Summary

Analyser av mitokondrie kalsium tilstrømning av isolerte mitokondrier og kultivert celler

Published: April 27, 2018
doi:

Summary

Her presenterer vi to protokoller for måling av mitokondrie Ca2 + tilstrømningen i isolerte mitokondrier og kultivert celler. For isolert mitokondriene, detalj vi en plate leser-baserte Ca2 + import analysen ved hjelp av Ca2 + følsom fargestoff kalsium grønn-5N. For kulturperler celler beskriver vi en AC confocal mikroskopi-metode som bruker Ca2 + fargestoff Rhod-2/AM.

Abstract

Ca2 + av mitokondrier er en viktig funksjon regulere både fysiologiske og patofysiologiske prosesser i et bredt spekter av celler. Muligheten til å måle nøyaktig tilstrømningen og middelklasseinnbyggere av Ca2 + fra mitokondrier er viktig for å bestemme rollen mitokondrie Ca2 + håndtering i disse prosessene. I denne rapporten presenterer vi to metoder for måling av mitokondrie Ca2 + håndtering både isolert mitokondrier og kultivert celler. Vi først detalj en plate leser-basert plattform for å måle mitokondrie Ca2 + opptak ved hjelp av Ca2 + følsom fargestoff kalsium grønn-5N. Plate leser-basert format omgår behovet for spesialisert utstyr, og kalsium grønn-5N fargestoff er ideell for å måle Ca2 + fra isolert vev mitokondrier. For vårt program beskriver vi måling av mitokondrie Ca2 + opptak i mitokondrier isolert fra mus hjertet vev; denne fremgangsmåten kan imidlertid brukes til å måle mitokondrie Ca2 + opptak i mitokondrier isolert fra andre vev som leveren, skjelettlidelser muskel og hjernen. For det andre, beskriver vi en AC confocal mikroskopi-baserte analysen for måling av mitokondrie Ca2 + i permeabilized celler ved hjelp av Ca2 + følsom fargestoff Rhod-2/AM og imaging bruker 2-dimensjonal laser-skanning mikroskopi. Denne permeabilization protokollen eliminerer cytosolic fargestoff forurensning, slik at bestemte opptak av endringer i mitokondrie Ca2 +. Videre gir laser-skanning mikroskopi høy bildefrekvens å fange raske endringer i mitokondrie Ca2 + ulike rusmidler eller reagenser brukes i eksterne løsningen. Denne protokollen kan brukes for å måle mitokondrie Ca2 + opptak i mange celletyper inkludert primær celler som hjerte myocytter og neurons og udødeliggjort linjer.

Introduction

Mitokondrier er kritiske områder intracellulær Ca2 + lagring og signalering. Tiår med forskning har vist at mitokondrier har muligheten til å importere og beslaglegge Ca2 + 1,2. Mitokondrier, er imidlertid ikke bare passiv områder av Ca2 + lagring. Ca2 + i mitokondrie batterirommet utfører grunnleggende signalnettverk funksjoner inkludert regulering av metabolske og aktivering av mitokondrie-mediert celle død, som har vært vurdert tidligere3. Metabolsk regulering øker Ca2 + aktiviteten av tre matrix-lokalisert dehydrogenases tricarboxylic syre syklus samt åndedretts kjeden komplekser, øke mitokondrie energi produksjon4,5 . Mitokondrielt Ca2 + overbelastning og dysregulated mitokondrie Ca2 + håndtering, Ca2 + utløsere mitokondrie permeabilitet overgangen pore (MPTP) åpning, fører til mitokondrie indre membran permeabilization, membran potensielle tap, mitokondrie dysfunksjon, hevelse, brudd og til slutt cellen død6,7,8,9. Dermed påvirker mitokondrie Ca2 + signalering direkte både mobilnettet liv og død stier gjennom metabolske kontroll og MPTP-død akse.

De siste årene, det har blitt raskt voksende interesse for studiet av mitokondrie Ca2 + dynamikken grunn i stor del til identifisering av molekylære bestanddeler av mitokondrie Ca2 + uniporter komplekse, en mitokondrie indre membran transporter som en primære modus for Ca2 + importere i mitokondrie matrix 10,11,12. Identifikasjon av disse strukturelle og regulatoriske underenheter av uniporter har frembragt muligheten for målretting genetisk mitokondrie Ca2 + tilstrømningen å modulere mitokondrie funksjon og dysfunksjon og tilrettelagt studiet av den bidrag av uniporter komplekse og mitokondrie Ca2 + tilstrømningen til sykdom13,14,15. Faktisk har mitokondrie Ca2 + signalering vært innblandet i patologi av et variert utvalg av sykdommer, fra hjerte sykdom til neurodegeneration og kreft16,17,18, 19,20.

Gitt den grunnleggende betydningen av mitokondrie Ca2 + signalering i stoffskiftet og celledød, og kombinert med den store rekkevidden biologiske systemer påvirker som mitokondrie Ca2 + signalering, metoder for å vurdere mitokondrie Ca2 + strøm er av stor interesse. Ikke overraskende, en rekke teknikker og verktøy til å måle mitokondrie Ca2 + er utviklet. Disse omfatter metoder som bruker verktøy som fluorescerende Ca2 +-sensitive fargestoffer21,22 og genetisk kodet Ca2 + sensorer rettet mot mitochondria, som cameleon og aequorin23, 24. Målet med denne artikkelen er å markere ulike metoder og modellere systemer der mitokondrie Ca2 + opptak kan måles. Vi presenterer to eksperimentelle metoder for å vurdere mitokondrie Ca2 + tilstrømningen kapasitet. Bruke cardiac mitokondrier som et eksempel, detalj vi en plate leser-basert plattform for å måle mitokondrie Ca2 + opptak ved hjelp av Ca2 + følsom fargestoff kalsium grønn-5N som er ideell for isolert vev mitokondrier14 . Bruke kulturperler NIH 3T3 celler, beskrive vi også en AC confocal mikroskopi imaging-baserte analysen for måling av mitokondrie Ca2 + i permeabilized celler ved hjelp av Ca2 + følsom fargestoff Rhod-2/AM25.

Protocol

Alle metodene som er beskrevet i denne protokollen er godkjent av institusjonelle Animal Care og bruk komiteen av Emory University. Merk: Den første delen er den eksperimentelle prosedyren for å måle mitokondrie Ca2 + tilstrømning av isolerte cardiac mitokondrier likner en plate. 1. reagenser og løsninger Gjøre 500 mL MS-EGTA buffer for mitokondrie isolasjon: 225 mM mannitol, 75 mM sakkarose, 5 mM 4-(2-hydroxyethyl)-1-piperazineethanesulfo…

Representative Results

Figur 1 viser mitokondrie Ca2 + opptak målinger i isolerte cardiac mitokondrier bruker plate leser-baserte plattformen og Ca2 + farge kalsium grønn-5N. Under kontroll forhold (figur 1A), hjertestans mitokondrier ble suspendert i KCl buffer inneholder kalsium grønn-5N og deretter utfordret med sekvensiell pulser av CaCl2 (5 μL en 0.6 mM CaCl2 løsning) lagt på 30 s, 150 s, 300 s, 48…

Discussion

Her beskriver vi to ulike tilnærminger for å måle mitokondrie Ca2 + tilstrømningen. Plate leser-baserte kalsium grønn-5N metoden skjermer extramitochondrial Ca2 + nivåer og er en Ca2 + opptaksanalyse som er godt egnet for målinger i isolerte mitokondrier. Mens vi har vist representant resultater fra isolert murine cardiac mitokondrier, kan denne analysen være lett tilpasset mitokondrier isolert fra vev med høy mitokondrie overflod inkludert lever, skjelettlidelser muskel og hjern…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet ble støttet av gi finansiering fra American Heart Association (J.Q.K.).

Materials

Olympus FV1000 Laser Scanning confocal microscope Olympus FV1000
Synergy Neo2 Multimode microplate reader with injectors Biotek
Tissue Homogenizer Kimble 886000-0022
22 x 22 mm coverslips Corning 2850-22
96 well plate Corning 3628
6 well plate Corning 3506
Calcium Green-5N Invitrogen C3737
MitoTracker green FM Invitrogen M7514
Rhod-2, AM Invitrogen R1244
DMSO Invitrogen D12345
Pluronic F-127 Invitrogen P3000MP
D-Mannitol Sigma M9546
Sucrose EMD Millipore 8510
HEPES Sigma H3375
EGTA Sigma E8145
Potassium chloride Fisher BP366-500
Potassium phosphate monobasic Sigma P0662
Magnesium chloride Sigma M2670
Sodium pyruvate Sigma P2256
L-malic acid Sigma M1125
Calcium chloride Sigma C4901
Potassium acetate Fisher BP364-500
Adenosine 5′-triphosphate magnesium salt Sigma A9187
Phosphocreatine disodium salt Sigma P7936
Saponin Sigma S7900
Ru360 Calbiochem 557440

References

  1. Deluca, H. F., Engstrom, G. W. Calcium uptake by rat kidney mitochondria. P Natl Acad Sci USA. 47, 1744-1750 (1961).
  2. Lehninger, A. L., Rossi, C. S., Greenawalt, J. W. Respiration-dependent accumulation of inorganic phosphate and Ca ions by rat liver mitochondria. Biochem Biophys Res Co. 10, 444-448 (1963).
  3. Kwong, J. Q. The mitochondrial calcium uniporter in the heart: energetics and beyond. J Physiol. 595 (12), 3743-3751 (2017).
  4. Denton, R. M. Regulation of mitochondrial dehydrogenases by calcium ions. Biochim Biophys Acta. 1787 (11), 1309-1316 (2009).
  5. Jouaville, L. S., Pinton, P., Bastianutto, C., Rutter, G. A., Rizzuto, R. Regulation of mitochondrial ATP synthesis by calcium: evidence for a long-term metabolic priming. P Natl Acad Sci USA. 96 (24), 13807-13812 (1999).
  6. Haworth, R. A., Hunter, D. R. The Ca2+-induced membrane transition in mitochondria. II. Nature of the Ca2+ trigger site. Arch Biochem Biophys. 195 (2), 460-467 (1979).
  7. Hunter, D. R., Haworth, R. A. The Ca2+-induced membrane transition in mitochondria. I. The protective mechanisms. Arch Biochem Biophys. 195 (2), 453-459 (1979).
  8. Kwong, J. Q., Molkentin, J. D. Physiological and pathological roles of the mitochondrial permeability transition pore in the heart. Cell Metab. 21 (2), 206-214 (2015).
  9. Luongo, T. S., et al. The mitochondrial Na+/Ca2+ exchanger is essential for Ca2+ homeostasis and viability. Nature. 545 (7652), 93-97 (2017).
  10. De Stefani, D., Patron, M., Rizzuto, R. Structure and function of the mitochondrial calcium uniporter complex. Biochim Biophys Acta. 1853 (9), 2006-2011 (2015).
  11. Baughman, J. M., et al. Integrative genomics identifies MCU as an essential component of the mitochondrial calcium uniporter. Nature. 476 (7360), 341-345 (2011).
  12. De Stefani, D., Raffaello, A., Teardo, E., Szabo, I., Rizzuto, R. A forty-kilodalton protein of the inner membrane is the mitochondrial calcium uniporter. Nature. 476 (7360), 336-340 (2011).
  13. Pan, X., et al. The physiological role of mitochondrial calcium revealed by mice lacking the mitochondrial calcium uniporter. Nat Cell Biol. 15 (12), 1464-1472 (2013).
  14. Kwong, J. Q., et al. The Mitochondrial Calcium Uniporter Selectively Matches Metabolic Output to Acute Contractile Stress in the Heart. Cell Rep. 12 (1), 15-22 (2015).
  15. Luongo, T. S., et al. The Mitochondrial Calcium Uniporter Matches Energetic Supply with Cardiac Workload during Stress and Modulates Permeability Transition. Cell Rep. 12 (1), 23-34 (2015).
  16. Brown, D. A., et al. Expert consensus document: Mitochondrial function as a therapeutic target in heart failure. Nat Rev Cardiol. 14 (4), 238-250 (2017).
  17. Logan, C. V., et al. Loss-of-function mutations in MICU1 cause a brain and muscle disorder linked to primary alterations in mitochondrial calcium signaling. Nat Genet. 46 (2), 188-193 (2014).
  18. Lewis-Smith, D., et al. Homozygous deletion in MICU1 presenting with fatigue and lethargy in childhood. Neurol Genet. 2 (2), e59 (2016).
  19. Tosatto, A., et al. The mitochondrial calcium uniporter regulates breast cancer progression via HIF-1alpha. EMBO Mol Med. 8 (5), 569-585 (2016).
  20. Cardenas, C., et al. Selective Vulnerability of Cancer Cells by Inhibition of Ca(2+) Transfer from Endoplasmic Reticulum to Mitochondria. Cell Rep. 15 (1), 219-220 (2016).
  21. Dedkova, E. N., Blatter, L. A. Calcium signaling in cardiac mitochondria. J Mol Cell Cardiol. 58, 125-133 (2013).
  22. Florea, S. M., Blatter, L. A. The role of mitochondria for the regulation of cardiac alternans. Front Physiol. 1, 141 (2010).
  23. Palmer, A. E., Tsien, R. Y. Measuring calcium signaling using genetically targetable fluorescent indicators. Nat Protoc. 1 (3), 1057-1065 (2006).
  24. Bonora, M., et al. Subcellular calcium measurements in mammalian cells using jellyfish photoprotein aequorin-based probes. Nat Protoc. 8 (11), 2105-2118 (2013).
  25. Zima, A. V., Kockskamper, J., Mejia-Alvarez, R., Blatter, L. A. Pyruvate modulates cardiac sarcoplasmic reticulum Ca2+ release in rats via mitochondria-dependent and -independent mechanisms. J Physiol. 550 (Pt 3), 765-783 (2003).
  26. Kruger, N. J. The Bradford method for protein quantitation. Methods Mol Biol. 32, 9-15 (1994).
  27. Zazueta, C., Sosa-Torres, M. E., Correa, F., Garza-Ortiz, A. Inhibitory properties of ruthenium amine complexes on mitochondrial calcium uptake. J Bioenerg Biomembr. 31 (6), 551-557 (1999).
  28. Davidson, S. M., Duchen, M. R. Imaging mitochondrial calcium signalling with fluorescent probes and single or two photon confocal microscopy. Methods Mol Biol. 810, 219-234 (2012).
  29. Matlib, M. A., et al. Oxygen-bridged dinuclear ruthenium amine complex specifically inhibits Ca2+ uptake into mitochondria in vitro and in situ in single cardiac myocytes. J Biol Chem. 273 (17), 10223-10231 (1998).
  30. Chamberlain, B. K., Volpe, P., Fleischer, S. Inhibition of calcium-induced calcium release from purified cardiac sarcoplasmic reticulum vesicles. J Biol Chem. 259 (12), 7547-7553 (1984).

Play Video

Cite This Article
Maxwell, J. T., Tsai, C., Mohiuddin, T. A., Kwong, J. Q. Analyses of Mitochondrial Calcium Influx in Isolated Mitochondria and Cultured Cells. J. Vis. Exp. (134), e57225, doi:10.3791/57225 (2018).

View Video