2010年10月15日
本实验方案介绍了对黑腹果蝇(Drosophila)幼虫进行活体解剖的操作,旨在对沿微管轨道运动的GFP标记轴突囊泡进行成像观察。
为了研究阿尔茨海默病或亨廷顿病等神经系统疾病中是否存在长距离轴突运输缺陷。在活体食管幼虫中对运输囊泡的轴突运输进行成像。此处为疑问。
表达GFP标记的Sical蛋白的三龄幼虫在凝胶立方体上解剖,随后转移至显微镜下进行活体成像。利用荧光显微镜追踪轴突内的Sical蛋白运输过程。该技术相较于现有方法的主要优势在于能够直观观察突触囊泡及幼虫轴突的活体、未受干扰的运动过程。
准备解剖操作前,请确保以下耗材和试剂已备齐:解剖缓冲液,以及一个尺寸为1英寸宽、1英寸长、1厘米高的琼脂糖块,将其放置在载玻片上。
超短解剖针。手动解剖针的尖锐底部在解剖操作中效果最佳。可通过将较长的针插入凝胶中,并剪去露出部分,以获得合适的长度。
您还需要一把锋利的显微解剖弹簧剪,以及两把尖头镊子。使用小金属刮铲将表达GFP标记的SLE蛋白的三龄星形幼虫转移至培养皿中。
接下来,向培养皿中的幼虫加入去离子水以去除所有食物。然后用镊子将它们转移至解剖凝胶块上进行活体解剖。使用镊子将一条幼虫转移至解剖凝胶块上。
在载玻片上加入解剖缓冲液,使组织浸没其中。接着,将幼虫腹面朝下,用固定针在前后两端固定。使用显微解剖剪,在靠近后端的中线位置做一个小切口。
从该切口开始,再向前方做另一个切口。利用两枚大头针使肠道和脂肪体流出。将切开的体壁固定在蜡盘的侧缘。
使用移液枪加入一滴解剖缓冲液。然后用镊子小心去除肠道和脂肪体。将一张吸水纸巾接触幼虫的一侧以吸除缓冲液,同时用移液枪加入新鲜的解剖缓冲液。
熔岩状物质应始终保持湿润。若需标记熔岩状物质中的线粒体或溶酶体结构,可将解剖缓冲液替换为含有线粒体示踪剂(mito tracker)或溶酶体示踪剂(lyo tracker)的解剖缓冲液。将解剖用组织块置于方形湿盒中,并用铝箔覆盖。
室温孵育10分钟。体内标记孵育结束后,反复用移液器吸除幼虫周围的解剖缓冲液,并加入新的解剖缓冲液。重复此步骤五次,以洗去残留的标记物。
更换最后一次洗涤液后,将针完全推入 S 型护罩中,并立即加盖盖玻片,以防止幼虫移动。此时幼虫已准备好进行观察,可对解剖后的幼虫进行活体成像。将样品置于倒置显微镜载物台上,以观察标记的囊泡。
在幼虫的节段神经内。使用100倍物镜进行成像。如果绿色荧光蛋白(GFP)染色信号较强,则可在腹神经节图像的细胞体以及节段神经中观察到;利用双视图系统,配合C-F-P-Y-F-P或R-F-P-Y-F-P滤光片及分屏软件,可同时观察两种活体标记的蛋白质。
在此延时系列中,可见幼虫节段神经内的多条轴突轨道上存在大量轴突囊泡。请注意,代表轴突聚集的绿色荧光蛋白(GFP)也显示出囊泡的双向运动。此处显示的是幼虫节段神经中单条轴突轨道上轴突囊泡的运动。
需要注意的是,这些囊泡的双向运动平均速度为每秒一微米。观看本视频后,您应能够很好地掌握如何完成干净的解剖,以便在活体条件下观察标记了GFP的囊泡以及幼虫轴突中的gsof。
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本方案介绍了用于成像微管轨道上GFP标记的轴突囊泡运动的果蝇幼虫活体解剖技术。该技术可实现对幼虫轴突内突触囊泡的活体、未受干扰运动的可视化观察。
理解轴突运输动态对于降低神经退行性疾病靶点的风险至关重要,因为囊泡运输缺陷在机制上与阿尔茨海默病、亨廷顿病和肌萎缩侧索硬化症(ALS)相关。该果蝇幼虫轴突模型可实现突触囊泡运动的实时可视化,为早期靶点验证和机制研究提供了一种具有预测性和疾病相关性的系统。通过量化囊泡的双向流动及运输速率,该方法可支持以轴突完整性为重点的临床前研究项目的决策。
该方法适用于从发现到临床前研究的连续过程,支持在早期发现阶段进行假设验证、在筛选阶段进行检测准备,以及在临床前阶段进行机制验证。