本文介绍了一种利用超声引导将神经母细胞瘤（NB）和尤文肉瘤（ES）细胞（包括已建立的细胞系和患者来源的肿瘤细胞）注射到具有生物学相关性部位的实验方案，以建立可靠的癌症研究临床前模型。
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本文内容
摘要
摘要
抗癌疗法的临床前测试依赖于能够模拟癌症固有特性的相关异种移植模型。标准皮下侧腹模型的优点包括操作简便，以及无需侵入性成像即可监测肿瘤进展和治疗反应。然而，这类模型在转化临床试验中常表现出不一致性，且生物学相关特征有限，转移倾向较低，原因是缺乏原生微环境。相比之下，原位异种移植模型位于肿瘤的天然发生部位，已被证明能够模拟肿瘤微环境，并重现远处转移等重要疾病特征。但这类模型通常需要繁琐的外科手术，麻醉时间长，术后恢复期也较长。为解决这一问题，近期癌症研究人员已采用超声引导注射技术建立用于临床前实验的癌症异种移植模型，该方法可快速、可靠地建立组织靶向的小鼠模型。超声成像还为肿瘤移植和生长的长期评估提供了非侵入性手段。本文描述了利用超声引导将癌细胞注射至肾上腺（用于神经母细胞瘤，NB）和肾包膜下（用于尤文肉瘤，ES）的方法。这种微创方法避免了在特定组织部位进行开放手术植入癌细胞的繁琐过程，显著缩短了病态恢复期。我们介绍了使用已建立的细胞系以及患者来源细胞系进行原位注射的操作流程。目前已有商用试剂盒可用于肿瘤组织解离及细胞荧光素酶标记。通过影像引导注射细胞悬液，可提供一种微创且可重复的临床前模型构建平台。该方法还可用于建立膀胱癌、肝癌和胰腺癌等其他癌症的可靠临床前模型，展现出其在多种癌症模型构建中的巨大潜力。
引言
动物异种移植模型是新型抗癌疗法临床前研究的重要工具。标准的小鼠异种移植模型通常采用细胞皮下侧腹移植，该方法可提供一个高效且易于观察的肿瘤生长监测位点。皮下模型的缺点在于其缺乏肿瘤特异性的生物学特征，这可能限制其转移潜能1。这一局限性可通过使用原位异种移植模型来克服，即在肿瘤的天然组织部位移植肿瘤细胞，从而提供具有转移潜能的相关微环境2。原位异种移植模型能够保留原始的生物学特性，为临床前药物发现提供可靠的模型系统3,4。用于组织定向移植的癌细胞可来源于已建立的细胞系，或来自患者肿瘤组织的原代细胞。与患者来源的异种移植模型相比，来源于癌细胞系的异种移植模型可能表现出与原发肿瘤更高的遗传差异性5。鉴于此，建立患者来源的原位异种移植模型已成为癌症药物研发中测试新型治疗手段的首选标准。
在儿童癌症神经母细胞瘤（NB）中，原位异种移植模型能够重现原发肿瘤的生物学特性，并向NB典型转移部位发生转移6,7。NB起源于肾上腺或沿椎旁交感神经链分布。目前最常见的原位移植方法需要进行开放性经腹腔手术。这类方法通常操作繁琐，动....
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方案
所有工作均按照密歇根大学机构审查委员会（HUM 00052430）的规定进行，并符合大学动物使用与护理委员会（UCUCA）批准的程序。动物医学实验室单位（ULAM）负责动物护理的监督。
所有工作均获得密歇根大学机构审查委员会（HUM 00052430）的批准，并符合所有人类研究伦理委员会的法规要求。 人体细胞被视为潜在的生物危害性材料，因此应遵循贵机构要求的所有特殊预防措施和适当的生物安全操作规范。NSG小鼠免疫系统严重受损，易受环境中常见细菌引起的疾病感染。
在准备移植材料和进行注射操作时，务必始终采用严格的无菌技术。
1. 细胞培养
- 在最低必需培养基中培养已建立的人神经母细胞瘤细胞系（SH-SY5Y、SK-N-BE2 和 IMR32），培养基中添加 10% 胎牛血清、2 mM 谷氨酰胺、100 单位/毫升青霉素和 100 μg/mL 链霉素。IMR32 细胞还需额外添加 1 mM 丙酮酸钠和 0.075% NaHCO₃。3. 所有细胞均在 37 °C、5% CO₂ 条件下培养2 70-80% 汇合度.
- 在补充有10%胎牛血清和6 mM L-谷氨酰胺的RPMI培养基中培养人ES细胞系（TC32、A673、CHLA-25和A4573）。所有细胞均在37 °C、5% CO₂条件下培养。
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结果
采用上述操作流程，在配备加热手术台的专用操作室内，对小鼠进行了超声引导下NB细胞肾上腺植入。放置四肢电极垫以监测小鼠心脏活动（图1A）。通过鼻罩吸入异氟烷维持动物麻醉状态。使用高分辨率超声探头识别左肾，并在肾脏头侧定位其上方的肾上腺（图1B）。在直接可视化引导下，将穿刺针推进至肾上腺内（图1C）。在该技术初期应用阶段，采用亚甲蓝染料与Matrigel的混合物注射，以确认肾上腺定位的准确性。动物被处死后，通过解剖观察肾上腺被膜下是否存在亚甲蓝染料沉积，验证操作成功（图1D）。
每周采用超声成像和生物发光成像监测肿瘤移植情况及生长速率。感兴趣区域的生物发光成像信号以光子数/秒/平方厘米（photons/s/cm²）表示。.......
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讨论
超声引导下植入NB和ES细胞是建立可靠的鼠类异种移植模型以用于癌症生物学临床前研究的一种高效且安全的方法。超声引导组织靶向植入成功的关键在于，操作人员需经过专业培训，具备精确定位目标器官的解剖学知识，以及肿瘤细胞立体定位注射的技术专长。
肿瘤组织的解离是建立所述患者来源异种移植模型的关键步骤。原代肿瘤组织包含可能影响肿瘤摄取或移植效果的细胞微环境及周围间质。解离过程完成后，细胞计数可反映样本中的细胞密度，其中每10 μL含2 × 105 个细胞被视为移植及成功成瘤的理想细胞数量。
通过测量生物发光信号，对细胞进行荧光素酶标记可用于验证肿瘤移植情况并监测肿瘤生长，其中106 至 108 被视为肿瘤摄取的指征9为确保转导成功，通过检测荧光素酶活性进行验证 体外 在细胞注射前，通过免疫荧光、荧光素酶检测试剂盒以及检测细胞的生物发光信号来完成检测。生物发光信号的检测参数保持恒定，以确保每周测量数据的一致性.......
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致谢
本工作获得了罗伯特·伍德·约翰逊基金会/阿莫斯医学教师发展计划、陶布曼研究所以及密歇根大学小儿外科部的支持。作者谨此感谢 Kimber Converso-Baran 和 Marcus Jarboe 博士在超声注射操作及成像平台使用方面提供的协助。我们感谢 Paul Trombley 在图像绘图方面的帮助。同时感谢密歇根大学放射学系提供分子成像中心和肿瘤成像核心设施的使用权限，这些设施部分由美国国立卫生研究院综合癌症中心（NIH grant P30 CA046592）资助。密歇根大学生理表型分析核心设施部分由美国国立卫生研究院（OD016502）和弗兰克尔心血管中心的资助支持。细胞系鉴定工作在密苏里州哥伦比亚市的 IDEXX RADIL 生物研究设施完成。我们感谢 Tammy Stoll、Rajen Mody 博士以及莫特实体肿瘤肿瘤学项目的支持。最后，我们衷心感谢患者及其家属，他们以自身的激励、勇气以及对我们研究工作的持续支持，给予了我们极大的鼓舞。
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材料
| 姓名 | 公司 | 目录编号 | 评论 |
|---|---|---|---|
| 小鼠 | |||
| NOD-SCID | Charles River | 394 | |
| NSG | The Jackson Laboratory | 5557 | |
| 细胞系 | |||
| NB | |||
| IMR-32 | ATCC | CCL-127 | 已建立的人神经母细胞瘤细胞系 |
| SH-SY5Y | ATCC | CRL-2266 | 已建立的人神经母细胞瘤细胞系 |
| SK-N-Be2 | ATCC | CRL-2271 | 已建立的人神经母细胞瘤细胞系 |
| ES | |||
| TC32 | COGcell.ORG | 已建立的人尤文肉瘤细胞系 | |
| A673 | COGcell.ORG | 已建立的人尤文肉瘤细胞系 | |
| CHLA-25 | COGcell.ORG | 已建立的人尤文肉瘤细胞系 | |
| A4573 | COGcell.ORG | 已建立的人尤文肉瘤细胞系 | |
| 细胞系培养基 | |||
| RPMI | Life Technologies | 11875-093 | |
| Matrigel | BD BioSciences | 354234 | |
| 组织解离 | |||
| 解剖工具 | KentScientific | INSMOUSEKIT | |
| 人肿瘤组织解离试剂盒 | MACS Miltenyi Biotec | 130-095-929 | |
| gentleMACS 组织解离仪 | MACS Miltenyi Biotec | 130-093-235 | |
| gentleMACS C 型管 | MACS Miltenyi Biotec | 130-096-334 | |
| 细胞筛 | Corning | 431751 | |
| 荧光素酶标记 | |||
| Lenti-GFP1 病毒 | University of Michigan, Vector Core | 荧光素酶病毒 | |
| Steady Glo-荧光素酶检测试剂盒 | Promega | E2510 | |
| 生物发光成像 | |||
| Ivis Spectrum 成像系统 | PerkinElmer | 124262 | |
| D-荧光素 | Promega | E160X | |
| 麻醉剂 | |||
| 吸入用异氟烷 | Piramal Critical Care Inc | 66794-0017-25 | |
| 超声引导注射 | |||
| Vevo 2100 高分辨率成像系统 | Vevo | 2100 | |
| Hamilton 注射器（27 号针头） | Hamilton | 80000 | |
| 22 号套管针 | BD Biosciences | 381423 | |
| 眼用软膏 | Major Pharmaceuticals | 301909 | |
| Nair | Church & Dwight Co | 脱毛剂 | |
| Aquasonic 100 超声传导凝胶 | Parker | 超声凝胶 | |
| 组织学 | |||
| CD99 | DAKO | M3601 | 一抗 |
| 酪氨酸羟化酶 | Sigma-Aldrich | T2928 | 一抗 |
| 二抗 HRP-聚合物抗体 | Biocare | BRR4056KG | |
| 其他 | |||
| 10 mL 移液管 | Fisher Scientific | 13-676-10J | |
| 5 mL 移液管 | Fisher Scientific | 13-676-10H | |
| 1.5 mL 微量离心管 | Fisher Scientific | 05-408-129 | |
| P1000 移液器 | Eppendorf | 3120000062 | |
| P200 移液器 | Eppendorf | 3120000054 | |
| P1000 移液器吸头 | Fisher Scientific | 21-375E | |
| P200 移液器吸头 | Fisher Scientific | 21-375D | |
| 手持式移液辅助器 | Drummond | 4-000-101 | |
| 数字动物电子秤 | KentScientific | SCL-1015 | |
| 游标卡尺 | Fisher Scientific | 06-664-16 | |
| 6 孔低吸附培养板 | Corning | 07-200-601 | |
| 10 cm 组织培养处理培养皿 | Fisher Scientific | FB012924 | |
| Polybrene | Sigma-Aldrich | TR-1003-G |
参考文献
- Sanmamed, M. F., Chester, C., Melero, I., Kohrt, H. Defining the optimal murine models to investigate immune checkpoint blockers and their combination with other immunotherapies. Ann Oncol. 27 (7), 1190-1198 (2016).
- Fidler, I. J., Hart, I. R.
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