Name: 肢体缺血小鼠模型 (视频) | JoVE Journal
Uploaded: 2009-01-21T00:00:00.000+00:00
Duration: 12 min 51 s
Description: 学习小鼠单侧后肢缺血手术模型，通过结扎股动脉诱导缺血并使用激光多普勒灌注成像进行确认。该模型为研究外周动脉疾病和血管再生提供了可靠的实验方法。

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

作者感谢Andrea Axtell、Satoshi Itoh博士、Jeff Velotta博士、Grant Hoyt、Robert C. Robbins博士、Jin Yu博士、Tim Doyle博士以及斯坦福大学小型动物影像中心提供的技术支持。作者还感谢A.M. Bickford, Inc.对兽医设备的支持。本研究得到了美国国立卫生研究院研究基金（R01 HL-75774、R01 CA098303、R21 HL085743、1K12 HL087746）、加州大学加州烟草相关疾病研究项目（15IT-0257和1514RT-0169）以及加州再生医学研究所（RS1-00183）的资助。N.H. 获得美国心脏协会基金资助。

1. 单侧后肢缺血的诱导
<ol>
<li> 本手术所需的手术器械包括：精细尖头镊子、尖头镊子、弹簧剪、手术剪、持针器和牵开器。我们使用回形针自制牵开器，因其尺寸小于市售的牵开器。手术前需通过高压灭菌器或热珠灭菌器对这些器械进行灭菌。本手术还需要电凝器和无菌精细尖头棉签。建议在手术过程中根据需要对器械尖端进行重复灭菌。</li>
<li> 器械准备就绪后，将小鼠放入麻醉诱导舱中，以1 L/min的流速通入含1–3%异氟烷的100%氧气。</li>
<li> 将小鼠留在诱导舱内直至其对外界刺激无反应。随后将动物从诱导舱中取出。建议在打开舱盖前先用气体冲洗麻醉舱，以减少操作者接触异氟烷。</li>
<li> 然后将动物仰卧位放置于术前操作台，并连接持续气流的异氟烷麻醉系统。使用电动剃毛器去除后肢毛发，再涂抹脱毛膏以彻底清除残留毛发。</li>
<li> 将小鼠仰卧位置于手术台上覆盖有无菌布的加热垫上，并连接持续气流的异氟烷麻醉系统。用胶带伸展并固定后肢。固定后，使用碘伏和酒精交替擦拭皮肤三次进行消毒。在后续手术过程中，使用解剖显微镜在10倍或20倍放大下观察后肢区域，以获得清晰的放大视野。</li>
<li> 使用精细镊子和手术剪，从膝关节向内侧大腿方向做一长约1 cm的皮肤切口。</li>
<li> 使用磷酸盐缓冲液（PBS）湿润的精细尖头棉签，轻轻擦除股部肌肉周围皮下脂肪组织。</li>
<li> 接着，横向使用电凝器切开并分离皮下脂肪组织，以暴露其下方的股动脉。</li>
<li> 使用牵开器撑开切口，以便更清晰地观察下肢血管结构。</li>
<li> 使用精细镊子和精细尖头棉签，轻轻穿破膜性股鞘，暴露神经血管束。</li>
<li> 然后，使用一套洁净的精细镊子和棉签，在靠近腹股沟的近端位置将股动脉与股静脉及神经分离。分离后，在股动脉近端下方穿入一根7-0丝线缝线。使用双结结扎近端股动脉。结扎位置应尽可能靠近切口近端，以便为第二次结扎及中间待切断的血管段保留足够长度。</li>
<li> 在靠近膝关节的远端位置，将股动脉与股静脉分离。在股动脉远端、腘动脉近端下方穿入一根7-0缝线，使用双结结扎该血管。</li>
<li> 在第一道结扎线近端稍远处，用第二道双结结扎远端股动脉。这第二道缝线将在切断血管时用于夹持动脉。</li>
<li> 同样，为便于夹持，在第一道结扎线远端稍近处，用第二道双结结扎近端股动脉。</li>
<li> 使用精细尖头棉签和一对弹簧剪，在远端与近端结扎线之间的股动脉段进行切断。操作时需小心，避免刺破股静脉壁。</li>
<li> 移除牵开器，使用5-0 Vicryl缝线关闭切口。此类缝线无需后期拆除，因其可自行吸收。</li>
<li> 切口关闭后，将动物置于恢复笼内覆盖有无菌布的加热垫上，并持续监测直至清醒。</li>
<li> 动物恢复1小时后，进行激光多普勒血流灌注检测，以确认缺血模型的成功建立。</li>
</ol>
2. 激光多普勒血流灌注
<ol>
<li>开始激光多普勒灌注步骤时，将小鼠放入麻醉诱导室中，使用1–3%异氟烷（溶于100%氧气），气体流速为1 L/min。</li>
<li>将小鼠留在诱导室内直至其对外界刺激无反应。随后将动物从诱导室中取出。建议在打开盖子前先用气体冲洗麻醉箱，以减少操作者接触异氟烷。</li>
<li>将动物置于连接持续异氟烷气流的术前操作台上。使用电动剃毛器去除后肢毛发，必要时再使用脱毛膏进一步处理。</li>
<li>脱毛完成后，将动物置于37°C加热板上，在持续异氟烷麻醉下维持5分钟。监测核心体温以确保体温正常，因为温度变化会显著影响灌注水平。</li>
<li>5分钟后，将动物仰卧位放置于非反光、吸光表面（如绿色布料）上，并连接持续异氟烷气流，伸展后肢。</li>
<li>接下来，打开激光多普勒成像仪及图像采集软件，并初始化软件。设定视野大小和分辨率。为便于后续分析，建议在不同动物之间保持一致的视野范围和像素密度。</li>
<li>新建文件，点击“开始”以启动图像数据采集。通常成像仪可自动检测小鼠距离，但如提示，需手动输入动物与成像仪之间的距离。激光将标示出视野边界，随后开始采集数据。</li>
<li>数据采集完成后，图像将显示一系列颜色，反映后肢血流灌注水平。可根据特定灌注范围设定颜色标尺，以便更准确地比较不同动物之间的数据。</li>
<li>数据采集结束后，保存文件。</li>
<li>随后将动物放回恢复笼中，并持续监测直至完全清醒。</li>
<li>分析数据时，使用分析软件中的阈值调节功能去除背景噪声。通常0.2的阈值为合理选择。选择两个感兴趣区域（ROIs），分别覆盖每侧后肢区域。可采用多种解剖标志以标准化不同肢体和动物间的ROI。随后计算ROI内的平均灌注值及其变异性，即可方便地得出缺血肢体与对照肢体之间的灌注差异和灌注比值。</li>
<li>该操作可重复进行，以追踪后肢灌注随时间的变化。在预定时间点，可处死动物以评估组织功能，并与灌注成像数据进行比较。</li>
</ol>
3. 代表性结果：
后肢血管系统的解剖结构如图12所示。图2展示了股动脉切除术后后肢的代表性示意图。为确认后肢缺血的建立，激光多普勒灌注成像分析显示，与对照侧肢体相比，缺血侧肢体的血流显著减少，如图3所示。
<img src="/files/ftp_upload/old/1035_2009_1_26_9/figure1_1035.png" alt="显示股动脉、股静脉、股神经以及近端和远端结扎部位的手术解剖图。" width="600" height="406" data-altupdatedat="1787630408000" data-alt="图1">
图1. 后肢血管系统的解剖结构。星号标示了为诱导后肢缺血而进行结扎的位置。
<img src="/files/ftp_upload/old/1035_2009_1_20_7/Niiyama_HLI_Fig2.png" alt="实验手术示意图中股动脉近端和远端的结扎；血管手术操作。" width="600" height="450" data-altupdatedat="1787630408000" data-alt="图2">
图2. 示意图显示股动脉在近端和远端结扎并切除股动脉后下肢的解剖结构。
<img src="/files/ftp_upload/old/1035_2009_1_20_8/Niiyama_HLI_Fig3.png" alt="缺血前后血流比较，血管变化的热成像图。" width="600" height="256" data-altupdatedat="1787630408000" data-alt="图3">
图3. 激光多普勒成像显示左后肢缺血诱导前后血流情况（箭头所示）。

<ol><li>Huang, N. F., Niiyama, H., De, A., Cooke, J. P., , <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transplantation+and+non-invasive+tracking+of+embryonic+stem+cell-derived+endothelial+cells+for+treatment+of+hindlimb+ischemia%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Transplantation and non-invasive tracking of embryonic stem cell-derived endothelial cells for treatment of hindlimb ischemia.</a> J Vis Exp. , (2008).</li>
<li>Cook, M. J. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aCook%2C+MJ+%22The+anatomy+of+the+laboratory+mouse%22">The anatomy of the laboratory mouse</a>. , Academic Press. New York. (1976).</li>
<li>Niiyama, H., Kai, H., Yamamoto, T., Shimada, T., Sasaki, K., Murohara, T., Egashira, K., Imaizumi, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Roles+of+endogenous+monocyte+chemoattractant+protein-1+in+ischemia-induced+neovascularization%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Am.+Coll.+Cardiol%22%5BJournal%5D)">Roles of endogenous monocyte chemoattractant protein-1 in ischemia-induced neovascularization.</a> J. Am. Coll. Cardiol. 44, 661-666 (2004).</li>
<li>Dokun, A. O., Keum, S., Hazarika, S., Li, Y., Lamonte, G. M., Wheeler, F., Marchuk, D. A., Annex, B. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+quantitative+trait+locus+%28LSq-1%29+on+mouse+chromosome+7+is+linked+to+the+absence+of+tissue+loss+after+surgical+hindlimb+ischemia%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">A quantitative trait locus (LSq-1) on mouse chromosome 7 is linked to the absence of tissue loss after surgical hindlimb ischemia.</a> Circulation. 117, 1207-1215 (2008).</li>
</ol>

在设计和实施后肢缺血模型时，需考虑一些可能的变异来源。首先，缺血程度可能因结扎位置与侧支血管位置的关系而有所不同。因此，为了保证模型的一致性，动物应接受相同水平的动脉结扎。缺血恢复过程中的另一个变异来源与动物年龄有关：年轻动物（6–8周龄）的恢复速度更快且更完全，而年老动物（8–10月龄）则较慢，这一差异可通过血流动力学指标（如激光多普勒灌注成像）或功能学指标（如跑步机测试）进行评估。在评估促血管生成因子的研究中，使用年老动物可能更为合适，因为治疗干预后组间差异更明显。相反，在评估抗血管生成因子的研究中，则可能更适合使用年轻动物，以最大化效应量3。
若操作正确，应极少出现出血、感染或死亡等并发症。若因意外损伤股静脉或其他血管导致出血，应使用无菌棉签或纱布对出血部位施加适度压力，直至出血停止。出现感染迹象的动物应使用抗感染药物进行治疗。出现明显坏疽的动物可能需要实施安乐死。这种并发症在老年动物以及某些品系（如 BALB/c 小鼠4）中更为常见。此外，后肢缺血模型可能引起轻度至中度疼痛。因此，应根据 IACUC 的建议，按需给予布托啡诺或卡洛芬等镇痛药物以缓解疼痛。
综上所述，我们展示了一种在小鼠后肢缺血模型中研究外周动脉疾病（PAD）的简单且可重复的方法。结合激光多普勒成像分析的后肢缺血模型是研究血管病理变化及评估潜在治疗手段的优良体系。

<table><tbody><tr><td>手术器械</td><td>工具</td><td>Fine Science Tools</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Constix 棉签</td><td>工具</td><td>Contec</td><td>SC-4</td><td></td></tr><tr><td>聚维酮碘（碘伏）</td><td>试剂</td><td>PDI</td><td></td><td></td></tr><tr><td>70% 酒精</td><td>试剂</td><td>Kendall</td><td></td><td></td></tr><tr><td>磷酸盐缓冲液</td><td>试剂</td><td>Invitrogen</td><td></td><td></td></tr><tr><td>7-0 丝线缝合线</td><td>工具</td><td>Genzyme</td><td></td><td></td></tr><tr><td>5-0 薇乔缝合线</td><td>工具</td><td>Ethicon Inc.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>电动剃须刀</td><td>工具</td><td>GE Healthcare</td><td></td><td></td></tr><tr><td>电灼器</td><td>工具</td><td>Baxter International Inc.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>激光多普勒及 PeriScan PIM 3 系统</td><td>设备</td><td>Perimed</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

下肢缺血小鼠模型

Murine Model of Hindlimb Ischemia 

在美国，外周动脉疾病（PAD）影响约1000万人，在全球范围内也十分普遍。目前用于缓解症状的药物治疗手段有限。外科手术或血管内介入治疗对部分患者有效，但长期效果往往不理想。因此，亟需开发新的PAD治疗方法。小鼠后肢缺血模型是研究PAD的一种有效模型，可用于测试新疗法。与其他组织缺血模型（如冠状动脉或脑动脉结扎）相比，股动脉结扎提供了一种更为简单的缺血组织模型。该模型的其他优势还包括易于暴露股动脉以及较低的死亡率。 
在本视频中，我们展示了单侧后肢缺血小鼠模型的建立方法。将详细介绍创建和评估该模型所需的特定材料与操作步骤，包括利用激光多普勒成像技术评估肢体灌注情况。该方案还可用于细胞移植及无创追踪，黄 et al.1 已对此进行了示范。

展示了诱导单侧后肢缺血的手术操作，并通过激光多普勒血流成像证实缺血效果。

在美国，外周动脉疾病（PAD）影响约1000万人，全球范围内也十分常见。目前针对……的医学治疗

在美国，外周动脉疾病（PAD）影响约1000万人，尤其是吸烟者、糖尿病患者以及年龄超过70岁的人群。该手术的总体目标是通过结扎股动脉的近端和远端节段，诱导后肢缺血。手术首先对小鼠进行麻醉、剃毛，并将其仰卧位固定于手术台上。然后从膝部向内侧大腿方向切开皮肤，暴露下方的股动脉。接着，仔细分离股动脉与股静脉。在远端结扎部位以及近端结扎部位均打双结。随后切除股动脉节段。缝合切口部位，并让动物从麻醉中恢复。为确认后肢缺血的建立，将麻醉小鼠置于仰卧位。然后使用激光多普勒扫描双侧后肢。随后保存图像并评估灌注情况。你好，我是 John Cook。我是斯坦福大学心血管医学系的医学教授。我们的实验室致力于研究血管生成和血管再生。在本视频中，我的两位博士后研究员Wong Nan博士和Hir Niyama将向您介绍小鼠后肢缺血模型，这是一种重要的外周动脉疾病模型，常用于我们实验室评估生长因子和细胞治疗对血管生成的影响。我们在实验室中采用这些操作步骤来研究干细胞来源的内皮细胞在血管修复中的作用。现在让我们开始。本手术所需的外科器械包括精细尖头镊子、尖头镊子、弹簧剪、手术剪、持针器和牵开器。我们使用回形针自制拉钩，因为它比市售的更小。手术前需使用热珠灭菌器对这些工具进行灭菌。此外，手术还需要电凝器和无菌细头棉签。工具准备就绪后，将小鼠放入麻醉诱导室中，以每分钟1升的流速吸入含1%至3%异氟烷的纯氧气。将小鼠留在诱导室中，直至其对外界刺激无反应。随后将动物从诱导室中取出，置于术前操作台上的仰卧位，并连接持续气流的异氟烷。使用电动剃须刀去除后肢的毛发。涂抹脱毛膏以彻底清除残留毛发。剃毛后，用胶带拉伸并固定后肢。固定后肢后，使用碘伏和酒精交替擦拭皮肤三次。用精细镊子和手术剪，在磷酸盐缓冲液中，从膝关节向内侧大腿方向做长约一厘米的皮肤切口。用 PBS 润湿并定义尖头棉签。轻轻刷除大腿肌肉周围皮下脂肪组织。接着，横向使用电凝设备分次切开并分离皮下脂肪组织，以暴露其下方的股动脉。然后，使用牵开器撑开伤口，以便更清晰地观察下肢血管结构。使用精细镊子和尖端细小的棉签，轻轻刺穿股部筋膜鞘，暴露血管神经束。然后使用一套干净的精细镊子和棉签，在靠近腹股沟的近端位置将股动脉与股静脉及神经分离。分离完成后，将一根7-0丝线缝合线穿过股动脉近端下方。使用双结结扎闭塞股动脉近端。结扎位置应尽可能靠近伤口的近端，以保留足够长度用于第二次结扎，并留出中间将被切断的血管段。在靠近膝关节的远端位置，分离股动脉与股静脉。在股动脉远端、腘动脉近端下方穿过一根7-0缝合线，使用双结阻断血管。在第一组结的近端稍远处，用第二组双结阻断远端股动脉。第二组缝线将用于在切断操作过程中夹持动脉。同样为了夹持目的，用第二组双结在第一组结的远端稍远处阻断近端的股动脉。使用尖头棉签和一把弹簧剪刀，切断位于远端与近端结之间的一段股动脉。注意避免刺穿股静脉管壁。移除拉钩，使用5-0丝线缝合切口。切口闭合后，将动物放回恢复笼中，并持续监测直至其苏醒。动物恢复一小时后，进行激光多普勒血流灌注检测。为确认缺血诱导的成功，需进行以下步骤。开始激光多普勒血流检测时，将小鼠放入麻醉诱导室中，使用浓度为1%至3%的异氟烷（iso-flurane）与100%氧气混合气体，气体流速为每分钟1升。将小鼠留在诱导室内，直至其对外界刺激无反应。然后将动物从诱导室中取出，放置在连接持续气流异氟烷的术前操作台上。使用电动剃毛器去除后肢的毛发，必要时再用脱毛膏进一步处理。去除毛发后，将动物置于37°C加热板上，在持续通入异氟烷的条件下维持五分钟。五分钟后，将动物仰卧置于非反光的吸光表面（例如连接异氟烷持续气流的绿色布料）上，伸展后肢。接着，打开激光多普勒成像仪和采集软件，并初始化软件。指定视野大小和分辨率。最好在不同动物之间保持视野和像素密度的一致性。为了便于后续分析，应打开一个新文件。按下开始以开始采集图像数据。当系统提示时，指定动物与成像仪之间的距离。激光将显示视野的边界，然后开始采集数据。图像采集完成后，图像将开始显示一系列颜色，用以指示腿部血流灌注水平。颜色可设置为特定的灌注范围。为在动物间更好地比较数据，数据采集完成后请保存文件，然后将动物放回恢复笼中，并持续监测动物直至其清醒。分析数据时，使用分析软件中的阈值调节功能去除任何背景噪声。通常，0.2 的阈值是一个合理的选择。选择两个感兴趣区域（ROI），分别覆盖每个后肢区域。可使用多种解剖标志来标准化不同肢体和动物之间的感兴趣区域（ROI），进而确定ROI内的平均灌注量及灌注变异度。随后可轻松计算缺血肢体与对照肢体之间的灌注差异和灌注比值。该操作可重复进行，以追踪后肢灌注随时间的变化情况。在预定时间点，可处死动物以评估组织功能。与灌注成像数据相比，此处显示了股动脉暴露后后肢的代表性示意图。缝线标记了近端和远端结扎部位的位置。如果手术操作仔细，出血量极少，且手术可在一小时以内完成。以下是激光多普勒灌注成像分析的结果。左侧图像显示了缺血诱导前双侧肢体的灌注情况。右侧图像显示了双侧肢体的血流情况。在左侧后肢经历缺血诱导后，图像中的颜色强度反映了血流量的多少。与对照肢体相比，缺血肢体的颜色明显变浅，提示血流显著减少。利用这些数据，软件可定量分析缺血肢体和对照肢体的平均灌注量，从而确定灌注差异和灌注比值。因此，这些结果证实了后肢缺血模型的成功建立。我们刚刚向您展示了如何在小鼠模型中诱导单侧后肢缺血，并通过激光多普勒血流灌注成像确认缺血的建立。结合激光多普勒成像分析的后肢缺血模型是研究血管病理学及评估潜在治疗手段的优良体系。该操作可进一步结合细胞移植与无创追踪技术，相关方法已在Huang等人发布的另一段JoVE视频中进行演示。进行该操作时，需注意使用剪刀分离股动脉时应格外小心，避免刺穿股静脉管壁。此外，为确保高度缺血模型的一致性，实验中所有动物的结扎部位应保持相同。以上即为注意事项。感谢观看，祝您的实验顺利。

Research

科研

JoVE Journal

Biology

生物学

肢体缺血小鼠模型

对脊髓缺血-再灌注损伤缺乏机制性理解，阻碍了在高风险主动脉手术后预防截瘫的辅助措施的进一步发展。因此，建立动物模型势在必行。本论文展示了在小鼠模型中通过胸主动脉阻断后可重复地诱导出下肢瘫痪。...

通过胸主动脉阻断在脊髓缺血-再灌注小鼠模型中可重复地诱导截瘫

我们介绍一种外科手术方法，用于诱导实验性缺血/再灌注（I/R）损伤，以模拟小鼠模型中的心肌梗死（MI），该方法可更清晰地定位左前降支动脉（LAD）上的结扎位置，从而提高小鼠MI实验的可重复性。...

通过左前降支动脉结扎建立心肌缺血-再灌注损伤的小鼠模型

在小鼠中通过手术诱导后肢缺血有助于研究血管生成，但在某些近交系小鼠中，该方法受到限制，因为这些品系会出现明显的缺血诱导性组织坏死。本文描述了一种使用缩窄环（ameroid...

小鼠后肢急性与亚急性缺血模型的建立方法

我们描述了一种通过使用硅胶包被的缝合线阻塞大脑中动脉来诱导小鼠脑卒中的模型。该方案可用于诱导永久性阻塞，或诱导短暂性缺血后进行再灌注。...

采用大脑中动脉阻塞技术诱导小鼠缺血性卒中与缺血-再灌注及梗死区域的可视化

我们描述了一种用于在高脂血症和糖尿病兔模型中诱导外周缺血的外科手术方法。该手术可作为外周动脉疾病患者临床前研究的模型。同时介绍了血管造影术，用于评估所诱导缺血的程度以及灌注恢复情况。...

糖尿病兔后肢缺血的临床前模型

本文介绍了一种下肢缺血的实验模型，并结合一系列功能学、组织学和分子生物学检测方法 ，用于评估促血管生成疗法的有效性。​...

评估小鼠后肢缺血模型中的治疗性血管生成

本文介绍了一种外科手术方法，用于实现小鼠左前降支冠状动脉的永久性结扎。该模型对于研究心肌梗死的病理生理学及其伴随的生物学过程具有重要意义。...

采用左前降支冠状动脉永久性结扎的小鼠心肌梗死模型

本文展示了一种通过小切口在小鼠体内建立急性缺血的高效手术方法。该方法无需对实验室进行任何升级改造，大多数研究团队均可应用。...

一种改良的ApoE基因敲除小鼠后肢缺血外科模型-/- 采用微型切口的小鼠手术

本文介绍一种简单且可重复的方法，通过显微操作对小鼠左前降支冠状动脉进行精确结扎，从而诱导心肌梗死或心肌缺血-再灌注损伤。...

小鼠心肌梗死与心肌缺血-再灌注损伤的诱导

本方案描述了一种独特且具有临床相关性的外周动脉疾病模型，该模型通过结合股动脉和股静脉电凝以及给予一氧化氮合酶抑制剂，在FVB小鼠中诱导后肢坏疽。随后采用心脏内灌注DiI的方法，对足垫血管系统进行高分辨率的三维成像。...

小鼠后肢坏疽模型中足垫血管系统的高分辨率三维成像

我们描述了如何在啮齿类动物中建立一种广泛应用的肠道缺血-再灌注损伤（IRI）外科模型。该操作包括阻断肠系膜上动脉，随后恢复血流。此模型对于研究兽医学和人类医学中肠道IRI的闭塞性病因具有重要价值。...

通过闭塞肠系膜上动脉建立肠道缺血-再灌注损伤的啮齿类动物模型

学习小鼠单侧后肢缺血手术模型，通过结扎股动脉诱导缺血并使用激光多普勒灌注成像进行确认。该模型为研究外周动脉疾病和血管再生提供了可靠的实验方法。

下肢缺血小鼠模型

探索更多视频