2012年9月4日
动物模型常被用于研究癌症向骨骼的转移。在本方案中,我们将介绍两种常用于骨转移研究的肿瘤接种方法,并简要描述一些用于监测和定量分析这些模型的常用方法。
本实验的总体目标是通过特定方式注射肿瘤细胞,以诱导肿瘤细胞在骨组织中生长,并继而导致骨破坏。该过程首先将肿瘤细胞重悬于预冷的磷酸盐缓冲液(PBS)中,并置于冰上。随后,将适当数量的细胞注射至麻醉小鼠的左心室或胫骨内。
随后通过多种成像技术对骨肿瘤生长情况及骨参数进行纵向监测。最后对肿瘤和骨参数进行终点定量分析。最终结合体内和离体荧光或生物发光二维放射成像与三维成像。
采用微型CT和组织学方法,在细胞和生长结构水平上显示肿瘤生长及骨微环境的变化。这些方法有助于回答癌症转移领域中的关键问题,例如骨内的哪些因素允许乳腺癌和前列腺癌发生转移性定植。细胞制备的示范由本实验室研究助理 Alisa Merkel 完成,细胞维持时间应少于一周。
在含有10%胎牛血清和0.1毫克/毫升青霉素-链霉素的DMEM培养基中培养表达GFP标记的M-D-A-M-B 2 3 1克隆细胞,于37摄氏度、5%至8%二氧化碳条件下培养。当细胞融合度达到80%至90%时进行传代,按1:10比例稀释。为准备接种,当细胞融合度达到80%至90%时,使用10毫升含0.15%胰蛋白酶和EDTA的溶液对细胞进行消化处理。
立即将细胞用含10% FBS的冰冻DMEM转移至50毫升锥形管中,以离心力×g离心5分钟。将沉淀重悬于50毫升锥形管中的25毫升冰冻PBS(不含钙和镁)中,计数细胞,离心去除上清,再将细胞重悬于冰冻PBS中,用于心内注射时细胞浓度为每毫升10的6次方个细胞,用于胫内注射时为每毫升250,000个细胞。
选用免疫缺陷的雌性小鼠,年龄为4至6周,在注射前5到10天饲喂Tela 29 20 x饮食。实验时,先将小鼠置于含2.5%异氟烷的麻醉舱内进行麻醉,随后将小鼠移至通风橱内的鼻罩下,并使其仰卧位固定。用10%聚维酮碘溶液擦拭胸部,再用70%乙醇脱碘。
在小鼠胸骨切迹与剑突顶端之间的中点处、胸骨稍偏左侧的位置标记注射点。接着,使用一支300 µL、28号半英寸的胰岛素注射器,先吸取少量空气,以在活塞与液面之间形成间隙,然后用一只手绷紧小鼠皮肤,另一只手吸取100 µL细胞悬液。
保持针头垂直向上,成功插入左心室后,注射器内应出现明显的鲜红色搏动性血流。到达此深度后,小心下压注射器活塞,同时避免针头明显移动,以防刺破心脏或将细胞溢入胸腔。为减少细胞滴入胸腔,可轻微回抽活塞,以产生少量负压。
然后在拔出针头时,直接将其从胸腔中抽出,注意拔出过程中避免倾斜针头,以免撕裂心脏外膜并引起出血。在注射部位施加轻柔压力约一分钟,以减少出血。移除鼻罩时,将小鼠转移至加热垫上,直至其完全恢复意识。
在进行胫骨内注射操作前,立即给小鼠注射布比卡因。将小鼠麻醉后置于鼻罩中。用四指和拇指以10%聚维酮碘清洁双侧腿部,随后用乙醇擦拭。
轻轻握住外踝、内踝及胫骨下半部分,然后弯曲腿部,使膝关节显露并便于操作。用70%乙醇润湿皮肤,以增强下方髌韧带的可见度;在牢固握住脚踝的同时,髌韧带应呈现为一条清晰的白色粗线。
将28号半英寸针头穿过髌骨中点的髌韧带,插入胫骨近端的前髁间区域。以稳定而坚定的压力,配合轻微的钻入动作,小心引导针头穿过生长板。当针头穿透胫骨生长板时,阻力将明显减小。
轻轻横向移动针头,以确保其位于胫骨内并穿过生长板。若针头位置正确,移动将受到限制。缓慢按压推杆,注入 10 µL 细胞溶液。
此时应几乎感觉不到阻力,然后缓慢抽出针头。将小鼠移出麻醉状态,并置于加热垫上直至其恢复。
每周监测小鼠两到三次。对麻醉后的小鼠进行多种成像技术检测,如荧光素酶成像、GFP荧光和X射线成像。荧光信号指示肿瘤所在区域。
采用雌酮扫描来定位病灶。这些病灶与荧光图像相对应。有关成像技术的更多详细信息可在此方案的书面部分找到。
注射后21至35天,采用经IACUC批准的方法处死小鼠,并将骨骼置于4%福尔马林中保存,随后对分离的骨骼进行显微CT以及苏木精和DSN染色的组织形态学体外分析。具体操作细节详见肿瘤细胞经心内或胫内接种后的书面实验方案。
通过放射摄影以及荧光或生物发光技术对小鼠进行每周监测。病灶通常在第二至第三周之间通过X射线显现。虽然根据模型的不同(如此处所示),病灶最早可在第二周通过荧光和生物发光检测到,但病灶在骨骼中表现为暗色孔洞,并可能随时间推移而更加明显。病灶通过放射图像和荧光的MetaMorph分析进行定量。
使用 Maestro 成像采集与分析软件进行定量。在本图中,骨量丢失通过显微CT分析进行量化。显微CT测量所得的骨结构与矿化数据被重建为健康骨与荷瘤骨的三维图像,其中骨破坏区域显示为空缺区域。
随后对样品进行组织形态几何学分析,以确定肿瘤负荷以及骨体积与组织体积的比值。在进行这些操作时,重要的是保持耐心,并仔细摆放每只小鼠,密切监测小鼠状态。如果小鼠开始出现死亡,可能是由于细胞聚集所致,此时应立即重新制备细胞。
最不应该做的就是匆忙操作或感到沮丧。请记住,随着练习次数的增加和时间的推移,在掌握这些技术后,您的操作会变得越来越熟练和迅速。这些技术为癌症研究人员在活体条件下研究骨转移铺平了道路。
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本方案描述了在小鼠中进行肿瘤接种以研究癌症向骨骼转移的方法。该方案概述了肿瘤细胞的注射以及随后对骨肿瘤生长的监测过程。
建立可靠的骨转移体内模型对于评估靶向肿瘤-骨相互作用的治疗候选药物至关重要。这些模型能够在与疾病相关的系统中阐明定植、增殖及溶骨性通路,从而实现机制层面的风险排除。该方法有助于提高在乳腺癌、前列腺癌和肺癌适应症中先导化合物筛选及临床前优先排序的预测可信度。
该方法可整合到从早期发现、先导物识别至临床前研究的整个发现流程中,支持假设验证和生物学风险降低。