Name: 分析的预微RNA和小分子RNA采用实时定量PCR（定量PCR）阵列 (视频) | JoVE Journal
Uploaded: 2010-12-03T17:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 58 s
Description: 学习使用实时定量PCR阵列分析前体微RNA和小分子RNA表达水平的方法。本视频演示自动化机器人系统与手动移液两种设置流程，帮助研究人员快速可靠地完成高通量基因表达筛选。

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

本工作由美国国立卫生研究院（NIH）资助，项目编号为 DE018304、R01DE018281。K.T. 受 T32 GM07092-34 项目资助，并获得霍华德·休斯医学研究所（HHMI）通过“医学融入研究生教育计划”（Med into Grad Initiative）向北卡罗来纳大学教堂山分校提供的资助。PC 受 T32 CA009156 项目资助。

qPCR 前体 miRNA 谱型分析阵列可通过 Tecan Freedom Evo 机器人（A）实现完全自动化操作，或使用 Matrix 电子多通道移液器（B）手动完成。
1) 准备主混合液、引物板和样品。
<ol>
	<li>含有186对引物的引物板（共2块，96孔板格式），浓度为0.5 pM，应保存在-80°C。使用前于室温下解冻，涡旋混匀并短暂离心。</li>
	<li>配制预混液时，将SYBR Green 2× PCR Mix在室温下解冻。每反应使用8 µL预混液和2 µL引物。每反应预混液的组成为：4 µL SYBR Mix、3 µL PCR级水以及10–20 ng的样品DNA或cDNA。</li>
	<li>每块96孔引物板的实验设置需要四个预混液管。每个板可运行4个样品（单次重复）、2个样品（双重复）或单个样品（四重复）。</li>
	<li>在4个2 mL Eppendorf离心管中分别加入SYBR Mix、水和样品，配制预混液。每管应包含约100个反应所需的预混液量，以预留移液损耗的余量。涡旋混匀。</li>
</ol>
A. 使用 Freedom Tecan Evo 机器人建立前体 miRNA 检测体系。
<ol>
	<li>启动机器人并加载 Evoware 程序后，用 30 ml 溶液冲洗系统三次，以清除可能影响移液准确性的气泡。</li>
	<li>设置机器人平台，包括以下组件：
	<ul>
		<li>已标记的 384 孔板</li>
		<li>96 孔引物板（1）</li>
		<li>预混液（Master mixes）</li>
		<li>含有 2% 次氯酸钠的槽</li>
		<li>装满系统液体的容器</li>
		<li>空废液容器</li>
	</ul>
	</li>
	<li>通过连续两次点击“运行”（Run）开始自动机器人运行程序。</li>
	<li>程序结束后，取出 384 孔板，用 LightCycler 480 密封箔密封，并短暂离心。将密封后的 384 孔板放入热循环仪（hotel）1 号位置。</li>
	<li>返回步骤 2.2，使用新的预混液和新的 384 孔板对引物板 2 重复操作。
	<ol>
 	<li>将密封好的板放入热循环仪（hotel）2 号位置。</li>
 </ol>
 </li>
	<li>打开新的 Evoware 程序，用于从热循环仪（hotel）加载 LightCycler，并连续两次点击“运行”（Run）。
 <ol>
 	<li>Freedom Evo 将自动将每块板加载到 LightCycler 中，并运行以下 SYBR Green I/HRM 扩增与熔解曲线程序： 
		预变性（1 个循环）： 
 50°C，5 分钟，升降温速率为 4.8°C/秒
 95°C，5 分钟，升降温速率为 4.8°C/秒
		 
 扩增（45 个循环）：
 95°C，15 秒，升降温速率为 4.8°C/秒
		 62°C，30 秒，升降温速率为 2.5°C/秒
		 （此步骤期间进行单次数据采集） 
		熔解曲线分析：
 95°C，5 秒，升降温速率为 4.8°C/秒
		 60°C，1 分钟，升降温速率为 2.5°C/秒
		 95°C 持续升温，升降温速率为 0.11°C/秒
		 每升高 1°C 采集 5 次数据 
		冷却：
 50°C，30 秒，升降温速率为 25°C/秒
 </li>
 </ol>
</li>
</ol>
B. 使用 Matrix 电子多通道移液器设置前体 miRNA 检测：
<ol>
	<li>将主混合液管1中的内容物放入储液槽中。</li>
	<li>将电子移液器设置为吸取16 μl主混合液，采用2–8 μl的分液步进，随后执行排空步骤。</li>
	<li>对于主混合液1，将8 μl加入384孔板的每隔一列孔中（设置为384孔板加样头间距），起始于A1孔（即A1、C1、E1等孔）。第二次加入8 μl时，移至第3列（即A3、C3、E3等孔），然后在废液容器上方排空并丢弃加样头。</li>
	<li>按照此模式继续进行剩余的5个循环，直至到达A23孔。</li>
	<li>对主混合液2重复上述操作（从A2、C2、E2等孔开始）；主混合液3（从B1、D1、F1等孔开始）；主混合液4（从B2、D2、F2等孔开始）。</li>
	<li>分装引物板时，将电子移液器设置为吸取2 μl并分配2 μl，随后执行吹出步骤。从96孔引物板第1列（A–H）中吸取2 μl引物，加入384孔板的A1、C1、E1等孔中。在废液容器上方吹出残液并丢弃吸头。依次对A2、C2、E2；B1、D1、F1；以及B2、D2、F2等孔重复上述操作。</li>
	<li>对96孔引物板的第2至第12行重复上述操作，每个引物列之间间隔2列，直至完成整个384孔板的分装。</li>
	<li>使用 LightCycler 密封膜封板，并短暂离心。</li>
	<li>将培养板放入 LightCycler 480 仪器中，并按照以下设置使用 SYBR Green I/HRM 检测模式进行扩增循环： 
	预变性（1个循环）：
 50° 5 分钟，升降温速率为 4.8°/sec
	 95° 以斜率速率在5分钟内 4.8°/sec
	 Amp（45个循环）：
 95° 15 秒，升降温速率为 4.8°/秒
	 62° 30 秒，升降温速率为 2.5°/秒
	 （此步骤中仅进行一次数据采集）
	 熔解曲线：
 95° 5 秒，升降温速率为 4.8°/sec
	 60° 1 分钟，升降温速率为 2.5°/sec
	 95° 以 0.11 的斜坡速率持续进行°/sec
	 每次采集5次 °C
	 冷却：
 50° 30 秒，升降温速率为 25°/秒
 </li>
	<li>使用引物板2重复操作，用新配制的预混液将样品分装至新的384孔板中。</li>
</ol>
成功的秘诀：
设计PCR阵列时的一个重要特征是，所有186对引物具有相同的退火温度，因此整块板可在相同的最佳PCR程序条件下运行。
每次运行样本前，应使用三种对照对每个新阵列进行检测。这些对照包括： 
1 次所有引物与水或 0.1x TE 一同运行，以排除引物污染。 
1 次交替使用水/TE 和阳性对照运行，以确保无交叉残留。 
3 次使用相同的阳性对照进行运行，以确保不同运行之间的可重复性。 
主混合液应新鲜配制，且反应板应在 24 小时内完成运行，以获得最佳结果。 
去除引物板上的铝箔封膜时应缓慢操作，以降低孔间污染的风险。 
当使用带有固定吸头的机器人时，每次移液步骤之间必须用 2% 漂白剂清洗吸头，随后用水冲洗。此步骤可防止并消除交叉残留，避免数据污染并导致结果不明确。 
反应板在 Lightcycler 上运行后，不应在 PCR 准备室内再次打开。这有助于防止 PCR 污染。
代表性结果：
qPCR 结果通常由 Lightcycler 分析软件确定的 CT 值表示。一次成功的运行通常会得到样品的一系列 CT 值，阳性样品的 CT 值通常在 20–35 之间。在一次良好的运行中，水样始终具有 CT 值 &gt;40，且CT值超过37的任何样本或特定孔均视为阴性或未检出。通常情况下，样本产生的CT值 &lt;10 也被视为不可靠，因此被排除在进一步分析之外。qPCR 数据有多种分析方法，而本实验中内参对照的引入有助于控制样品加样量的差异。pre-miR 芯片包含 U6 对照引物，该引物常被用作参考基因，以对不同样品的 CT 值进行标准化。该标准化后的值称为 delta CT 值（dCT）。结果通常以原始 CT 值、dCT 值形式绘图，或可进一步分析转化为标准化数值。
图1展示了时间过程实验中四个不同样本的全长前体microRNA阵列的热图分析结果。每个前体microRNA的相对表达水平均被显示，并出现了三个主要的显著聚类。大多数被分析的前体miRNA如预期一样仅发生微小且无显著意义的变化（图1A）。然而，有少量前体microRNA在整个时间过程中显著下调（图1B）或显著上调（图1C）。每个前体microRNA的表达水平均以0小时时间点（样本1）作为基线进行标准化。在某些情况下，您可能会注意到一些聚类的前体microRNA在热图分析中也共同聚集（例如：let-7a，图1B）。根据实验条件的不同，可能出现依赖病毒感染、细胞类型特异性表达的前体microRNA聚类，或受同一分子或信号通路调控的前体miRNA聚类。
我们开发的前体微小RNA（pre-microRNA）检测方法除了包含人类前体miRNA（pre-miRs）外，还包含多种已知的病毒前体微小RNA，以及卡波西肉瘤相关疱疹病毒（KSHV）和爱泼斯坦-巴尔病毒（EBV）编码的基因。这些序列可作为阳性或阴性对照，具体取决于所用细胞系及样本的病毒感染状态。图2展示了在KSHV阴性样本中进行四次重复实验所得的平均CT值。重要的是，通过高灵敏度的qPCR芯片检测，该样本中未检测到KSHV LANA。然而，作为内参的U6以及高表达的人类前体微小RNA let-7a均在可检测水平表达。最后，如预期所示，以PCR级水作为阴性对照未扩增出qPCR产物。
qPCR 实验成功的另一个指标是良好的熔解曲线分析，该分析可提示样品中是否存在潜在污染。为了确定熔解温度，PCR 完成后会缓慢加热反应板。随着 DNA 双链的解离，SYBR Green 染料被释放，荧光信号随之下降。该信号下降所对应的温度被绘制成图，即为样品的熔解温度。根据 DNA 序列的不同，各样品之间的熔解温度各不相同，且与水阴性对照的熔解温度也不同；由于阴性对照中不含 DNA，因此不应出现熔解峰。每对引物扩增的 PCR 产物应在相似的温度下熔解。例如，图 3 展示了使用同一样品（双重复）的两对不同引物的熔解曲线分析结果。显然，两对引物的熔解温度不同，但每对引物的重复样品熔解温度完全一致。异常或可能被污染的样品可能表现出多个熔解峰，提示存在两种或以上不同的模板来源。

<img src="/files/ftp_upload/2210/2210fig1.jpg" alt="显示基因表达分析数据的热图，突出 microRNA 表达模式。" data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="图 1"> 图 1. 通过基于新型 qPCR 芯片的表达谱分析，揭示前体 microRNA 的表达特征。计算平均 deltaCTU6 值，并将标准化数据导入 ArrayMinerTM 软件，得到三个不同的聚类，以热图形式展示。(A) 显示表达量变化较小的前体 microRNA；表达水平显著降低 (B) 或升高 (C) 的前体 microRNA 也分别列出。蓝色表示表达水平较低，红色表示表达水平升高。
<img src="/files/ftp_upload/2210/2210fig2.jpg" alt="实时PCR结果图表，显示U6、KSHV LANA、let-7a-1-1和PCR H2O样本的CT值。" data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="图2"> 图2. 基于qPCR的pre-microRNA芯片中内参对照的设置。图中显示了3个不同基因及无模板对照的原始CT值。U6作为内参阳性对照，PCR H2O作为阴性对照。let-7a-1-1是一种在多种细胞类型中通常表达的microRNA，而KSHV LANA可根据所用细胞系或组织的病毒感染状态，用作阳性或阴性对照。
<img src="/files/ftp_upload/2210/2210fig3.jpg" alt="熔解峰图；DNA引物分析，荧光强度与温度关系，PCR热分析。" data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="图3"> 图3. 前体miRNA引物的熔解峰分析及无样本污染的验证。熔解曲线通过LightCycler软件中的Tm识别分析获得。同一标本使用两种不同的引物（引物A和引物B）进行双重复运行的结果如图所示。每种引物具有不同的熔解温度，但每个样本仅出现单一峰，表明无样本污染。

<ol><li>Bustin, A. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+MIQE+Guidelines%3A+Minimum+Information+for+Publication+of+Quantitative+Real-Time+PCR+Experiments%5BTitle%5D)+AND+%22Clinical+Chem%22%5BJournal%5D)">The MIQE Guidelines: Minimum Information for Publication of Quantitative Real-Time PCR Experiments.</a> Clinical Chem. 55 (4), 611-622 (2009).</li>
<li>Frégeau, C. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Automated+Processing+of+Forensic+Casework+Samples+using+Robotic+Workstations+Equipped+with+Nondisposable+Tips+-+Contamination+Prevention%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Forensic+Sci%22%5BJournal%5D)">Automated Processing of Forensic Casework Samples using Robotic Workstations Equipped with Nondisposable Tips - Contamination Prevention.</a> J. Forensic Sci. 53 (3), 53-533 (2008).</li>
<li>O'hara, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pre-micro+RNA+Signatures+Delineate+Stages+of+Endothelial+Cell+Transformation+in+Kaposi+Sarcoma%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+Pathog%22%5BJournal%5D)">Pre-micro RNA Signatures Delineate Stages of Endothelial Cell Transformation in Kaposi Sarcoma.</a> PLoS Pathog. 5 (4), e1000389-e1000389 (2009).</li>
</ol>

无利益冲突声明。

qPCR 是一种高灵敏度的检测方法，可用于比较研究中各样本间的基因表达水平，也可用于检测病毒的阳性情况。使用 qPCR 芯片的优势在于能够在短时间内对每个样本运行大量引物（在本例中为 186 对引物）。通过使用如 Tecan Freedom Evo 等移液机器人，可进一步缩短实验准备时间，且机器人的高准确性和一致性能够减少甚至消除移液误差。本文演示了如何使用 Tecan Freedom Evo 设置 microRNA 芯片实验，同时也介绍了一种替代方法——使用 Matrix 电子多通道移液器，适用于不具备移液机器人条件的实验室。此外，qPCR 芯片还具有另一优势：所有基因均可使用在同一块板上运行的一组参考基因进行标准化，从而降低反应次数和实验成本。
如前所述，在设计此类阵列时，有几个关键特征是必需的。由于PCR板上的所有样本将在相同的条件下运行，因此设计在相同温度和设置下发挥作用的引物至关重要，否则某些引物对将无法工作。在设计引物时，应始终通过BLAST搜索检查序列，以确保其与目标基因具有同源性，并且不与其他基因发生交叉。
<p class="jove_content"...

<table><tbody><tr><td>Freedom Evo 150</td><td>Tecan Group Ltd.</td><td>30017587</td><td></td></tr><tr><td>Matrix 电子多通道移液器</td><td>Thermo Fisher Scientific, Inc.</td><td>2001-MTX</td><td>（或任何性能相当的 Thermo Scientific 多通道移液器，能够移取上述体积）</td></tr><tr><td>Matrix 完整性滤芯吸头，无菌</td><td>Thermo Fisher Scientific, Inc.</td><td>7435</td><td>（或与所用多通道移液器匹配的相当规格吸头）</td></tr><tr><td>Lightcycler 480 SYBR Green 1 预混液</td><td>Roche Group</td><td>04 707 516 001</td><td></td></tr><tr><td>Lightcycler 480 仪器 II 型</td><td>Roche Group</td><td>05015243001</td><td>384 孔板版本</td></tr><tr><td>Lightcycler 480 384 孔白色多孔板</td><td>Roche Group</td><td>04729749001</td><td></td></tr><tr><td>LightCycler 480 密封箔膜</td><td>Roche Group</td><td>04729757001</td><td></td></tr><tr><td>LightCycler 480 多孔板分析软件</td><td>Roche Group</td><td>05075122001</td><td></td></tr><tr><td>Eliminase 去污染剂</td><td>Decon Laboratories</td><td>04-355-31</td><td></td></tr></tbody></table>

使用定量实时pcr（qpcr）阵列对pre-microrna和microrna进行表达谱分析

Profiling of Pre-micro RNAs and microRNAs using Quantitative Real-time PCR (qPCR) Arrays

定量实时聚合酶链式反应（qPCR）已成为分析基因表达水平的一种准确且有价值的工具。相较于其他基因表达谱分析方法，其诸多优势之一在于检测灵敏度更高，且每次实验所需的起始样本量更少。自动化qPCR体系构建技术的发展进一步提升了该方法的可重复性。其操作便捷、快速的特点支持高通量实验，可在单次实验中同时检测大量不同基因的表达情况。结合内置于反应板中的对照，该方法还能有效减少其他技术中常见的实验变量。

我们近期开发了一种基于186对引物的qPCR检测方法，用于前体微小RNA（pre-miRNA）的表达谱分析。微小RNA（miRNA）是一类新型的小分子非编码RNA，能够在转录后水平调控多种mRNA靶标。这类小RNA首先由RNA聚合酶II转录生成初级miRNA（pri-miRNA）转录本，随后被剪切为前体miRNA（pre-miRNA）。pre-miRNA被转运至细胞质后，由Dicer酶切割发夹结构环区，生成成熟的miRNA。在pre-miRNA和成熟miRNA两个阶段均可观察到miRNA水平的变化，因此对这两种形式的表达谱分析均具有重要意义。目前市场上已有多种针对成熟miRNA的商业化检测试剂盒，但其高昂的成本可能限制研究人员对该技术的应用。本文介绍一种经济高效、可靠稳定的基于SYBR染料的qPCR方法，用于pre-miRNA的表达谱分析。pre-miRNA水平的变化通常能反映成熟miRNA的变化趋势，因而可作为成熟miRNA表达的有效指标。然而，同时检测pre-miRNA和成熟miRNA可能是更优策略，因其可提供互补信息，并有助于揭示miRNA的加工过程。此外，本文所述技术还可拓展应用于其他特定通路或病原体相关基因文库的表达谱分析。

我们将演示使用机器人以及手动结合赛默飞世尔科技Matrix多通道移液器进行前体miRNA 96孔板QPCR的设置与分析。

使用定量实时PCR（qPCR）阵列对pre-microRNA和microRNA进行表达谱分析

定量实时聚合酶链式反应（QPCR）已成为分析基因表达水平的一种准确且有价值的工具。其众多优势之一是较低的……

本实验的总体目标是实现基于QPCR的阵列的快速、可靠自动化设置。首先准备阵列所需的引物组，并配制待检测的样品预混液。随后，使用自动化机器人PCR建库系统或矩阵式电子移液器系统，将样品预混液和引物组精确地分配至384孔板的每个孔中。制备完成后，使用基于Light Cycler 480的PCR程序运行384孔板的PCR反应。该实验流程的最后一步是分析qPCR数据，并确定每对引物的相对表达水平，每对引物均靶向特定的mRNA。最终可获得结果，显示大量mRNA表达水平的变化。因此，专门设计的芯片阵列可通过基于QPCR的分析方法，靶向整个前体microRNA谱、特定通路或对病毒感染至关重要的分子。大家好，我是来自北卡罗来纳大学教堂山分校微生物学与免疫学系的Dirk DMA。今天我们将向您展示如何建立实时定量QPCR实验，并介绍两种不同的方法。一种使用不规则移液器，另一种使用机器人。我们利用该技术检测人类肿瘤中的前体微小RNA和成熟微小RNA。今天的演示将由Pauline Chu和Kristen bu完成。那么我们开始吧。首先，取出含有186对引物的96孔板，引物以0.5 pM的浓度保存在-20°C条件下，采用96孔板格式。将板在室温下解冻后，涡旋并短暂离心。同时将Cyber Green 2× PCR混合液在室温下解冻。每块96孔引物板的设置需要四个主混合液管。在四个2毫升离心管中，分别通过混合4微升Cyber Green混合液、3微升PCR级水以及每反应10至20纳克的样品DNA或cDNA来制备主混合液。每个试管应含有足够进行约100次反应的预混液，以预留移液过程中的损耗。涡旋振荡八联管以充分混匀。使用Freedom Tecan EVO机器人开始前体microRNA检测的设置，首先初始化机器人并加载EVO操作程序。然后用 30 毫升系统液体冲洗机器人三次，以清除系统中的气泡，避免影响移液准确性。接下来，设置机器人平台，放置一个 384 孔板和一个 96 孔引物板。主混合液置于储液槽中，包含 2% 漂白剂、已加满的系统液体容器和一个空的废液容器。通过在程序末尾选择“运行”两次来启动自动机器人运行。取出384孔板，并用Light Cycler 4 80封板箔密封，然后对板进行离心。将密封的384孔板短暂放置于加热模块位置一。随后，使用新的主混合液和新的384孔板，对引物板二重复此过程。将所得的密封384孔板置于加热模块位置二。打开一个新的 EVO wear 程序，从酒店加载光循环仪并设置循环参数。然后选择运行两次。Freedom Evo 将自动将每块板加载到光循环仪中，并运行一次 Cyber Green HRM 循环程序。完成后，按照书面实验方案中所述方法对结果进行审查和分析，作为使用机器人的替代方案。可使用矩阵电子多通道移液器，将主混合液管中的溶液逐一分装至储液槽中。将电子移液器设置为吸取16微升主混合液，分两次每次释放8微升，随后执行吹出步骤。设置完成后，吸取16微升主混合液，并开始将液体加入384孔轮板中。将前8微升主混合液加入第一列的每隔一行中，使用A至O行，下一列保持空置。将第二个八微升加入第三列的相同行中。然后在废液容器上方排空，并按照隔行隔列留空的模式丢弃吸头。按此方式在整块板上再进行五个循环，以移取第二份主混合液。使用与第一份主混合液相同的行，但从第二列开始。对第三份和第四份主混合液重复此操作，分别从第一列和第二列开始，但此次使用玫瑰色B至P的引物板布局。将电子移液器设置为吸取2 µL并 dispensing 2 µL，随后执行吹出步骤。从96孔引物板的第1列A至H行中，吸取2微升引物，转移至384孔板每隔一列的第1列中，在废液容器上方操作并丢弃吸头。针对其余三组主混合液（第1列和第2列）中的每种引物，重复此模式。随后，继续对96孔引物板的第2至第12列进行相同操作，每次对应一种引物列，在384孔板中每隔两列进行转移。接下来，用荧光定量PCR仪的压板、封口膜密封反应板，并进行离心。离心结束后立即取出反应板，将其放入荧光定量PCR仪（Light Cycler 480）中，使用SYBR Green I HRM检测模式进行扩增循环。 采用与之前相同的循环条件，使用新配制的预混液，将引物板二Eloqua重复此步骤加入新的384孔板中。通过基于新型定量PCR阵列的分析，可获得前体微小RNA的表达特征。以U6为内参计算平均ΔCT值，并将标准化后的数据载入阵列。Minor软件生成的三个不同聚类以热图形式展示。每个前体microRNA的相对表达水平以红色和蓝色表示，其中红色代表相对表达量上升，蓝色代表相对表达量下降。颜色强度反映表达变化的程度。大多数前体microRNA的变化较小且无显著性，符合预期。然而，有小部分前体microRNA在整个时间过程中显著增加。此外，某些前体microRNA的相对水平则急剧下降。在某些情况下，它们在热图分析中也会聚集在一起。根据实验的不同，可能出现依赖于病毒感染、细胞类型特异性表达的微小RNA前体，或受共同分子或信号通路调控的微小RNA前体的聚类。展示了Posey肉瘤相关疱疹病毒阴性样本在四重重复检测中的平均循环阈值（ct值）。重要的是，通过高灵敏度的QPCR阵列未检测到卡波西肉瘤相关疱疹病毒潜伏相关核抗原（KSHV LANA）。然而，内参对照U6以及高表达的人类前体微小RNA let-7a均在可检测水平表达。最后，与预期一致，PCR级水的阴性对照未扩增出A-Q-P-C-R产物。对两种不同引物进行的熔解曲线分析，使用相同的样品重复进行，结果如图所示。显然，两对引物的熔解温度不同，但每个重复样本的熔解温度完全相同。样品质量差或可能被污染的迹象可能包括出现多个熔解峰，提示存在两种不同的模板来源。我们刚刚向您展示了如何使用机器人设置实时定量PCR实验。务必包含所有对照以及尽可能多的看家基因。感谢您的观看，祝您的实验顺利成功。

profiling-pre-micro-rnas-micrornas-using-quantitative-real-time-pcr

Research

科研

JoVE Journal

Biology

生物学

分析的预微RNA和小分子RNA采用实时定量PCR（定量PCR）阵列

本文介绍了一种优化的多重逆转录定量PCR（qRT-PCR）方案，结合微流控平台，作为检测microRNA（miRNA）表达水平的高通量筛选工具，具有成本低、耗时短的优点，尤其适用于样本量有限的情况。...

高通量 microRNA 表达谱分析：在 Fluidigm Dynamic ArrayTM IFCs 上进行纳升级优化多重 qRT-PCR

本文介绍了一种进行定制 microRNA 微阵列实验的简单流程。步骤包括 RNA 的提取、RNA 与参考 DNA...

进行定制化 microRNA 芯片实验

定量实时聚合酶链式反应（qPCR）是一种快速且灵敏的方法，用于检测肿瘤样本中多种微小RNA（miRNA）分子的表达水平。利用该方法，可从同一cDNA模板扩增、定量并分析数百种不同miRNA分子的表达。...

通过实时荧光定量聚合酶链式反应（qPCR）检测前列腺肿瘤中的微小RNA

外泌体中稳定存在的微小RNA（miRNA）引起了广泛关注，因其在细胞间通讯中具有重要作用，并在作为生物标志物及治疗干预途径方面展现出巨大潜力。本文展示了从血液和培养基中纯化外泌体，随后通过定量PCR检测其所携带的miRNA。...

血液及培养基来源外泌体的纯化与microRNA谱分析

我们描述了一种实时PCR方案，用于分析脑脊液（CSF）中的microRNA。除RNA提取步骤外，该方法可推广应用于从其他体液、培养细胞或组织样本中提取的RNA。...

利用定量实时聚合酶链式反应进行脑脊液微小RNA谱分析

雌激素和微小RNA（microRNA）的分子信号转导在乳腺癌的发生和发展中至关重要。雌激素可激活作为转录因子的雌激素受体。许多转录因子能够调控微小RNA的表达，而受雌激素调控的微小RNA可通过多种高通量技术进行表达谱分析。...

乳腺癌细胞中雌激素调控的microRNA分析

循环microRNA最近已成为多种癌症及其他疾病的有前景的新型生物标志物。本文旨在讨论三种不同的基于探针的实时PCR平台和方法，这些平台和方法可用于定量并确定循环microRNA的丰度。...

基于探针的实时PCR方法用于microRNA的定量检测

本文介绍了一种利用染料化学法和液滴数字PCR技术对无细胞microRNA进行高灵敏度和高准确度定量的检测方法。...

利用DNA结合染料化学法和液滴数字PCR定量循环微小RNA

本报告描述了一种利用定量实时逆转录PCR（可选是否进行预扩增）测定血浆miRNA绝对水平的实验方案。该方案有助于更准确地理解血浆miRNA的数量，并允许对来自不同研究或实验室的相应数据进行定性评估。...

使用定量实时逆转录PCR对中国猕猴血浆中微小RNA水平进行绝对定量

本文介绍了一种方法，用于评估在动情周期不同阶段暴露于臭氧或过滤空气的小鼠肺组织中miRNA的表达水平，这些miRNA被预测可调控炎症相关基因。...

臭氧暴露小鼠在动情周期中肺部 microRNA 表达谱分析

本文介绍了一种基于定量实时聚合酶链式反应的方法，用于测定脂蛋白颗粒中内源性微小RNA的含量（绝对/相对含量）。此外，还展示了提高微小RNA水平的方法，以及测定细胞对脂蛋白颗粒摄取速率的方法。...

天然脂蛋白颗粒中microRNA的富集及其绝对/相对microRNA含量与细胞间转移速率的测定

学习使用实时定量PCR阵列分析前体微RNA和小分子RNA表达水平的方法。本视频演示自动化机器人系统与手动移液两种设置流程，帮助研究人员快速可靠地完成高通量基因表达筛选。

使用定量实时PCR（qPCR）阵列对pre-microRNA和microRNA进行表达谱分析

探索更多视频