2016年12月29日
本文介绍了一种捕获果蝇(Drosophila)原肠胚形成过程的活体成像方法。该技术使我们能够更深入地理解早期发育过程中所涉及的顶端收缩现象,并进一步分析组织结构重塑期间调控细胞运动的机制。
本实验的总体目标是更好地理解果蝇原肠胚形成过程中细胞的形态与运动。本文提供了一种可靠的果蝇原肠胚形成测量方法,用于检测胚胎发育这一阶段形态发生性细胞运动的起始。该技术的主要优势在于,能够在原肠胚形成期间同时识别细胞重排和顶端收缩现象。
实验开始前,准备以下混合物:375 毫升水、125 毫升市售 100% 苹果汁和 12.5 克琼脂。
12.5 克葡萄糖。接下来,将混合物放入微波炉中加热,直至琼脂完全融化。然后将其倒入一个 3 厘米的细胞培养皿中。
将混合物于 4 摄氏度保存,以备后续使用。制备好苹果培养基后,在其表面添加一层薄薄的揉捏酵母糊,以供果蝇产卵。将 25 只雄性果蝇和 25 只雌性果蝇放入一个装有覆盖揉捏酵母的苹果培养基的培养瓶中。
用铝箔纸包裹塑料果蝇培养瓶,以促进果蝇产更多卵。将培养瓶倒置放入培养箱中过夜。次日早晨,将苹果汁培养板更换为新的。
然后用铝箔纸包裹瓶子,让果蝇产卵三到四个小时。果蝇产卵后,用棉签将卵从培养皿上轻轻刮下。用滤网收集胚胎,并用磷酸盐缓冲液(PBS)清洗。
用 PBS 在 12 孔培养板中再清洗胚胎三次。在 12 孔培养板中用 50% 次氯酸钠溶液去除胚胎的卵膜。去卵膜处理后,再用 PBS 清洗胚胎三次。
将胚胎转移至含有 PBS 的 3 厘米细胞培养皿中。在显微镜下根据胚胎边界的透明程度挑选 5 期胚胎。使用 200 微升移液器吸头收集已分期的胚胎。
接下来,将两个选定的胚胎放置在玻璃盖玻片上,并用纸巾吸去多余的 PBS。用精细卷起的纸巾将胚胎背侧朝上调整至盖玻片表面。然后使用细针以硅脂将胚胎固定在玻璃盖玻片上。
在胚胎上加入一小滴Hollow Carbon Oil 700,将含有胚胎的盖玻片倒置放在凹面载玻片上,载玻片底部留出一定空间。然后将盖玻片粘附在载玻片上。
最后,使用共聚焦成像系统、氩离子488激光器和油浸物镜观察胚胎。通过活体成像采集延时图像,利用DE-钙黏蛋白GFP标记细胞运动,持续500秒,以分析果蝇原肠胚形成期间单个细胞的顶区。在500秒时,顶面收缩和内陷现象清晰可见。
通过使用我们的方法,我们可以进一步理解果蝇原肠作用的分子机制,以及癌症转移过程中涉及的上皮-间质转化。
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本文介绍了一种捕获果蝇原肠胚形成过程活体图像的方法,有助于加深对早期发育过程中顶端收缩现象的理解。该技术可实现对参与组织结构重塑的细胞运动进行详细分析。
在果蝇(Drosophila)原肠胚形成过程中对细胞形态改变和运动进行活体成像,为解析上皮-间质转化(EMT)的分子机制提供了强有力的平台。EMT 过程与纤维化及癌症转移密切相关。该方法可实现对顶端收缩和细胞重排的高分辨率可视化,有助于提高针对 EMT 相关通路早期靶点验证的预测可信度。该策略加强了从发育生物学向生物制药研发中疾病相关机制研究的转化连续性。
该成像方法可整合到从早期假设验证到EMT相关靶点的临床前模型开发的整个发现流程中。