含脂脂的微流体生产-温度敏感脂质体

摘要

该协议提出了使用交错的刺骨微流体器装置制备热敏脂质体的优化参数。这还允许将多索鲁比辛和丁氨酸绿色共同封装到脂质体中，并产生光热触发的多索鲁比素释放，用于控制/触发药物释放。

摘要

所提出的协议支持高通量连续制备低温敏感脂质体（LTSLs），能够加载化疗药物，如多索鲁比辛（DOX）。为此，将乙醇脂质混合物和硫酸铵溶液注射到交错的刺骨微混剂（SHM）微流体装置中。SHM 可快速混合该解决方案，为脂质体自组装提供均匀的溶剂环境。收集的脂体首先退火，然后透析去除残留的乙醇。通过使用尺寸排除色谱，通过外部溶液的缓冲液交换，建立了硫酸铵 pH 梯度。然后，DOX 以高封装效率（> 80%）远程加载到脂体中。获得的脂质体大小均匀，Z平均直径为100nm。它们能够在轻度高热（42°C）的情况下，通过温度触发的封装DOX的突发释放。Indocyanine 绿色 （ICG） 也可以共同加载到脂质体中，用于近红外激光触发 DOX 释放。微流体方法可确保 LTSL 的高通量、可重复性和可扩展的制备。

引言

LTSL制剂是一种临床相关的脂质体产品，已开发用于提供化疗药物多索鲁比辛（DOX），并允许在临床上达到的轻度高热（T = 41^°C）1高效突发药物释放。LTSL配方包括1，2-二甲酰-sn-甘油-3-磷胆碱（DPPC），脂质脂1-stearoyl-2-羟基-sn-甘油-3-磷脂酰胆碱（MSPC;M 代表"单体"） 和 PEGylates 脂质 1，2-二聚氨酯-sn-甘油-3-磷乙醇胺-N-甲氧（聚乙烯乙二醇）-2000+ （DSPE-PEG₂₀₀₀）。达到相变温度（T_m = 41 °C）时，脂质脂和DSPE-PEG₂₀₀₀一起促进膜孔的形成，导致药物²的爆裂释放。LTSL的制备主要采用批量自上而下的方法，即脂质膜水化和挤出。重新制备具有相同特性和足够数量的大批量用于临床应用^{仍然具有挑战性3。}

微流体学是一种新兴的制备脂体技术，提供可调纳米颗粒大小、可重现性和可扩展性³。一旦优化制造参数，吞吐量可以通过并行化进行扩展，其性能与台秤^3、4、5中准备的属性相同。微流体与传统的散装技术相比，一个主要优势是能够处理小液体体积，在空间和时间上具有高可控性，通过小型化，允许更快的优化，同时以连续和自动化的方式运行⁶。使用微流体装置生产脂质体是通过自下而上的纳米沉淀方法实现的，这种方法更具有时间和能效，因为同质化过程（如挤出和声波）是不必要的^。通常，脂质的有机溶液（如乙醇）与混合无溶剂（如水和亲水有效载荷）混合。当有机溶剂与非溶剂混合时，脂质的溶解度降低。脂质浓度最终达到临界浓度，在沉淀过程触发^7。脂质的纳米沉淀物最终成种，并接近于脂质体。决定脂质体大小和均匀性的主要因素是非溶剂体与溶剂之间的比率（即水与有机流动率;FRR）和溶剂环境的均匀性，在脂质自组装成脂质体^8。

因此，微流体中的高效流体混合对于制备同质脂质体至关重要，混合器的各种设计已应用于不同的应用^9。交错的刺骨微混频器 （SHM） 代表新一代无源混合器之一，可实现高通量（在 mL/min 范围内），具有低稀释系数。这优于传统的微流体流体动力混合装置^8，10。SHM已经图案的刺骨槽，它迅速混合流体通过混沌对流^9，11。SHM 的短混合时间刻度（< 5 ms，小于 10–100 ms 的典型聚合时间刻度）允许脂质自组装发生在均匀的溶剂环境中，产生尺寸均匀分布^为3、12的纳米颗粒。

然而，与传统的脂质体制剂相比，由于胆固醇8缺乏，LTSL的制备并不简单，没有胆固醇^8，脂质二层就容易受到乙醇引起的三位一体13、14、15的相互作用的影响。到目前为止，残留乙醇在脂质体微流体生产过程中的影响还没有得到很好的理解。大多数报告的配方本质上对间念（含胆固醇或不饱和脂质^）16具有抵抗力，这与LTSL不同，它们既饱和又不含胆固醇。

此处介绍的协议使用 SHM 为温度触发释放药物输送准备 LTSL。在所提出的方法中，我们通过动态光散射（DLS）确保微流体制备的LTLS是纳米尺寸（100nm）和均匀（分散<0.2）。此外，我们使用跨膜硫酸铵梯度法（也称为远程装载^）17封装了 DOX，以验证 LTSL 脂质双层体的完整性。DOX 的远程加载需要脂质体保持 pH 梯度，以实现高封装效率 （EE），如果没有完整的脂质双层，这种情况不太可能发生。在这种方法中，与典型的微流体脂质体制备方案不同，在去除乙醇之前，需要退火步骤，以实现远程加载能力;即恢复脂质双层的完整性。

如前所述，在形成LTSL期间同时封装有效载荷的初始解决方案中，也可以引入亲水和疏水性有效载荷。作为概念验证，一种FDA批准的近红外荧光染料（也是一种有前途的光热剂）被引入到初始脂质混合物中，并成功共同加载到LTSLs中。808 nm 激光器用于照射 DOX/ICG 加载 LTSL，并在 5 分钟内成功诱导多氟辛克光热触发的 DOX 爆发释放。

所有仪器和材料均可上市，即使用即用，无需定制。由于配制LTSL的所有参数都进行了优化，按照此协议，对微流体没有事先了解的研究人员也可以准备LTSL，作为热敏药物输送系统的基础。

方案

1. 设备设置

1. 组装注射器泵和 SHM，如下所示。
   1. 使用泵到泵网络电缆（图1，黄色）将辅助注射器泵的"到计算机"端口连接到主注射器泵的"到网络"端口（泵01，用于乙醇脂质溶液）。
   2. 使用 PC 泵网络电缆将主泵的"到计算机"端口连接到计算机的"RS232 串行"端口（图1，蓝色）。
   3. 使用螺母和套圈将油管连接到 SHM 的每个入口和出口。使用另一个螺母和套圈以及工会组件将两个入口的管的端子转换为母 Luer。入口管的较长，更容易连接到注射器（图2）。
2. 设置泵控制软件。
   1. 使用注射器泵的"设置"按钮，分别将主注射器泵和辅助注射器泵的地址分配给"Ad:01"和"Ad:02"。这只需要第一次完成。
   2. 打开计算机上的泵控制软件。应自动检测两个注射器泵，然后发出蜂鸣音。否则，单击"泵"并搜索泵以更新连接。（图3）
   3. 通过选择"HSW 规范-Ject 5 cc （Dia=12.45）"将直径分配给 12.45 （mm）。
   4. 为泵 01（乙醇脂质溶液）分配速率为 0.25 mL/min，为 02 泵（水溶液）分配速率为 0.75 mL/min。流速对应于总流速 （TFR） 1 mL/min 和水-乙醇流速比 （FRR） 3。
   5. 将音量分配给高于 5 mL 的任何值。
      注:考虑到油管的空隙体积，目标输注体积设置大于加载的液体体积。
   6. 为两个泵选择INF（输注）模式。
   7. 按"设置"以确认设置。

2. 准备 LTSL

1. 准备 LTSL10 或 LTSL10-ICG 脂质混合物（见表 1）。
2. 使用两个 5 mL Luer 锁注射器提取 1 mL 的脂质混合物和至少 3 mL 的 （NH₄）₂SO₄溶液。
3. 将注射器的筒形法兰滑到泵的注射器固定器上，将注射器的柱塞法兰滑到泵的推杆块上，将两个注射器安装在直立位置（图 4）。
4. 用水溶液将加热胶带的末端包裹到注射器上。用脂质溶液将加热胶带的另一端和恒温器的温度探头包裹在注射器周围。使用空注射器练习此步骤有助于简化装配过程（图 5A）。
5. 将两个注射器连接到 SHM 相应入口的母 Luer 适配器。确保含有脂质混合物和（NH_4）2SO₄溶液的注射器分别连接乙醇入口和水入口。调整柱塞位置以去除注射器上的气泡（图5B）。
   注:确保注射器仍牢固地放置在泵的注射器固定器上。
6. 使用加热胶带使用 10 s 加热会话将注射器加热到 51°C 以上。让恒温器更新注射器的温度。在以下步骤中重复此步骤，以保持输注期间的温度。
   注意:10 小时后关闭加热胶带，以防止温度过冲，并允许恒温器更新实际温度。加热胶带在温度上升非常快时也应小心处理。由于恒温器更新测量温度的时间延迟，持续加热可能会损坏设备和注射器。
7. 一旦温度高于 51°C，通过按泵控制软件中的"全部运行"来运行注射器泵（图 3）。
8. 确保流体流动无气泡和任何泄漏。将出口中的初始液体体积（约 0.5 mL）作为废物处理。
   注:此初始废物量不确定，取决于设置的内部体积，即液体从注射器通过管道和 SHM 到出口所需的体积。
9. 将液体的其余部分作为脂体样品收集到微离心管或双流小瓶中。
10. 当任一注射器中的液体几乎为空时，暂停/停止输注。
    注:泵应手动停止，因为当注射器空着时，泵可能无法准确检测位置。
11. 将收集的脂体溶液放入60°C水浴中，以退火1.5小时。
    注: 此步骤对于使药物加载到脂体中至关重要。
12. 将溶液转移到透析管。在37°C下对1 L的240 mM （NH₄）₂SO₄进行透析，至少4小时，以获得纯化脂体。
    注: 可以在此处暂停该协议。这一步的脂质体在磷脂的5mM。纯化脂体可储存在4°C。
13. 要清洁 SHM 以重复使用，请用去离子水、乙醇和氮气按顺序冲洗 SHM。

3. 通过跨膜 pH 梯度将 DOX 远程加载到 LTSL

1. 通过使用尺寸排除色谱 （SEC） 建立跨膜 pH 梯度，将 LTSL 的外部缓冲液交换到 HEPES 缓冲盐水 （HBS）。
   1. 在 SEC 列的顶部添加总计 25 mL 的 HBS 以准备该列。允许所有洗脱物通过柱洗脱并释放洗脱物。
   2. 将步骤 2.12 中准备的 1 mL 的透析脂质体添加到柱中，并释放洗液。
   3. 将 1.5 mL 的 HBS 添加到柱中并释放洗头。
   4. 将 3 mL 的 HBS 添加到柱中，并收集 3 mL 的洗机。
      注: 可以在此处暂停该协议。脂质体在此步骤中收集，磷脂为1.67 mM。缓冲交换的脂体可储存在4°C。
2. 用多索鲁比素 （DOX） 孵育 LTSL 并纯化 LTSL。
   1. 将DOX溶液以1:20 DOX-磷脂摩尔比加入1mL的缓冲液交换脂质体溶液（1.67毫摩尔）中，包含在双焦小瓶中。这可以通过添加48.4 μL的1mg/mL DOX溶液（83.4μmol）来实现。
   2. 将双焦小瓶放入 37°C 水浴中 1.5 小时，以便 DOX 加载到脂体中。
   3. 将10μL的脂体与170 μL的HBS和20μL的1%（v/v）Triton X-100溶液混合在黑色96孔板中。对三口井重复上述步骤。这些井对应于"净化前"DOX含量。
   4. 在制备 LTSL10-ICG 时，将 40 μL 的脂体与 160 μL 的 DMSO 混合在一个清晰的 96 孔板中。对三口井重复上述步骤。这些井对应于"净化前"ICG含量。
   5. 如步骤 3.1 所述，纯化脂体溶液。
      注:要重复使用该列以供将来纯化，请先添加 1 mL 的稀释 0.5 M NaOH 溶液，然后再执行步骤 3.1.1，从而从免费 DOX 中清洁该列。免费的DOX红色将变成紫蓝色，并迅速通过柱。
   6. 将30μL的纯化脂体溶液与150μL的HBS和20μL的1%（v/v）Triton X-100溶液混合在黑色96孔板中。对三口井重复上述步骤。这些井对应于"纯化后"DOX含量。
   7. 在 LTSL10-ICG 的情况下，将 40 μL 的纯化脂体溶液与 160 μL 的 DMSO 混合在一个清晰的 96 孔板中。对三口井重复上述步骤。这些井对应于"纯化后"ICG含量。
   8. 使用微孔板读片器_（μex = 485 nm，μem = 590 nm）测量井前（步骤 3.2.3）和之后（步骤 3.2.5）的 DOX 荧光强度。
   9. 通过取纯前和纯后荧光强度的比率，计算DOX（DOX EE）的封装效率。
      
   10. 使用微孔板读卡器（600 至 1000 nm）测量净化前后井的 ICG 吸光度。
   11. 在纯化前后，考虑到净化过程中的稀释系数（3倍），考虑792nm的吸收率，计算ICG（ICG EE）的封装效率。
       

4. 动态光散射 （DLS）

1. 将50μL的脂体溶液（步骤2.12）加入450μL的去离子水。
2. 将比色皿放在 DLS 仪器内，并根据制造商的说明进行测量。
3. 记录每个样品的三个测量值的平均 Z 平均直径和分散度。

5. 差分扫描热度 （DSC）

1. 将1 mL的脂质体样品（步骤2.12）与离心滤芯单元浓缩至0.5 mL（最终脂质浓度为10 mM）。使用固定角度转子，在 7500 x g下旋转约 15 分钟。
2. 将 20 μL 的 （NH₄）₂SO₄溶液和脂体样品转移到两个相应的 DSC 盘中。使用 DSC 样品按压套件使用 DSC 密封盖密封平底锅。
3. 使用差分扫描热量计以 1 °C/min 的加热速率测量从 30°C 到 60°C 的样品。
4. 使用适当的软件分析数据。以相变温度（T_m）作为相变（熔融峰）的开始，通过最大斜率点切线的x截距进行测量。

6. 多索鲁比辛释放

1. 使用水浴在指定温度（37 或 42°C）预热 HBS。准备一个冰水浴，用于淬火样品。
2. 在微离心管中加入100 μL的纯化DOX载脂体（步骤3.2.5）到1.9 mL的HBS中。将管子放入指定温度的水浴中。
3. 立即从管子中取出200 μL的样品，并迅速将其放入冰水浴中，以淬火任何随后的药物释放。此示例对应于初始 （t = 0） 时间点。
4. 在后续时间点（t = 5、10、15、30、60 分钟）提取 200 μL 的样品，并迅速将其放入冰水浴中，以淬火任何药物释放。
5. 将每个时间点的 50 μL 样品与 150 μL 的 HBS 混合在黑色 96 孔板中。使用板式读取器测量 DOX 荧光强度。
6. 将 20 μL 的 1%（v/v） Triton X-100 添加到步骤 6.5 中制备的随机选定井中。使用板式读取器测量这些孔的 DOX 荧光强度。这些值对应于完全释放的时间点（t = = = 100% 释放）。
7. 通过插值每个时间点 （I（t）的荧光强度（与初始 （I（0））和完全释放 （I（*）的值相比，计算和绘制释放的 DOX 百分比。
   

7. 激光加热和触发释放

1. 将水浴温度设置为 37°C，使温度稳定。
2. 将 200 μL 的 DOX 加载 LTSL10-ICG （[ICG] = 10 μg/mL） 添加到一个清澈的 96 孔板中，然后将其放入水浴中，使底部浸入水中。
3. 将激光系统的电流设置为 2.27 A.将激光系统的准直器垂直放置在 96 孔板表面上方 5 厘米处，这相当于 0.5 W/cm²的能量通量 [ 图6] 。
   注意:激光系统的操作应符合相关的激光安全措施。
4. 打开激光，使用光纤温度探头每分钟监控温度。
5. 在 5 和 10 分钟内，从清澈的 96 孔板中取出 10 μL 激光辐照脂体，并与 190 μL 的 HBS 混合，在黑色 96 孔板中为三口孔。
6. 将10μL的脂体与170 μL的HBS和20μL的1%（v/v）Triton X-100溶液混合，用于黑色96孔板中的三口。这些井对应于"100% 释放"DOX 内容。测量 DOX 荧光强度并计算步骤 6.7 中所述的 DOX 释放。

结果

微流体制备LTSL需要DPPC/MSPC/DSPE-PEG2000的脂质组成（80/10/10，摩尔比;LTSL10）。图 7A（左图）显示了步骤 2.9 中已制备的 LTSL10 作为透明且非粘性液体的外观。LTSL10配方是从传统配方LTSL4（DPPC/MSPC/DSPE-PEG 2000，86/10/4，摩尔比）开发的，因为LTSL4形成凝胶状粘性样品，如样品中捕获的大量气泡所示（图7A;右图）。

LTSL10的DLS测量（图7B，红色）表明，LTSL10的Z平均直径和分散度分别为95.28±7.32nm和0.100±0.0...

讨论

提出的协议描述了使用交错的刺骨微混频器（SHM）制备低温敏感脂质体（LTSLs）。LTSL10配方可在临床上达到的42°C高热温度下，在5分钟内释放多索鲁比辛。Indocyanine 绿色 （ICG） 也可以共同加载用于光热加热触发 DOX 的释放。该方法依赖于:（i） 在SHM¹¹中乙醇和硫酸铵溶液的快速混沌混合所提供的均质溶剂环境下，将磷脂自行组装成脂质体;（二） 脂质体退火，以保持多药装载所必需的脂质双层的完整性;和（iii）通过硫酸铵pH梯度¹⁷远程将DOX装载到LTSL中。由于该协议中使用的设备是现成的商用设备，并且参数进行了优化，因此对于没有事先知识或微流体经验的用户来说，这种方法是可管理的。

协议中最重要的步骤之一是确保整个组件得到正确固定，液体可以正确注入（步骤 2.5）。由于脂质体自组装的可重复性依赖于均质溶剂环境，任何不稳定性（如注射器脱落或引入气泡）都会干扰流体流动的稳定性，导致不理想脂质体大小和分散性。这也是步骤 2.8 背后的原理，在步骤 2.8 中，应处理体积...

材料

本文使用的材料清单

姓名	公司	目录编号	评论
1,2-二棕榈酰-sn-甘油-3-磷酸胆碱 （DPPC）	类脂	蛋白 PC 16：0/16：0 （DPPC）
1,2-二硬脂酰-sn-甘油-3-磷酸乙醇胺-N-[甲氧基（聚乙二醇）-2000] （DSPE-PEG2000）	类脂	PE 18：0/18：0-PEG 2000 （MPEG 2000-DSPE）
1-硬脂酰-2-羟基-sn-甘油-3-磷酸胆碱 （MSPC）	Avanti 极性脂质	855775P-500MG	由 Sigma-Adrich 分发;也称为 Lyso 16：0 PC （不要与 14：0/18：0 PC，也称为 MSPC）4
-（2-羟乙基）-1-哌嗪乙磺酸 （HEPES）	Sigma-Aldrich	H3375-100G
适配器，母鲁尔锁至 1/4"-28UNF	IDEX Health &科学	P-624	需要 2 个单元。对于入口
适配器，接头组件，1/4"-28UNF	IDEX Health &科学	P-630	需要 2 个学分。（1 个单元包括 2 个螺母和 2 个密封垫圈）
硫酸铵 （（NH4）2SO4）	Sigma-Aldrich	31119-1KG-M
Bijou 样品瓶	VWR	216-0980	7 mL透明聚苯乙烯样品瓶
离心过滤装置	Sigma-Aldrich	UFC801008	10 kDa MWCO，Amicon Ultra-4 离心过滤器装置
离心机 ThermoFisher	Scientific	Heraeus Megafuge 8R	，配备 HIGHConic III 固定角转子
Cuvette	Fisher Scientific	11602609	一次性聚苯乙烯比色皿，小容量，用于 DLS 测量
透析套件 - Pur-A-Lyzer Maxi	Sigma-Aldrich	PURX12015-1KT	12-14 kDa MWCO
二甲基亚砜 （DMSO）	Sigma-Aldrich	34943-1L-M
DLS 仪器	Malvern Panalytical	Zetasizer Nano ZS90
盐酸阿霉素（DOX）	Apollo Scientific	BID0120
DSC 仪器	TA 仪器	TA Instruments TA Q200 DSC
DSC Tzero 气密盖	TA 仪器	901684.901	用于 DSC 测量
DSC Tzero 平底锅	TA 仪器	901683.901	用于 DSC 测量
DSC Tzero 样品压制套件	TA 仪器	901600.901	用于 DSC 测量
乙醇	VWR	20821.330	绝对值，≥99.8%
FC-808 光纤耦合激光系统	CNI Optoelectronics Tech	FC-808-8W-181315	FOC-01-B 光纤准直器。
套圈，1/4"-28UNF 到 1/16" OD	IDEX Health &Science	P-200	用于出口
光纤温度探头	Osensa	PRB-G40
玻璃交错人字形微混合器 （SHM）	达尔文微流体	字混合器 - 玻璃芯片
加热带	Omega	DHT052020LD	可以用其他注射器加热器代替，例如 "HTC "或 "SRT 系列" ，以减慢加热速度。3V 型号需要手动接线到 240 针插头
吲哚菁绿	Adooq	A10473-100	由 Bioquote Limited（英国）分销
Luer-lock 注射器，5 mL	VWR	613-2043	Hanke Sass Wolf SOFT-JECT 3 件式注射器，外径 12.45 mm
微孔板检测仪	BMG Labtech	FLUOstar Omega	安装有 485 nm（发射）和 590 nm（发射）滤光片
96 孔，黑色，平底	ThermoFisher Scientific	611F96BK	用于微孔板检测仪中的荧光测量
微孔板，96 孔，透明、平底	Grenier	655101	用于吸光度测量酶标仪
螺母，1/4"-28UNF 至 1/16" OD	IDEX Health &Science	P-245	用于阿
PC 到泵网络电缆，7 英尺	World Precision Instruments	NE-PC7	可选：注射泵可以手动作
泵控制软件 - SyringePumpPro 软件许可证，用于 2	个 World Precision Instruments	SYRINGE-PUMP-PRO-02	可选：注射泵可以手动作
用于阿拉丁的泵到泵网络电缆，7 英尺	World Precision Instruments	NE-NET7	可选：注射泵可手动作
体积排阻色谱 （SEC） 色谱柱	GE 生命科学	17085101	PD-10 脱盐柱中的 Sephadex G-25 树脂
氯化钠 （NaCl）	Sigma-Aldrich	31434-1KG-M
氢氧化钠 （NaOH）	Sigma-Aldrich	S5881-500G
注射泵 &电缆 （DUAL-PUMP-NE-1000）	世界精密仪器	ALADDIN2-220/AL1000-220
恒温器温度控制器	Inkbird	ITC-308	可替换为其他注射器加热器套件/恒温器
Triton X-100	Sigma-Aldrich	X100-100ML
管，ETFE（1/16" OD）	IDEX Health &Science	1516
USB 转 RS-232 转换器	World Precision Instruments	CBL-USB-232	可选：用于没有 RS-232 端口的计算机
Water Bath	Grant Instruments Ltd.	新山 Nova 12