本方案提供了一种可靠的方法,用于建立同时具有人类免疫系统和肝细胞的人源化小鼠模型。双重建免疫缺陷小鼠实现 通过 人肝细胞和CD34的脾内注射+ 造血干细胞易受人类免疫缺陷病毒-1感染,并可重现HIV感染者患者中观察到的肝脏损伤。
本方案提供了一种可靠的方法,用于建立同时具有人类免疫系统和肝细胞的人源化小鼠模型。双重建免疫缺陷小鼠实现 通过 人肝细胞和CD34的脾内注射+ 造血干细胞易受人类免疫缺陷病毒-1感染,并可重现HIV感染者患者中观察到的肝脏损伤。
尽管感染人类免疫缺陷病毒-1(HIV-1)患者的预期寿命有所延长,但肝病已成为其发病的主要原因之一。HIV-1引起的肝脏免疫病理机制仍不明确。通过移植人肝细胞和人免疫系统的小型异种移植动物模型,可重现该疾病发病过程中的人类生物学特征。本文描述了一种通过移植人肝细胞和CD34+造血干细胞/祖细胞(HSPCs)建立双重人源化小鼠模型的实验方案,用于研究HIV感染患者中观察到的肝脏免疫病理变化。为实现双重重建,雄性TK-NOG(NOD.Cg-Prkdcscid Il2rgtm1Sug Tg(Alb-TK)7-2/ShiJic)小鼠经腹腔注射更昔洛韦(GCV)以清除小鼠转基因肝细胞,并使用白消安进行非清髓性预处理,这两种处理均有助于人肝细胞(HEP)的植入和人免疫系统(HIS)的发育。通过检测人白蛋白(ALB)水平评估肝脏细胞植入情况,通过流式细胞术检测外周血中人免疫细胞的存在以确认人免疫系统的建立。本方案所建立的模型再现了HIV-1感染所致肝损伤的多个特征。该模型的建立对于研究肝炎病毒共感染以及抗病毒和抗逆转录病毒药物的评价具有重要意义。
自从抗逆转录病毒治疗问世以来,与单纯HIV-1感染相关的死亡率已显著下降。然而,肝病已成为HIV感染者中常见的发病原因1,2。HIV-1感染合并肝炎病毒感染的情况更为普遍,在美国,约有10%至30%的HIV感染者存在此类合并感染3,4,5。
HIV-1 和肝炎病毒的宿主特异性限制了小型动物模型在研究人类特异性传染病或多方面探究 HIV-1 相关性肝病发病机制中的应用价值。允许移植人类细胞和/或组织的免疫缺陷小鼠(称为人源化小鼠模型)是适用于临床前研究的动物模型。6,7,8自21世纪初人源化小鼠问世以来,已有多个针对胆汁淤积性人类肝毒性、人类特异性病原体(包括HIV-1及HIV相关性神经认知障碍、EB病毒、肝炎)及其他传染性疾病的临床前研究在这些小鼠模型中开展6,9,....
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本方案已获得内布拉斯加医学中心大学机构动物护理和使用委员会(IACUC) 的批准。
注意:在对动物进行实验之前,须获得当地动物护理和使用委员会(IACUC)的批准。
1. 脐带血的处理及人HSPCs的分离
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通过简单的ELISA和流式细胞术,可分别在每一步轻松监测具有人源肝脏和免疫细胞的双人源化小鼠模型的建立情况。定期进行流式细胞术以评估功能性免疫系统的发育情况,并观察HIV感染对免疫细胞的影响。在双人源化小鼠中,功能性免疫细胞在淋巴细胞门控中的比例可介于15%至90%之间。免疫细胞的代表性亚群以点图形式展示(图3)。为评估人源肝细胞的移植情况,每月对小鼠血清进行针对人特异性白蛋白水平的ELISA检测。同时移植了HSPCs和HEPs的小鼠,在移植后一个月时人特异性白蛋白水平范围约为~7 µg/mL至377 µg/mL,并在观察期间(6个月)持续升高(图4)。通过流式细胞术监测HIV感染对双人源化小鼠血液中人源免疫细胞的影响,同时通过人特异性白蛋白ELISA检测肝脏中HEPs的变化。感染5周后,ELISA检测显示HIV-1导致小鼠血清中人源白蛋白水平下降;免疫组织化学分析显示,双人源化小鼠肝组织切片中人源CK18+肝细胞减少(
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在 HIV 感染患者中,肝脏会受到损害和损伤24。尽管已有少数共移植 CD34+ HSPC 和肝细胞的动物模型,但在 HIV-1 存在的情况下用于研究人类肝脏疾病的实验性小型动物模型仍然极为有限7,12,25。在体外实验中,肝细胞被证实可发生低水平的 HIV-1 感染26。同时携带两类人类细胞的人源化小鼠是一种理想的模型。已有研究表明,在仅重建人类免疫系统的小鼠中,当实验性清除人类调节性 T 细胞时,其肝脏会受到 HIV 感染的影响20,27。然而,小鼠与人类肝细胞在免疫和功能特性上的差异,可能是两者对 HIV-1 及免疫细胞反应不同的根本原因。本综述描述了一种同时重建人类免疫系统和肝脏的实验方案,旨在研究在 HIV-1.......
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作者无任何利益冲突需要披露。
本工作由美国国立卫生研究院资助项目R24OD018546(资助对象:L.Y.P. 和 S.G.)支持。作者感谢Weizhe Li博士在手术操作方面的帮助,感谢Amanda Branch Woods理学学士、Yan Cheng在免疫组织化学方面的协助,感谢内布拉斯加大学医学中心(UNMC)流式细胞术研究设施的负责人Phillip Hexley博士、Victoria B. Smith理学学士和Samantha Wall理学学士,以及UNMC高级显微镜核心设施的Janice A. Taylor理学学士和James R. Talaska理学学士提供的技术支持。作者感谢CIEA的Mamoru Ito博士和Hiroshi Suemizu博士提供TK-NOG小鼠,感谢Joachim Baumgart博士提供白消安。作者感谢UNMC的Adrian Koesters博士在稿件编辑方面所做的贡献。
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| 姓名 | 公司 | 目录编号 | 评论 |
|---|---|---|---|
| 27 G1/2" 针头 | BD 生命科学 | 305109 | |
| 30 G1/2" 针头 | BD 生物科学 | 305106 | |
| 5 mL 聚苯乙烯 圆底试管 12 mm x 75 mm 型 | 康宁 | 352054 | |
| BD 1 mL 无针结核菌素注射器 | BD 生物科学 | 309659 | |
| BD FACS array 生物分析仪 | BD 生物科学 | 用于检测洗脱CD34的纯度+ 细胞 | |
| BD FACS array 软件 | BD 生物科学 | 用于分析获取的 CD34 的软件+ FACS 阵列上的细胞 | |
| BD FACS 溶血液 | BD 生物科学 | 349202 | 裂解红细胞 |
| BD LSR II | BD Biosciences | 流式细胞术样本采集仪器 | |
| BD Vacutainer 塑料采血管 | BD 生物科学 | BD 367874 | 采集脐带血 |
| 牛血清白蛋白 | Sigma-aldrich | A9576 | |
| 布托啡诺 | 管制药物与止痛药 | ||
| CD14-PE | BD Biosciences | 555398 | 特异性针对人类 |
| CD19-BV605 | BD 生物科学 | 562653 | 特异性针对人类 |
| CD34 微珠试剂盒,人 | Miltenyi Biotec | 130-046-702 | 用于分离 CD34+ HSPC |
| CD34-PE,人源 | Miltenyi Biotec | 130-081-002 | 用于检测洗脱后CD34纯度的抗体+ 细胞 |
| CD3-AF700 | BD Biosciences | 557943 | 特异性针对人类 |
| CD45-PerCPCy5.5 | BD 生物科学 | 564105 | 特异性针对人类 |
| CD4-APC | BD Biosciences | 555349 | 特异性针对人类 |
| CD8-BV421 | BD 生物科学 | 562428 | 特异性针对人类 |
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| 胎牛血清(FBS) | Gibco | 10438026 | |
| FLOWJO 分析软件 v10.2 | FLOWJO, LLC | 流式细胞术分析软件 | |
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