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方法文章

一种用于筛选小分子抑制剂的NADH偶联ATP酶检测半高通量改良方法

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DOI:

10.3791/60017

2019年8月17日

本文内容

摘要

已将烟酰胺腺嘌呤二核苷酸(NADH)偶联的ATP酶检测法改进用于小分子肌球蛋白抑制剂的半高通量筛选。该动力学检测采用384孔微孔板格式进行,每孔总反应体积仅为20 µL。该平台几乎可适用于所有产生ADP的酶。

摘要

ATP酶利用储存在三磷酸腺苷中的自由能,在体内催化多种不会自发进行的吸能生化过程。这些蛋白质对于细胞生命活动的几乎所有方面都至关重要,包括代谢、细胞分裂、对环境变化的响应以及运动。本文所述方案描述了一种与还原型烟酰胺腺嘌呤二核苷酸(NADH)偶联的ATP酶检测方法,已适用于小分子ATP酶抑制剂的半高通量筛选。作为一种原理验证,该检测方法已应用于心脏和骨骼肌肌球蛋白II——两种以肌动蛋白为基础的分子马达ATP酶。在该检测中,ATP的水解通过酶促反应与NADH的氧化相偶联。首先,ATP酶生成的ADP由丙酮酸激酶(PK)再生为ATP,同时PK催化磷酸烯醇式丙酮酸(PEP)转化为丙酮酸。随后,丙酮酸在乳酸脱氢酶(LDH)作用下被还原为乳酸,同时LDH催化NADH的氧化。因此,ATP浓度的降低与NADH浓度的降低直接相关,后者可通过NADH固有荧光的变化进行监测。只要反应体系中存在足够的PEP,ADP浓度将保持极低水平,从而避免ATP酶被其自身产物抑制。此外,ATP浓度基本保持恒定,从而获得线性的反应进程曲线。荧光信号被连续监测,便于对数据质量进行直观评估,并有助于排除潜在的干扰因素(例如由化合物沉淀或温度变化引起的假象)。

引言

肌球蛋白是一类能将化学能转化为机械能的分子马达,可水解三磷酸腺苷(ATP),从而在真核细胞的肌动蛋白细胞骨架丝上产生定向运动1,2。它们在结构和动力学上已适应多种细胞内功能,例如细胞器运输、肌肉收缩或细胞骨架张力的产生1,2。人类基因组中存在约40个肌球蛋白基因,归属于约12个不同的肌球蛋白类别,共同构成肌球蛋白超家族3,4。不同类别的肌球蛋白成员在多种疾病中发挥着重要作用,包括多种癌症、神经系统疾病、骨骼肌病以及肥厚型心肌病5,6。鉴于这些分子马达在生理和病理过程中具有广泛的功能,它们正日益被视为多种疾病的潜在药物靶点7。近年来,在发现新的肌球蛋白抑制剂8,9,10和激活剂11,以及优化....

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方案

1. 储备溶液与试剂的配制

  1. 通过将结晶 DTT 溶解于蒸馏水中,配制终浓度为 1000 mM 的二硫苏糖醇(DTT)储备液。用 1 M NaOH 溶液调节 pH 至 7.0。分装后于 -20 °C 保存。
  2. 通过将结晶 ATP 溶解于蒸馏水中,配制终浓度为 100 mM 的 ATP 储备液。用 1 M NaOH 溶液调节 pH 至 7.0。分装后于 -20 °C 保存。
  3. 配制含 70 mM 3-(N-吗啉代)丙磺酸(MOPS)、10 mM MgCl2、0.9 mM 乙二醇双(β-氨基乙醚)四乙酸(EGTA)和 3 mM NaN3 的 10× NADH 缓冲液。用 1 M NaOH 溶液调节 pH 至 7.0。4 °C 保存。
  4. 配制含 10 mM MOPS 和 0.1 mM EGTA 的 1× 肌球蛋白缓冲液。用 1 M NaOH 溶液调节 pH 至 7.0。4 °C 保存。使用前加入牛血清白蛋白(BSA)和 DTT,使其终浓度分别为 0.1%(w/v%)和 1 mM。
  5. 配制含 4 mM MOPS、0.1 mM EGTA、2 mM MgCl2 和 3 mM NaN3 的 1× 肌动蛋白缓冲液。用 1 M NaOH 溶液调节 pH 至 7.0。4 °C 保存。使用前加入牛血清白蛋白(BSA)和 DTT,使其终浓度分别为 0.1%(w/v%)和 1 ....

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结果

用于筛选实验的典型板布局图如图1所示。第一行和最后一行分别保留用于NADH校准和阳性对照(20 µM para-氨基布比斯汀,0.5% DMSO)。其余行(B至O)用于测试化合物的抑制活性。在此,从DMSO中10 mM的化合物浓度开始,进行15步连续1:2稀释,并将稀释液从化合物板转移至检测板,使检测板上的最高终浓度化合物浓度为50 µM(含0.5% DMSO)。每两个行用于获取一个化合物的剂量-反应曲线(每个化合物48个数据点)。请注意,板布局图可根据特定研究目标重新设计。例如,若目标是获得大量化合物的单点筛选数据,则可在单个384孔板上测试112种化合物,同时使用相同的阳性对照和NADH校准布局(每种化合物设三个重复)。建议每种化合物(或每个浓度)至少保留3个数据点,并避免将某一种化合物仅布置在板边缘的孔中,因为这些数据点可能受边缘效应影响。为评估边缘效应的影响程度,应首先运行一个仅含阴性对照的完整板。

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讨论

实验方案中的关键步骤

通过仅使用阴性对照(无抑制剂的ATP酶反应)运行多块微孔板来优化板布局。仔细检查反应速率结果中的模式,例如,这些模式可能源于边缘效应和/或亲水表面涂层的不均匀性。 "非结合性" 平皿。如果观察到某种模式,应更换平皿类型和/或调整平皿布局以尽量减少干扰因素。例如,一条典型的剂量-反应曲线(16个浓度,每个浓度3个复孔,共48个数据点)可在384孔板上按三列或两行排列。这两种排列方式分别可能导致6个和4个数据点受到边缘效应的影响。因此,始终优先选择行向排列。

修改与故障排除

请注意,反应全程的荧光信号变化必须呈线性。在反应最初几分钟内,由于温度变化,或在最后几分钟内,由于接近平衡状态,可能会出现非线性现象。如果存在非线性,可调整反应参数(例如稀释肌球蛋白、改变检测温度),或仅对数据的线性部分进行分析。

如果抑制剂与A.......

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披露

作者无任何利益冲突需要披露。

致谢

本工作由美国国家神经疾病与卒中研究所和国家药物滥用研究所资助,项目编号NS096833(CAM)。

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材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
384孔低裙边黑色平底聚苯乙烯NBS微孔板康宁3575
ATP(腺苷-5′-三磷酸)′三磷酸二钠盐水合物SigmaA7699
Aurora FRD-IB 分配器Aurora Discovery, Inc.00017425
Biomek NXP 多通道实验室自动化工作站贝克曼库尔特A31841
BlebbistatinAMRIN/A定制合成
BSA(牛血清白蛋白,无蛋白酶)Akron BiotechAK1391 
Centrifuge 5430 R,制冷型,配备 FA-35-6-30 转子Eppendorf022620663
Centrifuge 5430,非制冷型,配转子 A-2-MTPEppendorf022620568
DMSO(二甲基亚砜) SigmaD2650
DTT(DL-二硫苏糖醇) SigmaD5545
E1 ClipTip 多通道移液器;384 格式;8 通道赛默飞世尔科技4672010
E1 ClipTip 多通道移液器;96孔板格式;8通道赛默飞世尔科技4672080
EGTA(乙二醇双(2-氨基乙基醚)四乙酸)′,N′四乙酸 SigmaE3889
EnVision 2104 多功能酶标仪PerkinElmer2104-0010
甘油 SigmaG2025
LDH(兔肌肉L-乳酸脱氢酶)SigmaL1254
MgCl2.6H2六水合氯化镁 (Magnesium chloride hexahydrate) SigmaM2670
微孔板振荡器VWR  12620-926 
384孔微孔板,聚丙烯材质,小体积,深孔,本色Greiner Bio-One784201
MOPS(3-(N-吗啉代)丙磺酸) SigmaM1254
肌球蛋白马达蛋白(全长)(牛心肌)细胞骨架 MY03
肌球蛋白马达蛋白(全长)(兔骨骼肌)细胞骨架 MY02
NADHβ-还原型烟酰胺腺嘌呤二核苷酸二钠盐水合物SigmaN8129
NaN3 (叠氮化钠) Sigma71289
NaOH(氢氧化钠) SigmaS8045
CFP 470/24 nm 光学滤光片(发射)PerkinElmer2100-5850条形码 240
光学滤光片 Fura2 380/10nm(激发)PerkinElmer2100-5390条形码 112
光学模块:β-内酰胺酶PerkinElmer2100-4270条形码 418
OriginPro 2017 软件OriginLabN/A
para-氨基布雷比斯塔汀AMRIN/A定制合成
段落-硝基布比他汀AMRIN/A定制合成
磷酸烯醇式丙酮酸单钾盐(Phospho(enol)pyruvic acid monopotassium salt)SigmaP7127
PK(兔肌丙酮酸激酶)SigmaP9136
兔肌丙酮粉Pel Freez Biologicals41995-2

参考文献

  1. Heissler, S. M., Sellers, J. R. Kinetic Adaptations of Myosins for Their Diverse Cellular Functions. Traffic. 17 (8), 839-859 (2016).
  2. Hartman, M. A., Spudich, J. A. The myosin superfamily at a glance. Journal of Cell Science. 125 (Pt 7), 1627-1632 (2012).
  3. Berg, J. S., Po....

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重印与许可

标签

NADH II