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研究文章

通过调控自噬探讨羟基红花黄色素A在膝骨关节炎中的分子机制 通过 HIF-1α/BNIP3 通路的抑制

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DOI:

10.3791/69491

2025年11月4日

本文内容

摘要

羟基红花黄色素A(HSYA)通过增强软骨细胞自噬与增殖,同时抑制凋亡和炎症,缓解膝骨关节炎 通过 HIF-1α/BNIP3 通路抑制

摘要

软骨组织中自噬作用的减弱与膝骨关节炎(KOA)的发生发展密切相关,然而羟基红花黄色素A(HSYA)发挥保护作用的机制尚未完全阐明。本研究分离了人KOA软骨细胞,并将其分为不同处理组,包括正常对照组、空白模型组、HSYA组、缺氧诱导因子-1α(HIF-1α)抑制剂组、自噬诱导剂组、HSYA联合HIF-1α抑制剂组以及HSYA联合自噬诱导剂组。采用ELISA法检测促炎性细胞因子(IL-1β、TNF-α、IL-6)水平,通过Western blotting检测HIF-1α、BNIP3及自噬相关标志蛋白的表达,利用单丹磺酰尸胺染色和透射电子显微镜评估线粒体中的自噬囊泡。与正常对照组相比,空白模型组中IL-1β、TNF-α、IL-6和HIF-1α水平显著升高,同时细胞凋亡率升高、增殖能力下降,且自噬相关蛋白表达下调(P < 0.05)。使用HSYA、HIF-1α抑制剂或自噬诱导剂处理后,自噬相关蛋白表达显著上调,炎症因子水平降低。此外,HSYA联合HIF-1α抑制剂或自噬诱导剂处理效果最为显著,细胞因子释放和细胞凋亡明显减少,软骨细胞增殖能力增强,线粒体自噬囊泡形成增多(P < 0.05)。这些结果表明,HSYA至少部分通过抑制HIF-1α/BNIP3通路,促进软骨细胞自噬,减轻炎症损伤,从而在KOA中发挥软骨保护作用。

引言

膝骨关节炎(KOA)是一种常见的慢性骨科疾病,影响中老年人群,显著降低其生活质量1,2。尽管该病发病率较高,其确切的病因及病理生理机制仍未完全阐明。此外,无论是预防还是治疗方面,均迫切需要深入揭示该疾病的复杂病理基础。近年来备受关注的一个研究领域是自噬在软骨稳态中的作用,越来越多的证据表明,软骨组织中自噬功能减弱可导致KOA中软骨的退变3,4

自噬是一种对维持细胞稳态至关重要的细胞降解过程,在软骨的维持与修复中具有重要意义。在关节软骨内普遍存在的缺氧微环境中,缺氧诱导因子1α(HIF-1α)与腺病毒E1B 19 kDa相互作用蛋白3(BNIP3)信号通路成为调控自噬的关键途径。已在膝骨关节炎(KOA)患者中观察到HIF-1α表达升高,提示该通路的失调可能导致自噬功能受损,进而引发软骨退变5,6,7

针灸、艾灸、草药和推拿是治疗膝关节炎的四种经典中医方法。目前的治疗方法,如非甾体抗炎药、透明质酸注射和关节成形术,已被证明有效,但也存在一定的副作用。8此外,目前尚无推荐的膝骨关节炎常规治疗方法。随着时间推移,作为膝骨关节炎(KOA)常见的补充疗法,中医(TCM)已发展出多种具有治疗KOA潜力的草药制剂。9其中,羟基红花黄色素A因其抗炎和调节自噬的特性而受到广泛关注10,11然而,羟基红花黄色素A(HSYA)对膝骨关节炎(KOA)发挥治疗作用的具体机制,尤其是在通过HIF-1α/BNIP3通路调控自噬方面的机制,尚不明确。因此,本研究聚焦于HSYA对软骨细胞自噬的影响及其与HIF-1α/BNIP3通路的相互作用,探讨其在KOA中的治疗机制。我们假设HSYA通过增强软骨细胞自噬与增殖,同时抑制细胞凋亡和炎症反应,从而缓解膝骨关节炎 通过 HIF-1α/BNIP3 通路抑制

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方案

所有涉及人体样本的操作均经湛江市中心人民医院伦理委员会批准(批准文号:KY-YS-2021-09)。在样本采集前,已从所有参与者处获得书面知情同意。所用试剂和设备列于材料表中。

1. 患者与研究设计

纳入30名被诊断为膝骨关节炎(KOA)并接受全膝关节置换术的患者。队列包括14名男性和16名女性,年龄52-75岁(平均值±标准差:64.3 ± 12.6岁),均符合美国风湿病学会KOA诊断标准12。若患者在手术前2周内使用过非甾体抗炎药或类固醇,或在1个月内接受过关节内注射,则予以排除。

2. 原代软骨细胞培养

手术后立即在无菌条件下采集关节软骨,并置于冷的PBS中。使用无菌手术刀片在冰冷的玻璃板上将软骨切成约1 mm³的碎片,转移至含有10 mL 0.25%胰蛋白酶-EDTA的50 mL离心管中。将离心管置于37 °C、80 rpm的摇动水浴中孵育30分钟,每5分钟轻轻倒置一次以促进消化。吸除上清液,用PBS洗涤组织沉淀一次,于200 × g 离心5分钟。将沉淀重悬于10 mL 0.02% II型胶原酶中,在37 °C条件下振荡消化4小时。每30分钟用移液器吹打悬液数次以促进细胞解离,随后通过70 µm细胞筛过滤,再于200 × g 离心5分钟。将所得沉淀重悬于DMEM培养基中,培养基中添加10%胎牛血清(FBS)、100 U/mL青霉素和100 µg/mL链霉素,接种至T25培养瓶中。细胞在37 °C、5% CO2条件下培养,每2–3天更换一次培养基,实验使用第1–2代细胞。实验分组包括正常对照组、空白模型组、羟基红花黄色素A(HSYA,100 µmol/L)、HIF-1α抑制剂YC-1(10 µmol/L)、雷帕霉素(10 nmol/L)、HSYA + YC-1和HSYA + 雷帕霉素。

3. siRNA 介导的 HIF-1α 和 BNIP3 沉默

将原代软骨细胞以每孔2-5 × 105个细胞的密度接种于6孔板中,在37 °C培养至细胞融合度达到30%-50%。每个孔中,将5 µL的20 µM siRNA溶于250 µL Opti-MEM中,同时将5 µL脂质转染试剂单独稀释于250 µL Opti-MEM中。将两种溶液轻轻混合后,在室温下孵育15-20分钟以形成复合物。弃去原培养基,每孔加入1.5 mL含10%胎牛血清(FBS)的新鲜DMEM培养基,然后沿孔壁缓慢滴加500 µL siRNA-脂质复合物,并轻轻摇动混匀。细胞继续孵育6小时后,更换为完全培养基,继续培养48-72小时。在进行后续处理前,通过qRT-PCR和Western blot检测基因敲低效率。

4. 酶联免疫吸附测定(ELISA)

收集细胞培养上清液,必要时在200 × g 条件下离心5分钟,并用检测缓冲液按1:2比例稀释。IL-1β、TNF-α和IL-6的ELISA试剂盒按照制造商提供的说明书使用。标准品、空白孔和样品均设三个重复孔。底物反应后,需在15分钟内使用酶标仪在450 nm波长下测定吸光度。

5. MTT 检测

将软骨细胞以每孔5,000个细胞的密度接种于96孔板中,每孔加入100 µL完全培养基,分别培养0 h、24 h、48 h或72 h。在每个时间点,向每孔直接加入20 µL MTT溶液(5 mg/mL,溶于PBS),于37 °C孵育30 min,直至孔底出现紫色甲臜结晶。小心吸除上清液,避免扰动结晶,每孔加入150 µL DMSO,并将培养板置于摇床以100 rpm振荡10 min,使结晶完全溶解。使用酶标仪在490 nm处测定吸光度。选择较短的孵育时间以避免高代谢活性细胞产生信号饱和。

6. 流式细胞术

细胞通过胰蛋白酶消化收集,在200 × g 条件下离心5分钟,并用预冷的PBS洗涤两次。将细胞重悬于500 µL结合缓冲液中,浓度约为1 × 106 个细胞/mL,加入5 µL Annexin V-FITC和5 µL PI。轻轻混匀后,室温避光孵育15分钟。使用流式细胞仪分析样品,每份样品至少采集10,000个事件(激发波长488 nm,FITC发射波长530/30 nm,PI > 600 nm)。采用标准软件对凋亡细胞进行定量分析。

7. 蛋白质印迹

细胞用冰冷的PBS洗涤两次,加入含有蛋白酶抑制剂的200 µL RIPA裂解缓冲液,冰上裂解30分钟。用塑料刮棒刮下细胞,反复吹打以降低黏度,然后在4 °C下以12,000 × g 离心10分钟。收集上清液,采用BCA法测定蛋白浓度。取等量蛋白(30 µg)与5×上样缓冲液混合,95 °C加热5分钟,随后在10%-12% SDS-PAGE凝胶中进行电泳分离。浓缩胶电泳电压为80 V,分离胶为120 V;之后在300 mA电流下将蛋白转移至PVDF膜上,持续90分钟。膜在室温下用5%脱脂牛奶封闭1小时,随后在4 °C与一抗(1:1,000)孵育过夜。用TBST洗涤三次后,室温下与HRP标记的二抗(1:5,000)孵育1小时。使用ECL底物显色,并通过化学发光检测系统曝光30-120秒获取图像。采用ImageJ软件对条带强度进行定量分析,以GAPDH作为上样内参。

8. 单丹磺酰尸胺(MDC)染色

使用前立即从原液配制50 µM MDC工作液。细胞在室温下用1 mL 4%多聚甲醛固定10分钟,用PBS洗涤两次后,加入500 µL MDC工作液,在37 °C避光孵育30分钟。再用PBS洗涤两次后,将盖玻片用抗荧光淬灭封片剂封片,并在荧光显微镜下观察(激发波长355 nm,发射波长512 nm)。

9. 透射电子显微镜(TEM)

细胞经200 × g离心5分钟收集并形成沉淀,随后在4 °C条件下用2%戊二醛固定过夜。样品用PBS洗涤3次,每次5分钟,然后在通风橱内于4 °C用1%四氧化锇后固定1小时。通过30%、50%、70%、90%和100%的梯度丙酮溶液进行脱水,每步10分钟。样品先用1:1丙酮/环氧树脂混合液浸透1小时,再用纯树脂浸透过夜。将样品包埋于新鲜树脂中,并在60 °C聚合48小时。使用超薄切片机切取50–70 nm的超薄切片,置于200目铜网上,先用2%醋酸铀染色30分钟,再用柠檬酸铅染色15分钟,随后用蒸馏水洗涤,空气干燥后在80 kV透射电子显微镜下观察。安全提示:戊二醛和四氧化锇具有毒性和挥发性,必须在通风橱内佩戴手套和护目镜操作。废弃物应根据机构安全规程丢弃至指定的危险废物容器中。

10. 统计学分析

所有实验均重复三次。数据以均值 ± 标准差表示。采用单因素方差分析(one-way ANOVA)进行统计学显著性检验,随后进行LSD事后检验,以 P < 0.05 为差异有统计学意义。

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结果

HSYA 对软骨细胞促炎性细胞因子(IL-1β、TNF-α、IL-6)表达的影响
与正常对照组相比,其他各组的促炎性细胞因子(IL-1β、TNF-α 和 IL-6)水平均显著升高(P < 0.05,表1图1A-G)。与空白模型组相比,使用 HSYA、HIF-1α 抑制剂、自噬诱导剂、HSYA + HIF-1α 抑制剂或 HSYA + 自噬诱导剂处理均显著降低了细胞因子水平(P < 0.05)。其中,联合处理组(HSYA + HIF-1α 抑制剂或 HSYA + 自噬诱导剂)进一步降低了细胞因子的表达,与模型组相比下降约 35%–40%(P < 0.05)。在基因干扰实验中(图1H-J),与模型 + 空白组相比,siRNA 沉默 HIF-1α 或 BNIP3 可使细胞因子水平降低约 25%–3...

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讨论

骨关节炎(OA)是一种常见的慢性疾病,显著影响患者的生活质量。在各种OA亚型中,膝骨关节炎(KOA)最为常见,是全球疾病负担的重要组成部分。尽管其发病率较高,但KOA的精确病因及潜在的病理生理机制仍不明确。关节软骨内机械与生化过程之间的复杂相互作用,特别是软骨细胞功能的调控,在KOA的发病机制中起着关键作用。值得注意的是,自噬活性的显著降低已成为KOA发生与进展的关键因素13,14。因此,增强自噬作用为促进软骨细胞存活、减轻疾病严重程度提供了一种有前景的治疗策略。

膝骨关节炎(KOA)的治疗遵循逐步推进的原则。非药物治疗(如减重、锻炼和物理治疗)是治疗的基础。尽管这些方法无副作用且可延缓关节退变,但起效较慢,仅适用于症状较轻的患者。在药物治疗中,外用非甾体抗炎药(NSAIDs)安全性较高,但疗效有限;口服NSAIDs可快速缓解疼痛,但存在胃肠道和心血管系统风险,且不能保护软骨。软骨保护剂(如氨基葡萄糖)安全性良好,但起效缓慢,且其疗效尚存争议。关节腔内注射透明质酸钠...

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披露

作者声明无竞争利益。

致谢

本工作由广东省中医药局资助

(项目编号:20221446)。

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材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
1% 四氧化锇Electron Microscopy Sciences19150用于透射电镜分析样品的进一步固定和染色
2% 戊二醛Sigma-AldrichG5882用于透射电镜样品制备的细胞固定
4% 多聚甲醛ServicebioG1101用于MDC染色和透射电镜样品制备的细胞固定
AG1478Selleck CorporationS100520 mg/kg 静脉注射,大鼠模型中ErbB受体激酶抑制剂
Annexin V-FITC/PI 凋亡检测试剂盒BioswampBS3030用于流式细胞术检测凋亡细胞的染色
自噬诱导剂(RAPA)Sigma CorporationR0395雷帕霉素,自噬诱导剂,在软骨细胞实验中使用浓度为10 nmol/L
Beclin1 抗体Santa Cruz Biotechnologysc-48341用于Western blot检测自噬相关蛋白Beclin1的一抗
BNIP3 抗体Santa Cruz Biotechnologysc-517348用于Western blot检测BNIP3的一抗
二氧化碳培养箱YihengBPN-150CW用于细胞培养
二甲基亚砜(DMSO)Sigma-AldrichD2650在MTT实验中溶解甲臜晶体
DMEMBeyotimeC0001细胞培养基,添加10% FBS用于软骨细胞培养
ELISA酶标仪Thermo Fisher ScientificMultiskan FC用于ELISA和MTT实验中OD值的测定
增强型化学发光(ECL)试剂Thermo Fisher Scientific32106用于Western blot中蛋白条带的显影
环氧树脂(EPON812)Electron Microscopy Sciences14120用于透射电镜切片样品的包埋
FBSBeyotimeC0205胎牛血清,添加至DMEM中以提供软骨细胞营养
流式细胞仪Beckman(文中提及用于凋亡检测)CytoFLEX S检测软骨细胞凋亡率及细胞标志物
荧光显微镜OlympusIX73观察MDC染色的自噬囊泡
凝胶成像系统Bio-RadChemiDoc XRS+捕获并定量Western blot中的蛋白条带
HIF-1α 抗体Santa Cruz Biotechnologysc-13515用于Western blot检测HIF-1α的一抗
HIF-1α 抑制剂(YC-1)Selleck CorporationS1047HIF-1α 通路抑制剂,在细胞实验中使用浓度为10 μmol/L
高速冷冻离心机Eppendorf5430R用于组分分离
HRP标记的二抗Jackson ImmunoResearch115-035-003结合一抗,用于Western blot中的信号放大
IL-1β ELISA试剂盒Shenggong BiologyC5236通过ELISA定量细胞上清液中IL-1β 水平
IL-6 ELISA试剂盒Shenggong BiologyC5237通过ELISA定量细胞上清液中IL-6水平
LC3 抗体Santa Cruz Biotechnologysc-398822用于Western blot检测自噬相关蛋白LC3的一抗
Lipofectamine 3000 试剂Thermo Fisher ScientificL3000001基于脂质的转染试剂,用于转染
单丹磺酰尸胺(MDC)Sigma-AldrichD40080.05 mol/L,用于荧光显微镜下自噬囊泡的染色
MTT试剂BeyotimeC00090.5 mg/mL,用于MTT实验评估软骨细胞增殖
NanoDrop 2000Thermo Fisher ScientificND-1000测定RNA浓度
NRG1 ELISA试剂盒Abcam (UK)ab213961通过ELISA测定心肌组织中NRG1浓度
P62 抗体Santa Cruz Biotechnologysc-28359用于Western blot检测自噬相关蛋白P62的一抗
磷酸化ErbB4(p-ErbB4)抗体AffinityAF3445用于Western blot检测活化ErbB4的一抗
PrimeScript RT 试剂盒TaKaRaRR047A将RNA逆转录为qPCR实验提供模板
实时定量PCR系统Bio-RadCFX96用于RT-PCR检测
重组人NRG1(rh-NRG1)R&D Systems396-HB5 mg/kg 静脉注射,用于在大鼠模型中激活NRG1/ErbB4通路
RIPA裂解缓冲液MeilunbioMA0151含蛋白酶/磷酸酶抑制剂的裂解缓冲液,用于蛋白提取
羟基红花黄色素A(HSYA)成都曼思特生物科技有限公司Must-160601来源于红花(Carthamus tinctorius L.)的生物活性成分,在软骨细胞处理中使用浓度为100 μmol/L
SDS-PAGE设备Bio-RadMini-PROTEAN Tetra按分子量分离Western blot中的蛋白质
TB Green Premix Ex Taq IITaKaRaRR820A用于qPCR实验
TNF-α ELISA试剂盒Shenggong BiologyC5238通过ELISA定量细胞上清液中TNF-α 水平
总ErbB4抗体Proteintech19943-1-AP用于Western blot检测总ErbB4的一抗
透射电子显微镜(TEM)Hitachi(文中提及用于自噬囊泡观察)H-7650在超微结构水平观察线粒体中的自噬囊泡
Trizol试剂Thermo Fisher Scientific15596026用于RNA提取
胰蛋白酶-EDTAGibco (Thermo Fisher)25200056用于关节软骨的酶消化以分离软骨细胞
II型胶原酶(0.02%)Worthington BiochemicalCLS-2消化软骨组织以分离软骨细胞
β-catenin 抗体Santa Cruz Biotechnologysc-7963用于Western blot归一化的内参抗体

参考文献

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