Name: 细胞迁移的的Phagokinetic轨道运动MLCK的定量评价 (视频) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-12-04T12:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 30 s
Description: 学习使用金纳米颗粒包被盖玻片的吞噬运动轨迹法，定量评估细胞迁移能力。该方法通过显微镜成像分析细胞移动轨迹，为研究细胞运动行为提供可靠的定量数据。

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本工作获得了美国国立卫生研究院（AI050677、HD-051998 和 GM103433）、Malcolm Feist 心血管研究奖学金以及美国心脏协会博士前奖学金（10PRE4200007）的资助。

1. 明胶包被盖玻片的制备
<ol>
	<li>将酸洗过的玻璃盖玻片（直径 15 mm）放入无菌的塑料培养皿（100 mm）中。每皿放置 8–9 个盖玻片，并确保盖玻片彼此之间及与培养皿壁之间均不接触。</li>
</ol>
注意：盖玻片、针头和镊子必须保持无菌，以消除可能污染的微生物以及会影响细胞功能（包括细胞运动性）的内毒素。
<ol start="2">
	<li>称取明胶粉末，并将其悬浮于去离子水中，配制成终浓度为 0.5 g/300 ml 的明胶溶液。随后，该明胶溶液需进行高压灭菌。</li>
	<li>用移液器将 2–3 滴明胶（约 100–150 ml）滴加至每张盖玻片上。</li>
</ol>
注意：需小心避免明胶接触培养皿，否则将无法从培养皿中取出盖玻片。
<ol start="4">
	<li>将涂有明胶的盖玻片放入100 mm培养皿中，在90 °C烘箱中烘烤10分钟。</li>
	<li>用移液器轻轻吸除多余的明胶。</li>
	<li>将盖玻片留在100 mm培养皿中，在70 °C烘箱中干燥45分钟。</li>
	<li>干燥后，使用无菌、无内毒素的针头和镊子从100 mm培养皿中取出盖玻片（先用针头轻轻推动盖玻片边缘使其翘起，便于镊子轻柔取出）。</li>
	<li>将单个明胶包被的盖玻片分别放入24孔板的各个孔中。</li>
</ol>
2. 胶体金包被盖玻片的制备
<ol>
	<li>称取适量氯金酸（四氯金酸三水合物；HAuCl4·3H2O），然后溶于无菌去离子水中，配制成终浓度为 14.5 mM 的溶液（有毒）。每 8–9 张盖玻片准备 1.5 ml 该溶液。</li>
</ol>
警告：氯金酸如吞食有害，可引起严重皮肤灼伤和眼睛损伤，可能引起过敏性皮肤反应。吞食后有毒。
<ol start="2">
	<li>称取适量柠檬酸钠（三钠二氢 2-羟基丙烷-1,2,3-三羧酸盐；Na3C6H5O7），然后将粉末重悬于去离子水中，配制成终浓度为 0.5% 的溶液。每 8–9 张盖玻片配制 1 ml 溶液。</li>
</ol>
警告：柠檬酸钠可能引起眼睛和皮肤刺激。还可能引起呼吸道和消化道刺激。
<ol start="3">
	<li>在无菌、无内毒素的烧杯中，加入 1.5 ml 无菌的 14.5 mM HAuCl4 溶液和 13.5 ml 无菌去离子水，混合后应得到淡黄色溶液。上述体积可制备 8–9 片胶体金盖玻片。</li>
	<li>在持续搅拌下，将溶液置于加热板上加热至沸腾。</li>
</ol>
警告：溶液加热必须在通风橱中进行，因为蒸气可能有害或有毒。这些蒸气对黏膜和上呼吸道组织具有破坏性。
<ol start="5">
	<li>将烧杯从加热板上取下。</li>
	<li>在搅拌的同时，加入 0.7 ml 的 0.5% 柠檬酸钠溶液。上述体积可制备 8–9 张胶体金盖玻片。</li>
	<li>继续搅拌该混合溶液约 2 分钟（注意：溶液颜色将逐渐由浅黄色变为无色，再变为灰色、紫色、深紫色，最终变为红酒色或更理想的铁锈色）。此产物即为胶体金溶液。</li>
	<li>将胶体金溶液在 10 ml 移液管中冷却 1–2 分钟（以防止加入胶体金溶液时盖玻片上的明胶层融化），然后将 1.0–2.0 ml 胶体金溶液分别加入先前置于 24 孔板中的明胶包被盖玻片上（加入明胶包被盖玻片的胶体金溶液量取决于溶液中金颗粒的沉淀情况——见下文注释）。</li>
</ol>
注意：由于金颗粒沉淀的效率可能存在差异，建议首先向明胶包被的盖玻片中加入 0.5–1 ml 胶体金溶液，然后将 24 孔板置于培养箱中孵育 0.5 小时。孵育结束后，应在光学显微镜下检查盖玻片上金颗粒的密度是否合适。金颗粒浓度过低或过高时的示例可参见 图 1 中的 20 倍显微图像。理想的金颗粒浓度（至少适用于单核细胞）可参见 图 2 中的 40 倍显微图像。由于不同细胞在盖玻片上的运动能力各异，因此每种细胞类型所需的金纳米颗粒最佳密度需通过实验确定。若金颗粒浓度不足，可向明胶包被的盖玻片中再添加 0.5–1 ml 胶体金溶液。
根据细胞大小的不同，金颗粒的合适浓度也会有所变化，因此最终取决于所检测运动性的细胞尺寸。例如，由于人单核细胞属于较小的细胞（约10-20 μm28），在我们的分析中需要较高浓度的金颗粒。适当分布的金纳米颗粒可使研究人员能够快速且高效地识别细胞轨迹的边缘。金颗粒浓度过高会阻碍细胞移动，从而影响对其运动性的准确测量；而浓度过低则会限制对细胞运动轨迹进行精确勾画的能力。
重要提示：如果金纳米颗粒的合成存在问题，可商业购买粒径范围为 5 nm 至 400 nm 的金纳米颗粒。此外，荧光微球也已被用于细胞运动性研究29。然而，使用这些微球需要荧光显微镜来分析细胞迁移。
<ol start="9">
	<li>将覆盖有胶体金的盖玻片放入24孔板中，置于37 °C培养箱内孵育，孵育时间从1小时至过夜。</li>
	<li>孵育结束后，通过将盖玻片浸入无菌磷酸盐缓冲液（PBS；pH 7.4）中三次，冲洗并去除未结合的金颗粒。</li>
	<li>将这些涂有胶体金的盖玻片转移至含有PBS的洁净12孔板中。</li>
	<li>将盖玻片于4 °C保存直至使用（放入冰箱前用封口膜密封培养板）。</li>
</ol>
重要提示：始终将胶体金包被的盖玻片保存在某种液体/培养基中，因为如果盖玻片干燥，金颗粒可能会从表面剥落。胶体金盖玻片应在制备后2-3个月内使用。
质量控制：在单次噬动轨迹运动实验中，关键是要使用金颗粒浓度相似的盖玻片。这一简单要点可确保不同样本间细胞运动性的定量差异仅源于处理因素本身，而非胶体金涂层盖玻片的物理特性。我们倾向于在单个实验中仅使用同时制备的盖玻片，但已有研究表明，只要金纳米颗粒的密度一致，使用不同批次制备的盖玻片也是合适的。
3. 细胞运动性分析
<ol>
	<li>将胶体金包被的盖玻片置于适合目标细胞的细胞培养基中。</li>
	<li>将经过适当处理的细胞转移至置于24孔板中的胶体金包被盖玻片上。</li>
</ol>
注意：每种研究的细胞类型需要确定转移至单个孔中的细胞数量。理想情况下，细胞应均匀分布在涂有胶体金的盖玻片上，从而确保仅分析由单个细胞产生的轨迹，以便进行统计分析。若细胞接种密度过高，则很可能出现多个细胞轨迹重叠的现象。重叠的轨迹无法被准确量化，因此在最终分析测试细胞运动时不能将其纳入考虑。由于多个细胞共同作用导致的轨迹重叠通常易于观察，表现为合并或交叉的轨迹（在分析区域内），其中可在同一连续的无细胞区域中观察到两个或更多细胞。
<ol start="3">
	<li>在 37 °C/5% CO2 条件下孵育 24 小时（或任何合适的时间；e.g. 我们曾分析过处理后 6 至 24 小时之间的单核细胞运动能力，以及处理后 12 小时的内皮细胞）。确定和测量细胞运动能力的最佳时间范围将因所研究的细胞类型而异，因此应针对每种细胞类型通过实验确定（但一个良好的起始点是处理后 6 至 12 小时）。</li>
</ol>
注意：如果需要在后续时间储存和/或分析实验用胶体金包被的盖玻片，则需将细胞和金纳米颗粒固定在盖玻片上。为完成此固定步骤，在执行完步骤 3.3 后，首先用 1× PBS 小心清洗盖玻片 2 次（建议采用浸入式清洗，以避免金纳米颗粒从盖玻片上脱落），然后使用标准的细胞固定方法，例如在室温下用 3% 多聚甲醛孵育。在孵育 15 分钟后，应移除 3% 多聚甲醛，并用 1× PBS 小心清洗盖玻片 3 次。固定后的盖玻片可储存在冰箱中。
<ol start="4">
	<li>使用光学显微镜，拍摄单个运动细胞形成的轨迹图像（注意：拍摄细胞轨迹所用的放大倍数将根据所研究的细胞类型而有所不同）。非运动性细胞和运动性细胞在胶体金包被的盖玻片上形成的细胞轨迹示例如图2所示。</li>
</ol>
注意：在吞噬动力轨迹运动分析中所用尺寸的金纳米颗粒已被证实对细胞完全无毒30。如有必要，可通过台盼蓝染色或检测其他细胞活力标志物来评估待测细胞的活力。若需进行此步骤，需考虑是否需要固定、固定方式等条件。
<ol start="5">
	<li>使用美国国立卫生研究院开发的免费软件，例如 ImageJ 软件（<a href="http://rsbweb.nih.gov/ij/" target="_blank">http://rsbweb.nih.gov/ij/</a>）或 NIH Image（<a href="http://rsb.info.nih.gov/nih-image/" target="_blank">http://rsb.info.nih.gov/nih-image/</a>），或由圣安东尼奥德克萨斯大学健康科学中心开发的 ImageTool（<a href="http://ddsdx.uthscsa.edu/dig/itdesc.html" target="_blank">http://ddsdx.uthscsa.edu/dig/itdesc.html</a>），根据所采集的图像，测定每个实验组中 10 至 20 个或更多细胞（每样本）清除的胶体金平均面积（以任意单位表示）。随后可对收集的结果进行统计学分析。例如，结果可表示为均值 ± 均值标准误（SEM），并进行 Student's t 检验，以 P 值 &lt;0.05 作为判断样本间差异具有统计学意义的标准。图 3 和图 4 展示了分析细胞清除胶体金面积的操作步骤。</li>
</ol>

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<li>Benazeraf, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+random+cell+motility+gradient+downstream+of+FGF+controls+elongation+of+an+amniote+embryo%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">A random cell motility gradient downstream of FGF controls elongation of an amniote embryo.</a> Nature. 466, 248-252 (2010).</li>
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未声明任何利益冲突。

本文介绍的吞噬动力轨迹运动性检测法是一种简单且高效的细胞迁移定量分析方法。由于可同时分析多种细胞类型9-17该方法在多个学科领域具有广泛的应用潜力。使用胶体金镀膜的玻璃盖玻片可测量运动细胞清除的轨迹面积。该检测方法能够测定不同刺激因素的影响（即 生长因子、纯化的细胞外基质配体、病毒、细菌）对细胞迁移能力的影响。此外，由于无需固定细胞，该实验方法可实现对细胞迁移过程在不同实验时间点的动态监测。同时，该方法仅需使用常规光学显微镜、配备电荷耦合器件（CCD）图像传感器的标准相机以及免费可用的软件，因此无需配备复杂的显微镜系统、高端相机或专用软件套件。尽管该实验设计简单，却是一种在多种实验条件下对多种细胞类型的迁移行为进行统计学分析的有力工具。例如，在这方面，该方法既可有效用于少量实验样本的研究，也可作为高通量筛选实验的有效手段。由于盖玻片上的细胞可在未固定状态下直接观察，该方法还可实现对活细胞运动行为的长时间动态分析，而无需配备带有封闭式恒温恒湿二氧化碳培养环境的显微镜系统。2 培养箱。此外，噬动轨迹运动性检测法有助于研究那些不适合进行延时成像的细胞的运动性，因为在基于胶体金的运...

<table><tbody><tr><td>玻璃盖玻片（15 mm）</td><td>Fisher Scientific</td><td>12-545-83</td><td></td></tr><tr><td>明胶 300 Bloom</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>G-1890</td><td></td></tr><tr><td>三水合四氯金酸</td><td>Fisher Chemical</td><td>G54-1</td><td>14.5 mM（工作液终浓度）</td></tr><tr><td>柠檬酸钠</td><td>Fisher Scientific</td><td>BP327-500</td><td>0.5%（工作液终浓度）</td></tr><tr><td>多聚甲醛</td><td>Fisher Scientific</td><td>O4042</td><td>3%（工作液终浓度）</td></tr><tr><td>100 mm 组织培养皿</td><td>Sarstedt</td><td>83.1802</td><td></td></tr><tr><td>12 孔板</td><td>Fisher Scientific</td><td>08-772-29</td><td></td></tr><tr><td>24 孔板</td><td>Fisher Scientific</td><td>07-200-84</td><td></td></tr><tr><td>Techne Oven Hybridiser HB-1D</td><td>LabPlanet</td><td>2040500</td><td>标准实验室烘箱即可满足要求</td></tr><tr><td>10 ml 刻度移液管</td><td>Sarstedt</td><td>86.1254.001</td><td></td></tr><tr><td>Pipet-Aid 移液器填充/分配装置</td><td>Drummond</td><td>13-681-15</td><td></td></tr><tr><td>P200 单通道手动移液器</td><td>Rainin</td><td>PR-200</td><td></td></tr><tr><td>200 μl 防污染吸头</td><td>CLP</td><td>BT200</td><td></td></tr><tr><td>ImageJ 软件</td><td>&lt;a href=&quot;http://rsb.info.nih.gov/ij/&quot; target=&quot;_blank">http://rsb.info.nih.gov/ij/&lt;/a&gt;</td><td></td><td>许可：公共领域</td></tr><tr><td>配备 Photometrics CoolSNAP fx 单色 12 位 CCD 相机的 Nikon Eclipse TE300 显微镜</td><td>Nikon</td><td></td><td>已停产；最接近的替代型号为 Nikon Eclipse Ti，但较低端的 Nikon 80i 也可适用。其他品牌也提供性能相当的显微镜。</td></tr><tr><td colspan="4">&lt;strong&gt;注意：&lt;/strong&gt;以下列出的试剂和设备已在我们的多项研究中使用。只要具有相似规格，也可使用其他供应商提供的同类耗材、试剂和设备。</td></tr></tbody></table>

基于吞噬动力轨迹运动测定法对细胞迁移的定量评估

A Quantitative Evaluation of Cell Migration by the Phagokinetic Track Motility Assay

细胞运动性对于单细胞和多细胞生物而言都是一项重要的生物学过程。它不仅对单细胞生物向营养源移动或逃离不适宜环境至关重要，也在多细胞生物的组织发育、免疫监视和伤口愈合等过程中发挥关键作用1,2,3。该过程的失调可导致严重的神经、心血管和免疫系统疾病，并加剧肿瘤的形成与扩散4,5。在分子层面，肌动蛋白聚合和受体再循环已被证实对细胞前缘突起（片状伪足）的形成具有重要作用，从而驱动细胞向前迁移6,7,8。然而，关于细胞迁移的许多生物学问题仍有待解答。
细胞运动在人类健康与疾病中的核心作用凸显了理解该过程所涉及的具体机制的重要性，也使得评估细胞运动的准确方法尤为关键。通常使用显微镜来观察细胞的移动。然而，细胞移动速度较慢，使得细胞迁移的定量测量成为一项耗时耗力的过程，需要昂贵的相机和软件来生成运动细胞的定量延时影像。因此，许多研究人员迫切需要一种经济高效、操作简便且能够利用常规实验室设备进行细胞迁移定量测量的方法。
吞噬动力轨迹运动性检测利用移动细胞清除其路径上金颗粒的能力，在涂有胶体金的玻璃盖玻片上形成可测量的轨迹9,10。通过使用免费软件，可对每种处理条件下的多条轨迹进行分析，以满足统计学要求。该检测可用于评估多种细胞类型的运动性，例如癌细胞11,12、成纤维细胞9、中性粒细胞13、骨骼肌细胞14、角质形成细胞15、滋养层细胞16、内皮细胞17和单核细胞10,18-22。该实验方案包括制备涂有金纳米颗粒（Au°）的载玻片，这些金纳米颗粒是通过柠檬酸钠还原氯金酸（Au3+）生成的。该方法最初由Turkevich et al. 于1951年建立23，随后在20世纪70年代由Frens et al. 进行了改进24,25。经过该化学还原步骤后，金颗粒（直径10–20 nm）从反应混合物中析出，并可涂布于玻璃盖玻片上，随后即可用于细胞迁移分析9,26,27。
总体而言，吞噬动力学轨迹运动性测定是一种快速、定量且简便的细胞运动性检测方法。此外，该方法还可作为一种简单的高通量检测手段，适用于不适合进行延时成像的细胞类型，也可根据研究者的需求用于其他用途。结合无需昂贵显微镜和软件即可对多种细胞类型的运动性进行定量测量的优势，以及可使用常规实验设备和试剂的特点，吞噬动力学轨迹运动性测定成为致力于研究细胞运动性的科研人员的理想选择。

图中显示了在光学显微镜下拍摄的示例图像，展示单个细胞（本实验中的单核细胞）迁移后形成的轨迹区域（见图2）。非运动性细胞在其周围形成特征性的小型椭圆形或圆形轨迹，表明这些未受刺激的细胞具有较低的基础运动水平（见图2A和2B）。相比之下，高运动性细胞（在本系统中为人类巨细胞病毒（HCMV）感染的细胞）表现出定向迁移，在图2C和2D中可见拉长的轨迹区域。使用40倍物镜的倒置显微镜获取多个轨迹区域图像后，可利用ImageJ软件标记总轨迹面积（见图3）；其他软件也可获得类似结果。我们推荐使用ImageJ软件，因其免费且易于操作。运动性细胞在迁移过程中不会形成标准的几何形状轨迹，因此，使用ImageJ软件中的“自由手绘工具”（freehand tool）来标记运动细胞所形成的轨迹轮廓是一种便捷的分析方法（见图3）。在划定待分析的轨迹区域后，可通过点击ImageJ菜单栏中的“分析”（Analysis），然后从下拉菜单中选择“测量”（Measure），实现数据的定量测定。对<stron...

吞噬动力运动轨迹检测是一种用于评估细胞运动的方法。具体而言，该检测以定量方式随时间测量趋化运动（即细胞的随机运动）。该检测利用了细胞在胶体金包被的盖玻片上留下可测量运动轨迹的能力。

细胞运动是单细胞和多细胞生物的重要生物学过程。对于单细胞生物的移动以及多细胞生物的胚胎发育、免疫反应和伤口愈合等过程至关重要。

本实验的总体目标是利用基于金纳米颗粒的细胞运动性检测方法，实现对细胞运动性随时间变化的定量测量。该目标首先通过制备用于包被金纳米颗粒的玻璃盖玻片来实现。具体而言，无内毒素的盖玻片先用明胶包被，然后进行烘烤。第二步是还原氯金酸，从而生成金纳米颗粒，并将该溶液均匀地涂覆在明胶包被的盖玻片上。接下来，将细胞放置于带有金纳米颗粒涂层的盖玻片上，根据实验所需的时间进行孵育。随后，明胶会置换金纳米颗粒，形成轨迹。最后一步是利用显微镜对移动细胞形成的轨迹进行成像，以监测和定量细胞运动性。最终通过免费提供的软件对轨迹面积进行测量。该技术相较于现有方法（如延时成像）的一个主要优势在于，本实验仅需使用标准的光学显微镜、标准相机，并采用免费的图像分析软件。此外，该检测方法还可通过具备高通量筛选能力的实验流程，简便地实现对多个样本的分析与比较。尽管该方法可用于研究不同生理因素和细胞运动的影响，也可应用于其他系统，例如研究病原体对感染细胞运动能力的影响。通常，初次接触该方法的研究人员可能会遇到困难，因为本方法要求严格遵循实验方案中规定的体积和温度条件。本方案中，重点在于评估沉淀的金纳米颗粒最终溶液的颜色，以确保实验成功。该方法的视觉演示至关重要，因为FGO动力学轨迹运动测定步骤较难掌握。它们包含一些在细胞和分子生物学实验室中不常用的实验步骤。制备明胶包被的盖玻片时，首先将明胶溶于去离子水中，配制成终浓度为每300毫升含0.5克的溶液，然后将混合液高压灭菌15至30分钟。需要注意的是，明胶加入后应在组织培养超净台中两小时内完成此操作。将8至9个经酸洗的盖玻片转移至一个100毫米的塑料培养皿中，以准备包被。确保盖玻片彼此不接触，也不与培养皿的侧壁接触。小心地在每个盖玻片上滴加2至3滴明胶，避免液体溢出到培养皿表面。然后将含有明胶包被盖玻片的培养皿放入烘箱，在90摄氏度下烘烤10分钟。10分钟后，从烘箱中取出培养皿，并将其放回组织培养超净台中。轻轻吸去多余的明胶。将培养皿放回烘箱，在70摄氏度下干燥盖玻片45分钟。待盖玻片干燥后，从烘箱中取出培养皿，并放回组织培养超净台中。使用无菌的细针轻轻挑起盖玻片的一侧，然后用无菌镊子将涂有明胶的盖玻片从培养皿中取出，并放入24孔板的各个孔中。下一步是制备胶体金涂层的盖玻片。首先，在组织培养罩内准备 10 毫升 0.5% 枸橼酸钠溶液：将 1.5 毫升 14.5 毫摩尔的氯金酸溶液与 13.5 毫升经高压灭菌的去离子水加入无菌、无内毒素的锥形瓶中。每处理八到九个盖玻片，应得到淡黄色溶液。氯金酸具有毒性，操作时应小心谨慎。此外，该试剂对光敏感，因此煮沸步骤应在避光条件下进行。当溶液达到沸点时，将烧瓶从加热板上取下，并转移至搅拌器上。为了在溶液中形成胶体金颗粒，需在搅拌条件下，每15毫升氯金酸溶液加入0.7毫升0.5%的柠檬酸钠溶液，继续搅拌约两分钟。在此期间，溶液颜色将由浅黄色变为无色，再由灰色变为紫色，最终变为深紫色。最终呈现深红色或更理想的铁锈色之前，用一支10毫升移液管吸取胶体金溶液，并让溶液在移液管中静置冷却一至两分钟，直至达到室温。然后，将0.5至1毫升溶液滴加到24孔板中涂有明胶的盖玻片表面。将含有胶体金覆盖的盖玻片的24孔板放入37摄氏度的培养箱中，孵育30分钟。待颗粒充分沉降到明胶涂层的盖玻片上后，在光学显微镜下检查其密度。金纳米颗粒的适当分布有助于简便高效地识别太阳能小车的边缘。最佳密度随细胞大小而变化。金颗粒密度过高会阻碍细胞运动，而密度过低则限制对细胞运动轨迹的准确勾画。因此，在单个实验中，只能使用同一批次或经测定具有相同密度的盖玻片。如果金颗粒的浓度过低，可向明胶包被的盖玻片中额外加入0.5至1毫升胶体金溶液。然而，如果金颗粒浓度过高（如此处所示情况），唯一有效的选择是重新制备胶体金溶液，并包被新的盖玻片。如果颗粒密度合适，将培养板放回 37 摄氏度的培养箱中，孵育一小时至过夜，然后通过将盖玻片在无菌磷酸盐缓冲液中浸洗三次，以洗去未结合的金颗粒。随后将胶体金包被的盖玻片保存在装有 PBS 的洁净 12 孔板的孔中，置于 4 摄氏度，直至使用。盖玻片不得干燥，且应在制备后两至三个月内使用。下一步是为细胞培养准备胶体金包被的盖玻片。首先将盖玻片放入24孔板的各个孔中，每个孔预先加入约0.3毫升培养基。然后将大约5,000至50,000个细胞接种到每张胶体金包被的盖玻片上。细胞数量因细胞类型而异，但细胞密度必须足够低，以防止同一区域多个细胞的运动轨迹相互重叠。用盖子盖住培养板，置于37摄氏度、5%二氧化碳的培养箱中孵育6至24小时。根据细胞类型的运动能力，应通过实验确定每种细胞类型的最适孵育时间。孵育结束后，对于不立即分析的盖玻片，应先将其在磷酸盐缓冲液中浸入两次，随后在室温下用3%多聚甲醛孵育15分钟以固定。使用光学显微镜对未固定或已固定的盖玻片上单个移动细胞形成的轨迹进行成像。拍摄细胞轨迹图像时所用的放大倍数因细胞类型而异，但同一项研究中必须使用相同的放大倍数，以便结果具有可比性。对于单核细胞，使用免费提供的软件（如 Image、NIH Image 或 Image Tool），采用 40 倍放大倍数可取得良好效果，通过分析此处所示捕获图像，可确定每个样本中 10 至 20 个或更多细胞清除的胶体金平均面积。图中显示的是单个未受刺激的单核细胞在 40 倍物镜下所清除的胶体金颗粒路径。非运动性细胞在其周围形成典型的小椭圆形或圆形轨迹，表明其运动水平较低。相比之下，高运动性细胞则表现出方向性运动，轨迹呈拉长状，且总体面积更大，形状不规则。最好使用 Image J 软件中的手绘工具勾画细胞轨迹的轮廓，以分析其体积。随后可利用 Image J 分析菜单中的测量工具进行定量面积测量。在进行该操作时，必须严格遵循实验方案中指定的体积和温度，因为任何偏差都可能显著影响最终结果。观看本视频后，您应能够充分掌握如何制备明胶包被的盖玻片、如何制备金纳米颗粒及其包被的盖玻片，以及如何利用光学显微镜监测并定量评估细胞运动。请注意，在电热板上操作沸点溶液时，特别是氟化物、AIC酸和柠檬酸钠沸点溶液产生的蒸气可能具有危害性，因此进行该实验操作时，必须采取在通风橱内操作并运用基本安全常识等预防措施。

a-quantitative-evaluation-cell-migration-phagokinetic-track-motility

Research

科研

JoVE Journal

Immunology and Infection

免疫学与感染

细胞迁移的的Phagokinetic轨道运动MLCK的定量评价

我们描述了一种用于在中性粒细胞趋化因子刺激下，中性粒细胞募集过程中动态测量中性粒细胞与内皮细胞相互作用的明场活体显微镜技术方案。...

通过活体视频显微镜追踪中性粒细胞在组织内的管腔内爬行、跨内皮迁移及趋化运动

该方法可实现对细胞的实时监测，并对细胞迁移的不同参数（如速度、位移和速率）进行定量测量。与传统方法不同，这种实时方法并非基于终点定量迁移测量，而是能够连续监测并计算各种参数。...

使用延时视频显微镜对细胞随机迁移进行定量分析

一种用于小鼠肠神经前体细胞的定量细胞迁移检测方法

本文描述了常用于体外研究细胞迁移和侵袭的高通可及性方法。in vitro...

体外 细胞迁移与侵袭实验

本文描述了一种在二维受限微环境中定量研究细胞自发迁移的方法。该方法利用微加工通道，可在单次实验中于不同条件下研究大量细胞的迁移行为。...

微加工通道中细胞迁移的研究

细胞迁移是一种生物学现象，参与多种生理过程（如伤口愈合和免疫反应）以及病理生理过程（如癌症）。三维胶原基质迁移实验是一种多功能工具，可用于分析不同类型细胞在类似三维生理环境中的迁移特性。...

三维胶原基质中细胞迁移的分析

许多上调的基因会促进肿瘤细胞的迁移和侵袭，从而导致预后不良。确定哪些基因调控肿瘤细胞的迁移和侵袭至关重要。本实验方案介绍了一种实时研究基因表达升高对肿瘤细胞迁移和侵袭影响的方法。...

转染合成mRNA后肿瘤细胞迁移与侵袭的实时定量检测

本实验方案描述了如何对Acanthamoeba...

棘阿米巴 spp. 运动性的定量分析

本方案提供了一种原代小鼠T细胞分离的方法，以及在特定环境条件下对T细胞迁移进行延时显微成像并进行定量分析的技术。...

原代小鼠CD8+ T细胞的实时体外迁移实验

通过流式细胞术对受损或病变的中枢神经系统中的细胞炎症进行定量分析时，脂质/髓鞘碎片会带来复杂性，因为这些碎片的大小和颗粒度与细胞相似，从而降低检测的灵敏度和准确性。我们改进了一种细胞制备方法，可有效去除髓鞘碎片，提高流式细胞术在损伤脊髓中对细胞的检测能力。...

脊髓损伤组织中免疫细胞的流式细胞术定量评估：一种细胞纯化方法的创新应用

学习使用金纳米颗粒包被盖玻片的吞噬运动轨迹法，定量评估细胞迁移能力。该方法通过显微镜成像分析细胞移动轨迹，为研究细胞运动行为提供可靠的定量数据。

基于吞噬动力轨迹运动测定法对细胞迁移的定量评估

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