将细胞质Foci分类为哺乳动物应激颗粒的方法

细胞采用许多机制来应对压力。一些反应发生在转录后水平，并涉及调节mRNA翻译和/或稳定性^1,2 。应激调节的mRNA翻译阻滞和降解与特异性非膜细胞病灶的形成相关，其最好的特征是应激颗粒（SGs​​） ³ 。 SG是细胞质焦点，其将非翻译的mRNP浓缩在对胁迫（ 例如，氧化，热休克，营养物饥饿和病毒感染）反应的缓冲细胞中。除了非翻译mRNA之外，SG还含有翻译起始因子，RNA结合蛋白和各种信号转导蛋白。 SG是抑制蛋白质翻译和RNA代谢改变的生物标志物，并与细胞存活和细胞凋亡信号通路有关和核工程⁵ 。

SG是动态实体，它们的形成与细胞翻译的状态紧密相关⁶ 。尽管它们看起来很稳固，但大多数SG蛋白质组件都能快速穿梭进出，停留时间为秒。虽然SG持续了几分钟到几个小时，但其大多数组件都处于快速通量。翻译起始的抑制和随后的翻译多核糖体的拆卸促进了SG的形成;因此，SGs与翻译多核糖体处于平衡状态。这种多聚体/ SG平衡是将真正的 SG与其他应激诱发的病灶区分开来的关键^6,7 。

抑制翻译起始需要转录含有mRNA，翻译起始因子（eIF）和40S核糖体亚基（s）的翻译能力的起始前复合物称为48S复合物）转化为可以聚结成SG 4,6的翻译失活复合物（所谓的48S *复合物）。 SGs通过在48S复合物形成上游的两个不同步骤的翻译阻滞来促进:干扰cap结合eIF4F复合物的功能（ 例如靶向其eIF4A亚基）或翻译起始因子eIF2的α亚基的磷酸化，由一个介导的或更多的四种eIF2激酶。停滞的48S复合物（ 即 40S核糖体亚基和选择的翻译起始因子）的存在是SG8,9的标志。

SG已经与各种病理状态相关联，例如病毒感染，神经变性，自身免疫和癌症3,10,11 ^，ss ="xref"> 12，13。几种SG成分的突变形式与神经变性疾病（ 例如，肌萎缩性侧索硬化症）相关，其中神经元显示可能在神经元死亡中起主要作用的细胞内病理性包涵体¹³ 。一些病毒劫持SG成分以抑制SG形成和增强病毒复制¹⁴ 。最近的研究还将SG与癌症¹⁵联系起来，并将化疗和放疗治疗的癌细胞存活10,16,17,18,19,20。虽然这些发现激发了对SG生物学的极大兴趣，但许多已发表的报告缺乏重要的控制来区分真正的 SG的形成和其他压力引起的病灶。

SG最初描述为由选定的mRNA结合蛋白（RBP）组成的非膜性细胞质病灶，包括T细胞细胞抗原1（TIA-1）和Poly-A结合蛋白（PABP）;翻译起始因素;聚腺苷酸化mRNA;和小核糖体亚基4,6,21,22。传统上，它们的组成通过诸如免疫染色和荧光标记蛋白的异位表达的技术23,24来确定。由于其高度动态的性质，SG蛋白和/或mRNA的免疫定位仍然是检测SG ^23,24的定义方法。迄今为止，许多RBP和其他蛋白质（超过120种不同的蛋白质）被描述为SG组分¹¹ 。多少SG-局部蛋白质以应激依赖性和独立性方式改变其定位，并且可以在其他细胞内区室和灶点积累，选择正确的SG标记物并采用功能标准来区分SG与其他类型的应激诱导灶。 真正的 SGs含有mRNA，翻译起始因子和小核糖体亚基，并且与翻译处于动态平衡。

这个简单的工作流程旨在确定应激诱发的病灶是否真正的 SGs。该工作流程包括使用U2OS细胞的几种实验方法，通常用于研究SG的细胞。这些细胞是理想的，因为它们具有大的细胞质，相对平坦，并且牢固地附着在玻璃盖玻片上。其他细胞类型可用于研究SG，但重要的是要注意，时间，药物浓度和SG-成核蛋白丰度的差异可以改变动力学和组合sition。另外，一些细胞通过形成细胞表面泡泡来响应多聚甲醛固定，然后产生引起一些SG标记物的点状定位的皱纹外观;没有仔细分析，这些可以被分类为SG。这突出了必须评估将应激诱发的病灶识别为真正的 SG所需的所有标准。长春瑞滨（VRB）是一种促进SG ²⁰的癌症治疗剂，以及砷酸钠（SA），一种健壮且性能良好的SG诱导剂，被用作本协议实验的应力。

标准SGs包含多个SG标记（蛋白质和mRNA），共定位于细胞质病灶。该方案同时使用免疫荧光和荧光原位杂交（FISH）检测蛋白质标记和聚腺苷酸化mRNA ^22的定位。简言之，间接免疫荧光使用抗体（即即一级抗体）对于给定的蛋白质是特异的，以在细胞内检测它。然后，附着于荧光染料的二抗（通常是物种特异性）识别第一抗体并揭示靶蛋白定位。荧光显微镜用于检测细胞内的局部信号。使用不同物种产生的抗体并用不同颜色的二级抗体进行检测，可以检测多种抗体的共定位，表明它们的蛋白质靶标位于同一位置²³ 。选择已被验证以在真正的 SG上共定位的标记是重要的。

FISH使用与特定RNA或DNA序列碱基对的标记探针²⁵ 。为了检测mRNA，该方案使用与mRNA的polyA尾杂交（或碱基对）的生物素化寡核苷酸（dT） ₄₀探针（ 即 polyA FISH）。然后使用荧光偶联的链霉亲和素检测生物素化的探针，因为链霉亲和素对生物素具有高亲和力。当评估SG时，重要的是将polyA FISH与免疫荧光检测SG标记物结合，如真正的 SG，两个信号应共定位。

使用该协议，共定位以多种方式进行评估。在多通道（ 即 RGB:红色，绿色和蓝色）图像中，colocalization将改变重叠信号的颜色（ 例如， colocalized红色和绿色出现黄色） ²³ 。另外，使用线扫描分析图形化定量共定位，其中在给定线8,20上测量每个颜色的强度。该协议描述了使用ImageJ ^26的两行扫描分析程序。一个程序是手动的，经过整个过程，另一个使用宏，或者一个自动执行手动步骤的简单程序。重要的是要通过手动程序来了解宏程序。

SGs形成在翻译被压制的单元格中;因此，与未处理的细胞相比，具有SG的细胞应该显示出降低的全局翻译水平。实验上，使用了尿布溴霉素。在固定之前，将嘌呤霉素和埃马汀加入细胞持续一段时间，使嘌呤霉素掺入活跃形成的多肽中，导致终止^27,28 。需要用emetine进行治疗以防止再次起搏²⁹ 。然后可以使用抗嘌呤霉素抗体检测嘌呤霉素，给出活性翻译的快照。使用这种方法是因为它很快，不需要用缺乏特定氨基酸的介质（并且潜在地预处理细胞）的预饥饿，并且揭示了蛋白质翻译的亚细胞定位。已经使用其他方法，特别是使用修饰的氨基酸类似物，例如甲硫氨酸类似物L-叠氮基低聚维生素（AHA），与"click-it"化学^30相结合 ，表明含有SG的细胞显示比相邻细胞³¹低得多的翻译。然而，该技术需要甲硫氨酸饥饿，然后脉冲标记15-30分钟。蛋氨酸饥饿构成额外的压力，而长的标签时间（ 即 15-30分钟）导致测量累积而不是正在进行的翻译，并且还允许新合成的蛋白质从其合成位点移动到其最终目的地内细胞。相比之下，番红霉素更快，并且与任何培养基（例如用于通过葡萄糖饥饿诱导SG的无葡萄糖培养基）相容。

规范SGs处于动态平衡状态积极翻译多核糖体。这可以通过用稳定或不稳定多核糖体的药物处理样品来实验地评估，从而在SG和多核糖体之间平衡²³ 。通过将核糖体"冻结"到mRNA上，环己酰亚胺（或其类似的表现）阻断延伸，从而减少能够形成SG的可用非多核糖体mRNP的库。实验上可以通过以下两种方法使用:在应力之前加入放线菌酮（或埃米汀）以防止SG形成，或者在形成SG之后加入放线菌酮（或埃米汀），即使没有除去应激剂，也会导致SG拆卸停止早产复合物缓慢进入多聚糖部分。相比之下，嘌呤霉素引起过早终止并促进多聚体拆解，增加能够组装成SG的起始mRNA的集合。实验上，嘌呤霉素治疗会增加SG的数量或降低threshold，其响应于分级应激或药物剂量形成。当评估嘌呤霉素的作用时，重要的是使用目的药物的亚最大水平，因为嘌呤霉素预期会增加药物的作用并增加显示SGs的细胞的百分比 - 如果药物不能发生，则不会发生/压力最初导致100％细胞中的SG。这与放线菌酮处理形成对照，当约95％的细胞初始显示SG时，分解SG并且最好地工作，以便可以观察到并且准确地量化最大可能的降低。

该协议提供了研究哺乳动物细胞中SGs的框架。方法包括:（1）免疫荧光染色和ImageJ分析，评估推定的SGs中经典SG相关标记eIF4G，eIF3b和Ras GTPase激活蛋白结合蛋白1（G3BP1）的共定位; （2）寡聚（dT）荧光原位杂交（polyA FISH）检测多聚腺苷酸化mRNA; （3）放线菌酮和嘌呤霉素处理，以确定应激诱导的病灶是否与多核糖体处于动态平衡状态;和（4）番红霉素以评估含有推定的SG的细胞的翻译状态。在一起，这些测定法可以确定应激诱导的病灶是否可归类为真正的 SG。

细胞准备

1. 向24孔板的12个孔中加入高压灭菌的盖玻片， 如图1A所示 ;这可以使用连接到真空的无菌巴斯德吸管来接收每个盖玻片。轻轻点击井的盖玻片释放吸力，允许盖玻片落入井中。
2. 每孔1×10 ⁵ U-2 OS（U2OS）骨肉瘤细胞，最终体积为500μL培养基。将板一侧移动到一边上下几次，以确保细胞均匀分布。
3. 用清洁的P1000小头轻轻按下盖玻片，以确保盖玻片位于井底部，盖玻片下方没有气泡。

2.压力细胞

1. 第二天，目视检查板，以确保细胞均匀分散并均匀地汇合在盖玻片上，作为sa麻烦可能会对结果的重现性产生不利影响。在倒置的组织培养显微镜上使用10X物镜。
2. 将培养基预热至37°C。避免向细胞施加冷或热介质，因为这些会导致冷冲击或热冲击。
3. 在预热的介质中稀释药物。对于每种不同的药物浓度，制备含有500μL培养基的2孔。准备另外500μL以允许在移液时丢失。等分4管，每个含有1.5 mL。
   1. 对于亚砷酸钠:向含有500μL的每个孔中加入1.5μL的100mM亚砷酸钠（终浓度:100μM）或加入0.75μL的100mM亚砷酸钠（终浓度:50μM）。
   2. 对于长春瑞滨:向每个含有500μL的孔中加入22.5μL的10mM长春瑞滨（终浓度:150μM）或加入18.75μL的10mM长春瑞滨（终浓度:100μM）。
      注意:亚砷酸钠是一种良好表征和常用的应激颗粒诱导剂，因此经典地用作阳性对照。
4. 从B1 - 4和C1 - 4井中取出并丢弃培养基。用药物加入培养基并等待60分钟（图1A）。
   1. 向孔B1和B2中加入500μL含有100μM亚砷酸钠的培养基。向孔B3和B4中加入500μL含有50μM亚砷酸钠的培养基。
   2. 向孔C1和C2中加入500μL具有150μM长春瑞滨的培养基。向孔C3和C4中加入500μL含有125μM长春瑞滨培养基的培养基。
5. 在固定前30分钟，用2μL的嘌呤霉素（1.25mg / mL储备）用5μL的放线菌酮（1mg / mL原液）和第4列的孔处理第2列中的孔。在将板放回37℃的培养箱中之前，将板轻轻摇匀。

细胞固定和免疫荧光

1. 丢弃介质并用PBS清洗含有盖玻片的孔。根据所使用的药物，妥善丢弃含有药物的培养基可能很重要。请联系当地的环境安全办公室了解具体说明。为了有效地洗涤，用PBS填充挤压瓶，切开尖端，以便轻轻地流动而不是流动紧密，并且在吸取原始的PBS后，使用它将PBS添加到每个孔中。
2. 使用〜250μL的4％PFA在室温下轻轻搅动固定细胞15分钟。用PFA完全覆盖盖玻片的顶部; 250μL应该是足够的，但如果没有，添加更多。总是避免直接移到盖玻片上，因为一些细胞（或细胞的压力处理）可以改变附着力，而t他强力的移液可以驱除细胞。
3. 取出PFA并正确丢弃。有关如何正确丢弃多聚甲醛的详细信息，请联系当地的环境安全办公室。
4. 加入〜250μL甲醇（-20°C），并在室温下轻柔摆动孵育5 min;这两者都渗透和平坦化细胞。
5. 通过在4°C的RT O / N处理约250μL的5％NHS 1小时，去除并丢弃甲醇并阻断细胞。有关如何正确丢弃甲醇的详细信息，请联系当地的环境保护局。
6. 对于一级抗体，在5％NHS中稀释抗体。
   注意:使用多个SG标记是确认观察到的颗粒是否真正的 SG的关键。可以使用的SG标记的数量取决于显微镜中可用的过滤器。如果标准的绿色，红色和远红色滤光片可用，请以1/250稀释度使用G3BP1，eIF4G和eIF3b。
7. 用PBS清洗孔3次，并孵育每次洗涤5分钟。
8. 对于二次抗体，在5％NHS中稀释所有二级抗体（1/250稀释）和Hoechst染料（1 / 1,000稀释）。
   1. 对于该实验（每个250μL的12个盖玻片 - 总计:3mL的5％NHS），加入以下各物质的12μL:Cy2-小鼠，Cy3-兔和Cy5-山羊（每个的1/250稀释度）并加入3μLHoechst染料。
   2. 在室温下将盖玻片与第二抗体孵育1小时。在此步骤和以下步骤中，通过用盒子覆盖板或通过将箔放置在组织培养皿的顶部来保护样品免受光照。
9. 洗我们用PBS洗3次，每次5分钟。
10. 使用安装介质将盖玻片安装到标有标签的玻璃载玻片上。将安装介质加热到37°C的热块中10分钟;这降低了粘度，并且更容易移液。使用切割的P200尖端，将25μL每个盖玻片的安装介质移至玻片上;假设显微镜平台允许4-8个盖玻片可以装在一张玻璃片上。使用细镊子，将盖玻片从井中转移到滑块，确保将电池侧面朝下放在安装介质上。使用干净的P200提示，向下按盖玻片。
11. 一旦所有的盖玻片都已经安装，使用折叠的实验室组织来清洁多余的安装介质，将实验室组织非常牢固地压在载玻片上。使用含有H ₂ O的挤压瓶冲洗多余的安装介质，然后用​​折叠的实验室组织重复印迹以除去水分。

4. 原位荧光杂交（FISH）

1. 使用步骤1和2.1-4作为指导板并处理细胞;仅需要在第1列中压制细胞，因为在以下实验中只需要3个盖玻片。
2. 确保制备所有缓冲液（ 即 PBS中4％PFA，70％乙醇水溶液，2x盐水 - 柠檬酸钠（SSC）和5％NHS），将甲醇冷却至-20℃，将杂交烘箱加热至合适的温度。
3. 执行步骤3.1-3.3洗涤和固定细胞。
4. 通过加入-20°C甲醇使细胞渗透10分钟。
5. 取出甲醇，并将盖玻片在70％乙醇中孵育。将板放置在4℃过夜。使用石蜡膜密封板，以防止蒸发。
6. 第二天，加入500μL2x SSC，去除乙醇并再次使细胞再水化。在室温下轻轻摇动孵育盖玻片5分钟。
7. 取出2x SSC并加500μL2X SSC。温和搅拌下孵育5分钟。
8. 将一片石蜡膜平放在杂交烤箱的底部。将25μL杂交缓冲液移至每片盖玻片上的石蜡膜上。从24孔培养皿中取出盖玻片（此时，盖玻片是细胞侧向上），并将盖玻片细胞侧放在杂交缓冲液上。在42℃或65℃下进行15分钟。
   注意:在65°C完成此步骤会使细胞RNAs变性;如果polyA被与蛋白质的相互作用掩蔽，则可以改善信号。
9. 在杂交缓冲液中稀释生物素 - 寡核苷酸（dT）探针（100ng /μL），浓度为2ng /μL;每盖玻片25μL就足够了。
10. 对于每个盖玻片，将25μL含有生物素 - 寡糖（dT）的杂交缓冲液移液到石蜡膜上。用镊子拿起盖玻片，轻轻地将盖玻片的边缘接触到实验室组织上以除去多余的物质杂交缓冲液。将生物素 - 寡糖（dT）将盖玻片转移到杂交缓冲液中;记住要保持单元格面朝下。
11. 将盖玻片放在杂交盒中以限制蒸发。在42℃下，将杂交缓冲液中的生物素 - 寡糖（dT）盖玻片孵育60分钟。
12. 将2x SSC置于杂交烘箱中，使其平衡至42℃。
13. 向24孔培养皿中的孔中加入约500μL加热的2x SSC，并使用镊子将盖玻片转移到孔中。孵育10分钟
14. 在42℃下重复上述洗涤步骤两次，然后在室温下重复两次。
15. 完成步骤3.5-3.10，确保使用链霉抗生物素蛋白荧光染料检测生物素 - 寡糖（dT）而不是一种常规抗体。

用于评估转化状态的雷帕霉素测定

1. 板盖U2OS细胞在盖玻片上，如步骤1所示，但每个条件只能盖上一片盖玻片情况，3个盖玻片:未处理的，100μM亚砷酸钠和150μM长春瑞滨）（ 图 1A）。
2. 使用步骤2中的协议应激细胞，完成步骤2.1-2.4。
3. 固定前5 min，加入2μL嘌呤霉素（库存:1.25 mg / mL;稀释2μL，500μL，最终嘌呤霉素浓度为5μg/ mL）和2.9μL的埃米汀（库存:20μg/ mL;加入将2.9μL与已经含有嘌呤霉素的相同溶液）加入到含有0.5mL的每个孔中。
4. 完成上述步骤3.1-3.10，使用抗嘌呤霉素抗体（1/1000稀释）检测嘌呤霉素。理想情况下，在其余通道中使用另外两个SG标记。
5. 当量化嘌呤霉素信号时，使用相同的曝光拍摄所有图像。通过使用最亮（不受压力）的样品并使图像尽可能亮而不饱和，选择此曝光。
   注意:抗嘌呤霉素荧光信号的强度表示随着嘌呤霉素替代氨基酸，正在进行翻译，并入新生蛋白质，并且强制蛋白质的过早终止。

图像采集与分析

1. 量应力颗粒
   1. 为了量化SG，使用40X物镜获取总共> 100个细胞的样品的3 - 5个图像。或者，使用其他目标获取图像，但确保每个盖玻片计数> 100个细胞，并且放大倍数足够大以清楚地显现颗粒。通过将盖玻片分成五个大致相等的区域并从每个区域随机选择一个场（ 图1B ）来实现。同一领域的图像应包括评估标记共定位的所有通道。
   2. 获取所有图像后，合并频道。有些相机软件会自动执行此操作，而其他相机则需要手动合并;这可以做到ImageJ打开所有图像，然后选择[Image |颜色|合并频道]。
   3. 使用Hoechst作为核标记，通过计数细胞核的数量手动计数细胞总数。手动计算每个单元格包含多于两个SG的单元格数。
      注意:例如，使用合并的三通道图像显示G3BP1（绿色），eIF4G（红色）和Hoechst（蓝色），使用蓝色通道计数细胞核（或细胞数）。然后，将SG阳性细胞计数为每个细胞具有两个或更多个黄色焦点的细胞。颗粒将呈现黄色，绿色为G3BP1，红色为eIF4G，如果共定位，则呈黄色。
   4. 通过组合来自3-5个独立区域的数据确定SG阳性细胞的百分比，然后计算:
      SG阳性数/核数）* 100 = SG阳性细胞的百分比
2. 通过线扫描分析评估共定位 - 手动方法
   1. 打开ImageJ的。从（）下载它
   2. 打开ROI管理器:[Analyze |工具|投资回报率经理...]
   3. 在ImageJ中打开合并的图像:[File |打开]。
   4. 使用位于ImageJ工具栏中的线工具，添加一条通过SG的线，确保在SG之前和之后包含。通过点击ROI管理器窗口中的[添加]将此行添加到投资回报率管理器。
   5. 将合并的图像分割为不同的通道，以评估每个标记物对颗粒的定位:[Image |颜色|分裂通道];这将合并的图像分割成三个黑白图像。
   6. 在黑白图像中，确保选中该行;如果图像中出现该行，该行将被选中。如果没有，在ROI管理器窗口中，单击面板中的行;这将突出显示投资回报率管理器窗口中的蓝色线，并使线条在黑白图像上可见。如果行仍然没有出现，请确保"显示所有"是ch进入ROI管理器，然后点击图像中的行。
   7. 分析线的强度:[Analyze |剧情简介];这将显示"绘图配置文件"窗口，其中绘制了信号的强度。
   8. 在"绘图配置文件"窗口中，单击[列表]，该列表将显示包含图形中原始数据的窗口。复制此窗口中的所有数据并将其粘贴到电子表格文件中。为此，请选择窗口中的所有数据:[编辑|全选]。复制日期:[编辑|复制]。打开电子表格文件并粘贴数据:[编辑|糊]。
   9. 分别完成每个通道的步骤6.2.6 - 6.2.8。请确保跟踪正在评估的频道。
   10. 在电子表格中，生成结果的线形图。按[控制]并点击每列顶部的字母，选择包含数据的列。然后，选择线图:[插入|线形图]。
   11. 重复此分析多次独立实验中的微量压力颗粒。
3. 通过线扫描分析评估共定位 - ImageJ插件
   1. 从ImageJ网站下载并安装RGB配置文件工具（https://imagej.nih.gov/ij/macros/tools/RGBProfilesTool.txt）;当正确安装时，工具栏中应显示红色，绿色和蓝色（RGB）的图标。
   2. 在ImageJ中打开图像（ 例如， Tiff，JPG）:[File |打开]。
   3. 单击位于ImageJ工具栏中的RGB图标。
   4. 单击并拖动以添加延伸穿过SG的行，确保包含相邻区域;直方图的图像将显示在弹出窗口中。
   5. 将数据保存为图像:[File |另存为| TIFF]。或者，导出，然后使用上面的步骤6.2.8从另一个图形程序中绘制数据。

应激诱发的灶不一定是SG。 SG被分类为含有mRNA，翻译起始因子和RNA结合蛋白的细胞质病灶，并且与主动翻译处于平衡状态。上述方案可用作模板来表征给定的应激是否诱导真正的 SG。

SG与其他已知的SG标记物共定位，包括蛋白质和mRNA两者。 SA和VRB诱导含有G3BP1，eIF4G和eIF3b的细胞质病灶（ 图2A ）。使用线扫描分析和放大倍率增加的单通道图像来确认这些标记的共定位（ 图2A ）。另外，这些病灶含有如PolyA FISH所示的Mrna，寡核苷酸（dT）信号与G3BP1免疫荧光信号共定位（ 图2B ）。显示polyA-FISH是至关重要的信号与已知的SG标记重叠，因为应激可以促进多种类型的病灶。

SG在翻译抑制状态期间发生。 VRB和SA均促进了翻译抑制状态，如用实验性评估的抗尿黄素（ 图3 ）。 真正的 SGs正在动态平衡，主动翻译多核糖体。 SA-和VRB诱导的SGs与CHX一起溶解，CHX将多聚核苷酸捕获在mRNA上，从而停止多聚体拆解和防止SG（ 图4A，4B ）。相反，用puro处理后，诱导更多的SA和VRB SG，因为puro促进多聚体拆解，从而有利于SG形成（ 图4A，4C ）。

总之，与阳性对照SA一样，VRB诱导真正的 SGs:（1）与已知的SG标记共定位，（2）包括蛋白质和mRNA（ Figu （3）在平移压迫的细胞中发现（ 图3 ），和（4）与主动翻译处于动态平衡状态（ 图4A-4C ）。

图1:实验图。 （ A ）如前所述，将种子细胞置于预先置于24孔板中的盖玻片上。用SA或VRB处理A，B行60分钟，使用浓度如μM所示。 60分钟后，向药物培养基中加入CHX（终浓度为20μg/ mL的第2列）或puro（20μg/ mL嘌呤霉素用于第4列）。在固定和染色之前，继续孵育30分钟。 （ B ）盖玻片图，表示应进行成像计算的字段。盖玻片分为五个大致相等的区域;在每个地区拍摄一幅图像。"http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55656/55656fig1large.jpg"target ="_ blank">请点击此处查看此图的较大版本。

图2:含有SG标记anPoly（A）mRNA的SA和VRB诱导细胞质Foci。 （ A ）对G3BP1（绿色），eIF3b（红色）和eIF4G（蓝色）进行免疫染色的U2OS细胞。细胞用100μMSA或150μMVRB处理60分钟或未处理（对照）。缩放区域被放大（2X），并以黑色和白色（下图）显示为单独的通道。该图表示区域（白线）颗粒的线扫描分析，并显示重叠或共定位的程度。比例尺表示10μm。 （ B ）与免疫染色偶联的PolyA-FISH利用寡聚（dT） 40探针（红色）检测polyA mRNA，使用抗G检测G3BP1（绿色）3BP抗体，使用Hoechst染料（蓝色）检测核DNA。缩放区域（2X），单通道图像和线扫描分析显示共定位。刻度棒=10μm。 请点击此处查看此图的较大版本。

图3:SA和VRB治疗原因翻译抑制。在指定的治疗后，用嘌呤霉素脉冲标记5分钟的U2OS细胞的免疫荧光。嘌呤霉素（绿色），eIF3b（红色）和用Hoechst染色的核DNA（蓝色）。细胞用100μMSA或150μMVRB处理60分钟或未处理（对照）。刻度棒=10μm。 请点击这里查看更大的经文这个数字的离子。

图4:与多聚体动态平衡的SA和VRB诱导细胞质Foci。 （ A ）描述多核糖体/ SG关系的一般方案。 （ BC ）使用Hoechst（蓝色）染色G3BP1（绿色），eIF3b（红色）和核DNA的U2OS细胞。在加入（ B ）CHX（放线菌酮，20μg/ mL），（ C ）puro（嘌呤霉素，10μg/ mL）之前，用100μMSA或150μMVRB处理细胞60分钟或未处理（对照） ），或没有添加剂另外30分钟的孵育。数字对应于代表性实验中具有SG的细胞的百分比。刻度棒= 25μm，（BC）。 请点击这里查看大图版本的这个数字。

作者没有什么可以披露的。