 在避光条件下于室温孵育 1 小时，用 PBS 洗涤三次，将细胞保留在 PBS 中，并用铝箔包裹避光。如需可于 4 °C 下保存。
  7. 在倒置落射荧光显微镜下，使用 594–650 nm 激发波长，以总放大倍数 400X 对细胞进行成像。

6. 蛋白质印迹法

  1. 用预冷的 PBS 将 3.6 中的细胞洗涤两次。在冰上，加入 50 µL 含 1x 蛋白酶抑制剂混合液的 1x RIPA 裂解缓冲液裂解细胞。
  2. 在 4 °C 下轻轻摇动裂解物 15 分钟，将裂解物收集至 1.5 mL 离心管中，然后以高速（20,000 × g）离心 5 分钟以澄清样品。如需长期保存，细胞裂解物可存放于 -80 °C。
  3. 使用 Bradford 法测定总蛋白浓度，并将等量蛋白分装至新的 1.5 mL 微量离心管中。用 RIPA 缓冲液和含 2-巯基乙醇的 3x Laemmli 上样缓冲液将各样品补至相同体积。
  4. 将样品在 1x Laemmli 上样缓冲液中于 95 °C 孵育 5 分钟，随后在 4–12% Tris-甘氨酸凝胶上以 200 V 电泳 45 分钟进行 SDS-PAGE。上样蛋白量因细胞系而异；在某些情况下，检测间充质细胞系中的 E-钙黏蛋白需上样 50–100 µg 总蛋白。
  5. 在 1x Tris-甘氨酸转移缓冲液中，以 50 V 将蛋白转移至硝酸纤维素膜上，持续 2 小时。
  6. 用基于 BSA 的封闭缓冲液在室温封闭膜 1 小时，或在 4 °C 过夜封闭。
  7. 将一抗用 5 mL 封闭缓冲液按 1:1,000 比例稀释，加至膜上，在室温轻柔摇动孵育 1 小时，或在 4 °C 过夜孵育。用含 0.05% Tween-20 的 PBS 洗涤膜 3 次。
  8. 将膜在室温下与红外荧光标记的二抗孵育 1 小时，二抗按 1:20,000 比例稀释于上述封闭缓冲液中。
  9. 用含 0.05% Tween-20 的 PBS 洗涤膜两次，再用 PBS 洗涤一次。
  10. 使用标准红外荧光检测系统对膜成像。

7. 非贴壁依赖性生长实验

注意：有关软琼脂实验方案的详细信息，请参见28。

  1. 将无菌的2倍浓度DMEM培养基在42 °C水浴中预热。在此期间，将预先高压灭菌的1%琼脂糖放入微波炉中加热3分钟，必要时每次再加热30秒，直至完全融化。随后将琼脂糖转移至42 °C水浴中。
  2. 在无菌操作台中，将一个50 mL锥形管置于盛有42 °C水的烧杯内，按1:1比例混合1%琼脂糖与2倍浓度DMEM培养基，每孔6孔板需准备1.5 mL混合液。为避免移液误差和气泡产生，始终额外多准备一些DMEM/琼脂糖混合液。
  3. 将混合液沿孔壁加入，确保无气泡形成，并在室温下静置30分钟。
  4. 在底层凝固的同时，对第3步中转染的各组RD细胞进行处理：吸除培养基，用1 mL PBS洗涤一次，吸除PBS后加入0.2 mL 0.05%胰蛋白酶，于37 °C孵育5分钟。
  5. 用0.8 mL培养基中和胰蛋白酶，并吹打细胞使其形成单细胞悬液。将细胞悬液转移至15 mL锥形管中。
  6. 计数细胞，并计算每孔接种10,000个细胞所需的细胞悬液体积。
  7. 将0.6%琼脂糖放入微波炉中加热3分钟，之后每次加热30秒，直至完全融化。将琼脂糖转移至42 °C水浴中。
  8. 在无菌操作台中，将一个50 mL锥形管置于盛有42 °C水的烧杯内。按1:1比例混合0.6%琼脂糖与稀释后的细胞悬液，每孔6孔板准备1.5 mL混合液。为避免移液误差和气泡产生，始终额外多准备一些细胞悬液/琼脂糖混合液。
    ​注意：此步骤必须在42 °C下操作。温度过低会导致混合液在接种前过早凝固，而高于42 °C则会影响细胞活力。
  9. 通过多次吹打充分混匀细胞，将细胞混合液加入各孔中，确保无气泡形成，并在室温下静置20分钟使其凝固。
  10. 每孔加入2 mL含补充物的培养基，将培养板转移至培养箱中。
    1. 每周更换一次培养基，持续3–4周，或直至形成多细胞克隆。吸除培养基时需小心，避免用真空抽吸触碰琼脂层。也可使用P1000移液器移除上层液体培养基。
    2. 通过加入200 µL硝基蓝四氮唑氯化物溶液（1 mg/mL溶于PBS）对软琼脂平板进行染色，并于37 °C孵育过夜。次日用PBS替换培养基以进行成像。
    3. 在倒置显微镜下以40倍总放大倍数对各孔进行成像。
    4. 使用ImageJ软件分析克隆面积和数量。绘制生物学重复实验的平均克隆数±标准差图表。

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结果

肉瘤细胞中MET诱导的示意图

肉瘤细胞中诱导发生类似MET变化的一般时间线如图1所示。该实验方案首先转导GRHL2（图1A），随后转染miR-200家族成员（图1B）。单独表达GRHL2或miR-200家族成员均无法影响RD细胞的形态，但同时异位表达GRHL2和miR-200家族则可导致RD细胞出现类似上皮样的形态学改变。细胞从梭形转变为更圆润的形态，并表现出增强的细胞间接触（图1C）。

诱导肉瘤细胞发生类似MET的改变

在RD细胞中，GRHL2和miR-200过表达引起的形态学改变伴随着上...

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讨论

肉瘤是一种罕见但具有高度侵袭性的间充质来源肿瘤。尽管起源于间充质谱系，部分肉瘤似乎会发生表型转变，进入更接近上皮样的状态。这种类似MET（间充质-上皮转化）的转换具有预后意义，表现为上皮样特征更强的肿瘤患者其疾病侵袭性较低24。尽管这一现象具有临床相关性，目前仍鲜有研究探讨驱动肉瘤中这些表型转变的分子机制。

为了研究肉瘤细胞中的类似上皮转化（MET）过程，我们通过联合表达上皮因子GRHL2和miR-200家族，建立了一种MET诱导模型。该方法可快速诱导肉瘤细胞向更接近上皮样状态转变，这一转变可通过细胞形态和基因表达的变化加以测定。利用本方案在肉瘤细胞中诱导MET，有助于研究这些转化对驱动肉瘤侵袭性表型（如迁移、侵袭、增殖和抗凋亡）的影响，以及这些生物学变化如何影响药物耐药性。

在上皮来源的癌中，表达一种间充质因子通常就足以诱导EMT14。然而，在这种肉瘤来源的MET模型中，需要同时表达两种上皮因子GRHL2和miR-200s。有趣的...

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披露

作者无任何利益冲突需要披露。

致谢

JAS 感谢杜克癌症研究所、杜克大学泌尿生殖系统肿瘤实验室以及杜克大学骨科系的支持。HL 获得美国国家科学基金会（NSF）理论生物物理学中心（NSF PHY-1427654）和 NSF DMS-1361411 的资助，并获莱斯大学德克萨斯州癌症预防与研究所（CPRIT）癌症研究学者项目支持。KEW 获美国国立卫生研究院（NIH）F32 CA192630 奖项资助。MKJ 和 HL 从与 Mary C. Farach-Carson、J. N. Onuchic、Samir M. Hanash、Kenneth J. Pienta 以及 Donald S. Coffey 的有益讨论中获益。

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材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
Countess 自动细胞计数仪生命技术AMQAX1000
Countess 细胞计数板载玻片InvitrogenC10283
SimpliAmp 梯度PCR仪赛默飞世尔科技A24811
Odyssey FcLI-COR 公司
ViiA7 实时荧光定量 PCR 系统赛默飞世尔科技4453536
PCR 微孔板康宁321-29-051
KAPA SYBR Fast Universal qPCR 试剂盒KAPA BiosystemsKK4602
起始阻断缓冲液（PBS）阻断缓冲液Thermo Fisher37538基于BSA的封闭缓冲液
低电渗琼脂糖Genesee Scientific20-102
10x Tris/甘氨酸/SDS缓冲液伯乐生命科学公司161-0732运行缓冲液
10x Tris/甘氨酸缓冲液伯乐生命科学公司161-0734转移缓冲液
RIPA缓冲液Sigma生命科学SLBG8489
Amersham Protran 0.45 μm 硝酸纤维素GE Healthcare Lifesciences10600012
Quick-RNA MiniPrep 试剂盒Genesee Scientific11-358
Laemmli 样品缓冲液 (4X)伯乐生命医学产品（上海）有限公司1610747
Mini Trans-Blot 转印系统伯乐生命科学公司1703930
Mini-Protean Tetra 电泳槽伯乐生命科学公司1658005EDU
DPBSLife technologies14190-144
0.05% 胰蛋白酶-EDTA生命技术11995-065
DMEMLife technologies11995-065
Lipofectamine RNAi Max赛默飞世尔科技13778150
Lipofectamine 2000 试剂赛默飞世尔科技11668019
青霉素-链霉素生命技术15140-122
miRVana miRNA模拟物阴性对照#1赛默飞世尔科技4464058neg miRNA
hsa-miR-200 mirVana miRNA 模拟物赛默飞世尔科技4464066miR200A
has-miR-200 mirVana miRNA 模拟物赛默飞世尔科技4404066miR200B
has-miR-200 mirVana miRNA 模拟物赛默飞世尔科技4404066miR200C
Opti-MEMLife technologies11088-021无血清培养基
抗E-cadherin抗体BD生物科学610182
抗β-肌动蛋白Santa Cruz Biotechnologysc-69879
抗EpCamAb SerotecMCA18706
抗ZO1Invitrogen402200
IRDye 800WLI-COR 公司925-32210
IRDye 680LI-COR 公司926-32223
抗小鼠 AlexaFluor 647赛默飞世尔科技A211241
抗兔 AlexaFluor 647赛默飞世尔科技ab150075
蛋白酶和磷酸酶抑制剂混合物赛默飞世尔科技1861281
Precision Plus Protein 双色蛋白标准品伯乐生命科学公司161-0374
Partec CellTrics希森美康04-004-232630 μm 滤膜用于流式
GAPDH-FIDTAGCCACATCGCTCAGACAC
GAPDH-RIDTGCCCAATACGACCAAATCC
Ecadherin-FIDTTGGAGGAATTCTTGCTTTGC
Ecadherin-RIDTCGCTCTCCTCCGAAGAAAC
ZEB1-FIDTGCATACAGAACCCAACTTGAACGTC
ZEB1-RIDTCGATTACACCCAGACTGC
NOTCH-FIDTGGCAATCCGAGGACTATGAG
NOTCH-RIDTCTCAGAACGCACTCGTTGAT
硝基蓝四氮唑 SigmaN5514
六亚甲基溴化物SigmaH9268polybrene
3 mL注射器BD生物科学309657
无菌注射器滤器VWR28145-505
5 mL 聚丙烯圆底管352063流式细胞术管
高容量cDNA反转录试剂盒赛默飞世尔科技4368814逆转录试剂盒
4% 多聚甲醛Santa Cruz Biotechnologysc-281612
Triton-X100Sigma93443
牛血清白蛋白SigmaA7906

参考文献

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Formal Correction: Erratum: Induction of Mesenchymal-Epithelial Transitions in Sarcoma Cells
Posted by JoVE Editors on 7/03/2018. Citeable Link.

An erratum was issued for: Induction of Mesenchymal-Epithelial Transitions in Sarcoma Cells. An author name was updated.

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Shenghan Xu

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Shengnan Xu

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