Name: 纳米颗粒对荷瘤小鼠药相结合的样品提取及同时色谱定量分析 (视频) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-10-05T13:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 57 s
Description: 学习使用反相高效液相色谱法同时提取和定量分析生物样品中的多柔比星、丝裂霉素C及其代谢物多柔比星醇。该方法无需更换流动相即可实现三种抗癌药物的同步检测，为纳米药物动力学研究提供可靠技术支持。

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

作者衷心感谢加拿大自然科学与工程研究理事会（NSERC）为高效液相色谱仪（HPLC）提供的设备资助，感谢加拿大卫生研究院（CIHR）和加拿大乳腺癌研究联盟（CBCR）向X.Y. Wu提供的运行经费，以及多伦多大学向R.X. Zhang和T. Zhang提供的奖学金。

所有动物实验均经安大略癌症研究所大学健康网络动物护理委员会批准，并依照加拿大动物护理委员会指南进行。
1. 生物样本制备
<ol>
	<li>在静脉注射含药物制剂后预设的时间点，采集全血、主要器官及乳腺肿瘤例如，DMPLN，脂质体DOX）
	<ol>
		<li>经尾静脉向荷乳腺肿瘤小鼠注射含有药物的制剂。</li>
		<li>在指定时间点对小鼠进行麻醉（例如在密闭容器中给予可吸入的2%异氟烷，麻醉小鼠（约15分钟）。</li>
		<li>将麻醉后的小鼠仰卧放置，使其鼻部穿过持续供给2%异氟烷的鼻罩。 
		注意：为确保小鼠处于深度麻醉状态，可轻轻捏压小鼠前肢，观察是否出现抽动反应。</li>
		<li>使用70%乙醇彻底清洁小鼠胸部和腹部区域，然后对深度麻醉的小鼠进行心脏穿刺终末操作，采用肝素化1 mL注射器和23 G针头。</li>
		<li>将全血收集至已标记的喷有肝素钠的塑料管中，轻轻旋转混匀管体，确保所采集的全血与管壁涂层肝素充分接触。至少采集 50 µL 全血样本。始终将样品置于冰上。</li>
		<li>将小鼠四肢用胶带固定，使用剪刀和镊子打开小鼠的腹腔和胸腔。将肠道移至一侧，向上推起肝脏以充分暴露门静脉。剪开门静脉以引流血液。</li>
		<li>通过心脏灌注50 mL冰冻的0.9%生理盐水，使用带有25 G针头的10 mL注射器对整只小鼠进行灌注。 
		注意：将针头弯曲于 90° 用于引导注射器进入门静脉。</li>
		<li>依次切除以下器官：心脏、肺、肝、脾、肾。然后，使用剪刀在小鼠右侧乳腺脂肪垫处将乳腺肿瘤与周围结缔组织分离。将所有器官分别收集至1.5 mL聚丙烯管中，并迅速置于液氮中冷冻。 
		注意：将胆囊从肝脏上分离。</li>
		<li>将全血储存于 4 °C 以及 -80 °C 冰箱中保存的切除组织80 °C 冷冻保存，待后续进行高效液相色谱分析。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>从生物基质中提取多柔比星、丝裂霉素C和多柔比星醇
	<ol>
		<li>迅速称量所有冷冻解剖组织，并转移至13 mL圆底锥形管中。为避免药物可能发生代谢或降解，需将样品置于冰上保存。</li>
		<li>加入1-5 mL预冷的细胞裂解缓冲液至离心管中。 
		注意：缓冲液体积的使用量需根据组织重量，按照组织与缓冲液质量体积比1 g : 5 mL（w/v）进行计算；对于心脏、脾脏等较小器官，比例为1 g : 2 mL。</li>
		<li>使用电动手持匀浆器，在冰上以18,000 rpm的速度通过上下 strokes 动作匀浆组织样本。 
		注意：完成匀浆需要进行约3至5次短时匀浆操作，每次短时匀浆时间少于15秒，每次之间需将组织置于冰上冷却。</li>
		<li>用去离子蒸馏水（DDI H₂O）清洗匀浆器的10 mm锯齿形发生器探头2O、70% 乙醇，然后 DDI H2在每份组织样本之间留出 O，以避免交叉污染。</li>
		<li>转移 50 µL 将组织匀浆或全血加入至1.5 mL聚丙烯微量离心管中，并加入标准品 5 µL 加入内标物（I.S.）4-甲基伞形酮（4-MU）（2000 ng/mL）至试管中。 
		注意：4-MU 溶液在此用甲醇配制。</li>
		<li>添加 250 µL 将冰冷的提取溶剂加入含有全血或组织匀浆的试管中。 
		注意：提取溶剂由60%乙腈（ACN）和40%乙酸铵（5 mM）组成，使用0.05%甲酸将pH调节至3.5。样品与提取溶剂的体积比为1:5（v/v）。</li>
		<li>剧烈涡旋振荡混合物2分钟，4 ℃下以3,000 × g离心 oC 下 10 分钟，用移液器吸取 200 µL 将上清液转移至另一预冷的干净微量离心管中。</li>
		<li>蒸发上清液 60 °C 在避光条件下，用氮气缓慢吹扫。</li>
		<li>用适当溶剂重悬干燥残留物 100 µL 冰冷甲醇，剧烈涡旋振荡30秒，然后在3000 × g离心 4 °C 再持续 5 分钟。</li>
		<li>将上清液转移至HPLC小瓶插件中，并将样品瓶放入自动进样器样品盘中以备进样。</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
2. 高效液相色谱仪器及操作参数
<ol>
	<li>以一致且可重复的方式制备高效液相色谱流动相
	<ol>
		<li>量取 500 mL HPLC 级 H2使用量筒量取 O。</li>
		<li>使用单独的量筒量取500 mL色谱纯乙腈（ACN）。</li>
		<li>小心地将 0.5 mL 三氟乙酸（TFA）（注意）加入每份 500 mL 的 H2O 和 ACN 以制备 H 的流动相2O 和含 0.1% TFA 的 ACN。 
		注意：三氟乙酸（TFA）具有腐蚀性和毒性，应在实验室通风橱中操作。所有溶剂混合物均在室温下配制。</li>
		<li>通过尼龙膜滤器过滤流动相 0.45 µm 孔径大小，并转移至洁净的HPLC储液瓶中。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>设置高效液相色谱仪，用于同时检测阿霉素（DOX）、丝裂霉素C（MMC）、阿霉素醇（DOXol）及内标物4-甲基伞形酮（4-MU）。
	<ol>
		<li>打开梯度泵、脱气机、自动进样器、光电二极管阵列检测器和多波长荧光检测器。</li>
		<li>输入流动相组成的初始条件为16.5% H2O（0.1% TFA）和 83.5% 乙腈（0.1% TFA）（v/v）</li>
		<li>将紫外检测器设置为两个通道，一个在310 nm用于4-MU（内标），另一个在360 nm用于MMC。</li>
		<li>将荧光检测器设置为两个通道，其中一个设为 λex/λem =365/445 nm，用于4-MU，另一个在λex/ λem分别为 DOX 和 DOXol 的 480 nm/560 nm。</li>
		<li>设定等度流动相流速为1.0 mL/min。</li>
		<li>平衡预装的反相C18 色谱柱（4.6 mm × 250 mm， 5 µm室温孵育10分钟以建立基线。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>使用梯度流动相条件分离药物（DOX、MMC、DOXol 和 4-MU）。
	<ol>
		<li>注射 15 µL 使用自动进样器对提取并重新浓缩的样品进行分析。</li>
		<li>在18分钟内使用自动梯度泵将初始流动相条件（参见方案步骤2.2.2）逐渐转变为100%乙腈（0.1%三氟乙酸）。 
		注意：在分离过程中，同时出现四个通道（两个紫外吸收通道和两个荧光通道），每个通道显示一种药物化合物（参见实验步骤 2.2.3 和 2.2.4）。</li>
		<li>保持100%乙腈（含0.1%三氟乙酸）1分钟，然后在1分钟内恢复至初始流动相条件。</li>
		<li>以初始流动相在1.5 mL/min流速下重新平衡色谱柱4分钟，然后进行下一个样品进样。</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
3. HPLC 验证
<ol>
	<li>制备多柔比星、丝裂霉素C、多柔比星醇和4-甲基伞形酮（内标）的工作标准品。
	<ol>
		<li>分别称取 1 mg DOX 和 MMC 药物粉末（注意）以及 4-MU，置于新的小张称量纸（3 英寸 x 3 英寸）上2). 
		注意 所有抗癌药物均被视为健康危害物，吸入或摄入后可引起急性毒性及生殖细胞致突变性。操作时应谨慎，佩戴手套和口罩。</li>
		<li>将称量好的DOX、MMC和4-MU分别转移至新的1.5 mL聚丙烯微量离心管中。</li>
		<li>加入1 mL甲醇，短暂涡旋，以获得1 mg/mL浓度的DOX和MMC。</li>
		<li>向含有预先称重的1 mg DOXol（注意）的样品瓶中加入1 mL甲醇，短暂涡旋振荡，以获得1 mg/mL浓度的DOXol溶液。 
		注意：DOXol 是一种具有心脏毒性的代谢产物，应谨慎操作。</li>
		<li>移液器 20 µL 将制备好的DOX、MMC、DOXol和4-MU储备液分别加入新的1.5 mL聚丙烯微量离心管中，并加入 980 µL 甲醇以获得工作标准品 20 µg/mL 每种药物</li>
		<li>稀释 20 µg/mL DOX、MMC 和 DOXol 的甲醇工作标准品，浓度为 50 ng - 20 µg /mL（DOX、MMC 和 DOXol）以及 2000 ng/mL（内标物 4-MU）。</li>
		<li>用一小片石蜡膜覆盖工作液管盖，以防止甲醇挥发，再用铝箔包裹整个管子以避免直接光照，于 -20 °C.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>确定多柔比星（DOX）、丝裂霉素（MMC）和多柔比星醇（DOXol）在生物基质中的线性范围、精密度和准确度即， 全血和肿瘤匀浆。
	<ol>
		<li>同时加标 5 µL 50 ng/mL DOX 和 DOXol 工作标准品 20 µg/mL），丝裂霉素C（1,000 ng/mL - 16 µg/mL）和 4-MU（2 µg/mL) 进入 50 µL 在聚丙烯微量离心管中，使用空白全血或组织匀浆制备标准浓度曲线，药物化合物的浓度范围为 5 - 2000 ng/mL，内标物 4-MU 的浓度为 200 ng/mL。</li>
		<li>执行方案1.2中所述的药物提取实验。</li>
		<li>使用低、中、高浓度的多柔比星和多柔比醇（50、500 和 2,000 ng/mL）以及丝裂霉素C（100、1,000、2,000 ng/mL）进行日内和日间精密度与准确度测定。 
		注意：在分析当天制备新鲜的标准品浓度。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>样品分析
	<ol>
		<li>注射 15 µL 使用自动进样器对样品进行处理。</li>
		<li>在0至18分钟内逐步改变流动相，逐渐增加乙腈（ACN）的比例。</li>
		<li>18分钟后，保持流动相条件1分钟。</li>
		<li>在接下来的2分钟内恢复至初始状态，然后在下一次注射前再平衡4分钟。</li>
		<li>每次样品运行后，注意药物化合物的色谱峰及其保留时间显示如下：MMC、DOXol、4-MU（内标）和 DOX。</li>
		<li>使用高效液相色谱（HPLC）软件对药物化合物的曲线下峰面积（AUC）进行积分。</li>
		<li>计算各药物化合物与内标物（I.S.）的AUC比值（公式1），并利用在相同提取条件下制备的标准曲线测定DMPLN制剂中DOX、MMC和DOXol的药物浓度。 
		<img alt="峰面积比计算公式 AUC_药物/AUC_内标；用于数据分析的分析化学公式。" src="/files/ftp_upload/56159/56159eq1.jpg" data-altupdatedat="1788250015000" data-alt="公式 1"></li>
		<li>通过比较使用甲醇从加标生物样品提取物中重建的药物浓度与甲醇中的标准（“纯”）药物溶液浓度，计算药物回收率百分比（公式2）。 
		<img alt="药物回收率计算公式，\( \text{公式：药物回收率 \%} = \frac{\text{提取样品峰面积比}}{\text{纯净样品峰面积比}} \times 100 \)。" src="/files/ftp_upload/56159/56159eq2.jpg" data-altupdatedat="1788250015000" data-alt="公式 2"></li>
	</ol>
	</li>
</ol>

作者无任何竞争性财务利益和利益冲突。

与仅能逐个检测单一药物成分的其他色谱方法相比，本高效液相色谱（HPLC）方案可在同一生物基质中同时定量三种药物化合物（DOX、MMC 和 DOXol），且无需更换流动相。该样品制备与分析方法已成功应用于两种基于纳米粒子的药物递送系统的药代动力学和生物分布研究。即， 脂质体阿霉素和DMPLN22. 由于 聚乙二醇化 纳米颗粒可延长所载药物的系统循环时间，从而在较长时间内维持较高的血液药物浓度（&#62;24 h），该色谱方法在临床前研究中对纳米颗粒共载药物组合的大规模样品分析具有成本效益22游离阿霉素溶液和脂质体阿霉素的药代动力学如图所示 图4A 与已报道的啮齿类动物文献数据一致38,39，进一步支持了当前方法的有效性。尽管紫外光电二极管阵列检测器可利用不同波长通过多通道同时检测和显示药物（即...

化疗是多种癌症的主要治疗方式，但由于药物耐药性及其他因素，常伴随严重不良反应且疗效有限1,2,3。为了提高化疗效果，临床上已采用药物联合治疗方案，其设计依据包括毒性不重叠、药物作用机制不同以及无交叉耐药性等原则4,5,6。在临床试验中，与序贯给药方案相比，同时给予多种药物的联合治疗通常可观察到更高的肿瘤应答率7,8。然而，由于游离药物形式的生物分布不理想，多种药物的同时注射可能导致显著的正常组织毒性，其危害甚至超过治疗获益9,10,11。基于纳米载体的药物递送系统已被证明能够改变包载药物的药代动力学和生物分布，增强药物在肿瘤部位的富集12,13,14。正如我们在近期文章中所综述的，共载协同作用药物的纳米颗粒能够实现多种药物向肿瘤组织的时序与空间可控共递送，从而在癌细胞中产生协同药效，有效缓解游离药物联合使用时所面临的问题4,15,16。因此，在临床前和临床研究中均已证实此类纳米药物具有更优的治疗效果和较低的毒性4,17,18。
我们之前的 体外 研究发现，两种抗癌药物阿霉素（DOX）和丝裂霉素C（MMC）联用对多种乳腺癌细胞系具有协同作用，且将DOX与MMC共同载入聚合物-脂质杂化纳米颗粒（DMPLN）可克服多种与多药耐药相关的外排泵例如， P-糖蛋白和乳腺癌耐药蛋白19,20,21. 在体DMPLN 实现了阿霉素（DOX）和丝裂霉素 C（MMC）在肿瘤部位的时空共递送，并提高了药物在癌细胞内的生物利用度，这一点通过 DOX 代谢产物阿霉素醇（DOXol）的生成受到抑制得以证实22因此，与游离的DOX和MMC联合用药或脂质体DOX制剂相比，DMPLN增强了肿瘤细胞凋亡，抑制了肿瘤生长，并延长了宿主的生存期。22,23,24,25.
分析纳米载体共递送药物的实际含量对于设计有效的纳米颗粒制剂至关重要。已有多种方法通过高效液相色谱法（HPLC）单独或联合质谱法（MS）来检测血浆中单药阿霉素（DOX）或丝裂霉素C（MMC）的浓度26,27,28,29,30,31,32,33,34。然而，这些方法通常耗时较长，且在联合治疗中应用不切实际，因为需要为多种药物（有时还包括药物代谢物）的分析分别制备大量生物样本。此外，DOX和MMC在血浆中与蛋白质结合能力强，红细胞也具有很强的结合和富集多种抗癌药物的能力35,36。因此，仅通过血浆分析可能无法准确反映DOX或MMC在血液中的真实药物浓度。本研究（图1）介绍了一种简便且可靠的多药物分析方法，采用反相HPLC技术，可同时从全血及多种组织（例如，肿瘤）中提取并定量DOX、MMC以及DOX的代谢产物阿霉素醇（DOXol）。该方法已成功应用于测定游离溶液或纳米颗粒形式（即，DMPLN和脂质体DOX）给药后，在原位移植的鼠源性乳腺肿瘤小鼠模型中经静脉（i.v.）注射后DOX和MMC的药代动力学及生物分布，以及DOXol的生成情况22。

<table><tbody><tr><td>阿霉素&amp;nbsp;</td><td>聚合物治疗学</td><td>111023</td><td>抗癌药物</td></tr><tr><td>丝裂霉素C</td><td>多聚医学治疗</td><td>060814</td><td>抗癌药物</td></tr><tr><td>阿霉素醇（DOXol）</td><td>多伦多研究化学品公司</td><td>D558020</td><td>阿霉素的代谢产物</td></tr><tr><td>4-甲基伞形酮钠盐&amp;nbsp;</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>M1508</td><td>内标物</td></tr><tr><td>十四烷酸</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>544-63-8&amp;nbsp;&amp;nbsp;</td><td>用于聚合物-脂质杂化纳米颗粒的材料</td></tr><tr><td>聚氧乙烯（100）硬脂酸酯</td><td>光谱</td><td>M1402</td><td>用于聚合-脂质杂化纳米颗粒的材料</td></tr><tr><td>聚氧乙烯（40）硬脂酸酯</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P3440</td><td>用于聚合物-脂质杂化纳米颗粒的材料</td></tr><tr><td>泊洛沙姆 F68 (PF68)</td><td>BASF 公司</td><td>9003-11-6</td><td>用于聚合物-脂质杂化纳米颗粒的材料</td></tr><tr><td>超声处理（UP100H）</td><td>Hielscher，超声技术</td><td>NA</td><td>纳米颗粒制备</td></tr><tr><td>水浴锅（ISOTEMP 3016HS）</td><td>Fisher Scientific</td><td>NA</td><td>纳米颗粒制备</td></tr><tr><td>脂质体阿霉素&amp;nbsp; （Caelyx）</td><td>Janssen</td><td>购自玛格丽特公主医院药房</td><td>临床批准的纳米颗粒制剂&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>HPLC级甲醇</td><td>Caledon Chemicals</td><td>6701-7-40</td><td>HPLC流动相组成</td></tr><tr><td>HPLC级H&lt;span class=&quot;字体10&quot;&gt;&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;&lt;/span&gt;&lt;span class=&quot;字体8&quot;&gt;O&lt;/span&gt;</td><td>Caledon Chemicals</td><td>8801-7-40</td><td>HPLC 流动相组成</td></tr><tr><td>HPLC级乙腈&amp;nbsp;</td><td>Caledon Chemicals</td><td>1401-7-40</td><td>HPLC 流动相组成</td></tr><tr><td>三氟乙酸</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>302031</td><td>HPLC流动相组成</td></tr><tr><td>0.45 &amp;mu;m 尼龙膜滤纸</td><td>沃特曼</td><td>WHA7404004</td><td>高效液相色谱流动相的配制</td></tr><tr><td>1 cc 塑料注射器</td><td>Becton, Dickinson and Company</td><td>2606-309659</td><td>治疗注射</td></tr><tr><td>5cc 塑料注射器</td><td>Becton, Dickinson and Company</td><td>2608-309646</td><td>组织采集</td></tr><tr><td>30G 1/2 针头</td><td>Becton, Dickinson and Company</td><td>305106</td><td>治疗注射</td></tr><tr><td>25G 5/8 针头</td><td>Becton, Dickinson and Company</td><td>305122</td><td>组织采集</td></tr><tr><td>无菌0.9%氯化钠溶液</td><td>多伦多大学自有品牌</td><td>1011</td><td>组织灌注</td></tr><tr><td>13 ml 圆底锥形管&amp;nbsp;</td><td>SARSTEDT</td><td>62.515.006</td><td>脯氨酰脯氨酸，组织匀浆</td></tr><tr><td>α-最低必需培养基（MEM）&amp;nbsp;</td><td>Gibco</td><td>12571063</td><td>细胞培养基</td></tr><tr><td>1 × 磷酸盐缓冲液</td><td>Gibco</td><td>10010023</td><td>组织匀浆</td></tr><tr><td>Triton X-100</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>X100-100 mL</td><td>组织匀浆</td></tr><tr><td>甲酸</td><td>Caledon Chemicals</td><td>1/5/3840</td><td>调节萃取溶剂的 pH 值</td></tr><tr><td>肝素钠喷涂塑料管</td><td>Becton, Dickinson and Company</td><td>367878</td><td>血液采集</td></tr><tr><td>分析天平&amp;nbsp;</td><td>Sartorius&amp;nbsp;</td><td>CPA225D</td><td>NA</td></tr><tr><td>pH计&amp;nbsp;</td><td>Fisher Scientific</td><td>13-637-671</td><td>accumet BASIC</td></tr><tr><td>涡旋混合器</td><td>Fisher Scientific</td><td>02-215-365</td><td>以所需速度涡旋混匀样品</td></tr><tr><td>1.5 ml&amp;nbsp; 微量离心管</td><td>Fisherbrand</td><td>2043-05408129</td><td>脯氨酸</td></tr><tr><td>Model 1000 匀浆器</td><td>Fisher Scientific</td><td>08-451-672</td><td>组织匀浆</td></tr><tr><td>Centrifuge 5702R</td><td>Eppendorf</td><td>5702R</td><td>提取样品制备</td></tr><tr><td>加热蒸发系统</td><td>格拉斯-科尔</td><td>NA</td><td>样品重悬</td></tr><tr><td>HPLC 螺口小瓶</td><td>DIKMA</td><td>5320</td><td>HPLC 样品进样</td></tr><tr><td>带白色硅胶/聚四氟乙烯隔垫的HPLC螺口盖</td><td>DIKMA</td><td>5325</td><td>HPLC 样品进样</td></tr><tr><td>HPLC 聚丙烯插管&amp;nbsp;&amp;nbsp;</td><td>Agilent Technologies</td><td>5182-0549</td><td>最大体积 250 &amp;mu;l，HPLC 样品进样</td></tr><tr><td>Xbridge C&lt;span class=&quot;font10&quot;&gt;&lt;sub&gt;18&lt;/sub&gt;&lt;/span&gt;&lt;span class=&quot;字体8&quot;&gt; 色谱柱&lt;/span&gt;</td><td>沃特世公司</td><td>186003117</td><td>药物分析</td></tr><tr><td>梯度泵&amp;nbsp;</td><td>沃特世公司</td><td>W600</td><td>药物分析</td></tr><tr><td>自动进样器</td><td>Waters Corporation</td><td>W2707</td><td>药物分析</td></tr><tr><td>光电二极管阵列检测器&amp;nbsp;</td><td>沃特世公司</td><td>W2998</td><td>药物分析</td></tr><tr><td>多 &amp;lambda; 荧光检测器&amp;nbsp;</td><td>Waters Corporation</td><td>W2475</td><td>药物分析</td></tr><tr><td>EMPOWER 2</td><td>Waters Corporation</td><td>NA</td><td>数据分析软件</td></tr><tr><td>科学家</td><td>Micromath</td><td>NA</td><td>药代动力学分析</td></tr><tr><td>雌性 Balb/c 小鼠</td><td>杰克逊实验室</td><td>001026</td><td>体内</td></tr><tr><td>EMT6/WT 乳腺癌细胞</td><td>由 Ian Tannock 博士提供；安大略癌症研究所</td><td>NA</td><td>体内</td></tr></tbody></table>

荷瘤小鼠中纳米颗粒递送药物组合后阿霉素与丝裂霉素c的样品提取及同步色谱定量分析

Sample Extraction and Simultaneous Chromatographic Quantitation of Doxorubicin and Mitomycin C Following Drug Combination Delivery in Nanoparticles to Tumor-bearing Mice

联合化疗在临床上常用于癌症治疗；然而，其对正常组织的不良反应可能限制其治疗效果。基于纳米颗粒的药物联合已被证明可缓解游离药物联合治疗所面临的问题。我们先前的研究表明，两种抗癌药物阿霉素（DOX）和丝裂霉素C（MMC）联用对小鼠和人乳腺癌细胞在体外均表现出协同抗肿瘤效应。in vitro。DOX与MMC共载的聚合物-脂质杂化纳米颗粒（DMPLN）可绕过多药耐药相关的多种外排转运蛋白泵，在乳腺肿瘤模型中显示出增强的疗效。与传统的溶液剂型相比，DMPLN的优越疗效归因于DOX与MMC同步的药代动力学特性，以及纳米载体PLN所介导的肿瘤细胞内药物生物利用度的提高。
为评估游离溶液和纳米颗粒形式共同给药的阿霉素（DOX）和丝裂霉素C（MMC）的药代动力学及生物分布，建立了一种简单高效的多药物反相高效液相色谱（HPLC）分析方法。与以往仅分别检测血浆中DOX或MMC的方法不同，该新型HPLC方法可同时定量多种生物基质（例如，全血、乳腺肿瘤和心脏组织）中的DOX、MMC以及一种主要的心脏毒性DOX代谢产物——阿霉素醇（DOXol）。本方法采用兼具荧光和紫外吸收特性的探针4-甲基伞形酮（4-MU）作为内标物（I.S.），实现多种药物在不同检测波长下的一步化检测。该方法已成功应用于原位乳腺肿瘤小鼠模型中，测定纳米颗粒和溶液两种给药方式下DOX和MMC在全血及多种组织中的浓度。所介绍的分析方法是纳米颗粒载体联合用药临床前研究的有力工具。

使用4-MU作为荧光检测器和紫外检测器的内标物，在相同的梯度高效液相色谱条件下，同时检测了两种抗癌药物DOX和MMC以及DOX的代谢物DOXol，且未受到任何生物干扰。MMC、DOXol、4-MU和DOX彼此之间实现了良好分离，保留时间分别为：MMC 5.7 min，DOXol 10.4 min，4-MU 10.9 min，DOX 11.1 min。图2）。全血及各种组织中的每种药物浓度均呈现线性关系，其相关系数（R2) 范围在 0.98 到 1.00 之间（图3 和 表1）。阿霉素（DOX）、阿霉素醇（DOXol）和丝裂霉素C（MMC）在全血中的定量下限（LLOQ）分别为10 ng/mL、10 ng/mL和100 ng/mL，在各种组织中的定量下限分别为25 ng/mL、25 ng/mL和200 ng/mL（表1）。所建立的HPLC方法在...

本方案描述了一种高效且便捷的分析流程，用于从经纳米颗粒制剂协同药物组合治疗的临床前乳腺肿瘤模型的生物样本中提取样品，并同时测定多种药物，包括阿霉素（DOX）、丝裂霉素C（MMC）以及一种具有心脏毒性的阿霉素代谢物——阿霉素醇（DOXol）。

荷瘤小鼠中纳米颗粒递送药物组合后阿霉素与丝裂霉素C的样品提取及同步色谱定量分析

联合化疗在临床癌症治疗中经常使用；然而，其对正常组织的不良反应可能会限制其……

本分析方案的总体目标是利用一种简单且稳健的反相高效液相色谱法，同时从生物基质中提取并定量由聚合物-脂质杂化纳米颗粒共递送的两种抗癌药物——阿霉素（Doxorubicin）和丝裂霉素C（Mitomycin C），以及阿霉素的代谢产物阿霉素醇（Doxorubicinol）。该方法有助于回答纳米医学领域中的关键问题，例如如何基于药物组合的纳米药代动力学设计高效的纳米载体系统。该技术的主要优势在于，可在同一生物基质中同时定量三种药物化合物，且无需更换高效液相色谱的流动相。因此，该方法可深入了解阿霉素、丝裂霉素C和阿霉素醇在原发性乳腺肿瘤中的生物学行为，也可应用于接受类似药物治疗的其他癌症类型。该方法的可视化演示至关重要，因为高效的样品制备步骤难以通过文字描述掌握。开始此操作前，按照文本方案中所述收集全血、主要器官和乳腺肿瘤并进行冷冻。迅速称量冷冻组织，并将重量记录在实验记录本中。然后，将组织转移至13毫升圆底锥形管中。接下来，加入一至五毫升预冷的细胞裂解缓冲液。使用电动手持匀浆器，在冰上以每分钟18,000转的速度，上下移动匀浆组织。随后，用去离子蒸馏水清洗匀浆器的10毫米锯齿型发生器探头。用70%乙醇冲洗探针，然后再用去离子蒸馏水冲洗。将50微升组织匀浆液或全血转移至1.5毫升聚丙烯微量离心管中。然后加入5微升浓度为2,000纳克/毫升的内标物4-甲基伞形酮（4-MethylUmbelliferone）。加入预冷的提取溶剂，其中包含150微升乙腈和100微升5毫摩尔的乙酸铵。剧烈涡旋混合2分钟。在4°C、3,000 g条件下离心10分钟。此后，将200 µL上清液转移至新的预冷微量离心管中。在避光条件下，使用缓慢的氮气流于60 °C蒸发上清液。接着，用100 µL冰甲醇重新溶解干燥的残留物。剧烈涡旋振荡30秒。在3,000 ×g及4 °C条件下离心5分钟。然后，将上清液转移至HPLC小瓶内插管中。将样品瓶放入自动进样器样品盘中以进行进样。首先，按照文本方案中的说明配制高效液相色谱（HPLC）流动相。将流动相组成的初始条件设置为16.5% H₂O和83.5%乙腈。将等度流速设置为 1.0 毫升每分钟。然后，按照文本方案中所述的梯度流动相条件分离药物。接着，将紫外检测器设置为两个通道：一个通道在 310 纳米处用于内标物 4-MethylUmbelliferone，另一个通道在 360 纳米处用于丝裂霉素 C。之后，将荧光检测器的第一个通道设置为激发波长 365 纳米，发射波长 445 纳米，用于检测 4-MethylUmbelliferone。将第二通道的激发波长设置为480纳米，发射波长设置为560纳米，用于阿霉素和阿霉素醇的检测。首先，使用自动进样器注入15微升样品。程序化的梯度流动相组成将在0至18分钟内自动改变，逐步增加乙腈的比例。18 分钟后，将流动相条件

sample-extraction-simultaneous-chromatographic-quantitation

Research

科研

JoVE Journal

Cancer Research

癌症研究

纳米颗粒对荷瘤小鼠药相结合的样品提取及同时色谱定量分析

微泡的超声辐照是一种有前景的策略，可在降低的时间平均声功率下实现肿瘤消融，并实现治疗药物的靶向递送。本研究的目的是开发低占空比的超声脉冲策略和纳米载体，以最大程度地实现非热性微血管消融，并将载药递送至皮下C6胶质瘤。...

通过载药纳米颗粒递送与微血管消融实现小鼠胶质瘤的超声造影靶向治疗

我们描述了一种用于成像抗肿瘤治疗反应的方法 体内...

小鼠乳腺癌模型中肿瘤微环境对药物反应的活体成像

本文详细介绍了肿瘤靶向纳米颗粒HerDox的光学成像分析步骤。特别是，本文描述了如何使用多功能成像设备检测肿瘤靶向性以及评估肿瘤穿透能力的具体方法。...

靶向递送至HER2阳性肿瘤的病毒蛋白纳米颗粒分析

本文介绍了一种基于聚马来酸的纳米药物，旨在为适用于癌症的个体化药物合理设计提供范例。文中描述了用于治疗裸鼠体内Her2阳性人乳腺癌的纳米药物的合成方法。...

基于聚马来酸的纳米生物聚合物用于多重肿瘤标志物靶向：个性化医疗的新机遇？

脂质体在肿瘤内部的异质性蓄积与异常的肿瘤微环境相关。本文介绍了通过灌注成像和基于影像引导的机器人系统测量肿瘤微循环及升高的间质液压力（IFP）的方法。这些测量结果与利用容积微计算机断层扫描（micro-CT）成像确定的脂质体在肿瘤内部的蓄积情况进行比较。...

实体瘤中灌注、间质液压力和脂质体积累的空间测量

本文描述了一种制备和表征负载亲脂性阿霉素前药的1,2-二硬脂酰基-sn-甘油-3-磷酰乙醇胺-N-[氨基-聚乙二醇-2000]（DSPE-PEG）胶束的方法。...

疏水性阿霉素前药胶束的制备与表征

纳米颗粒正成为多种适应症下极具前景的药物递送系统。本文介绍一种简单而高效的方法，利用反向工程改造的家蚕（Bombyx...

丝素蛋白纳米颗粒的制备及其在药物递送中的应用

对...的了解不足 体内 纳米药物的性能阻碍了其临床转化。用于评估的程序 体内...

全面评估的综合流程 在体 内 癌症纳米药物的性能评估

活细胞成像是一种用于可视化动态过程的强大工具。对固定细胞的观察仅能提供静态图像，可能导致对过程的误解和混淆。本研究介绍了一种用于在活细胞中研究脂质体纳米颗粒的摄取、药物释放及细胞内定位的方法。...

使用 体外 利用活细胞成像技术探究脂质纳米颗粒递送的化疗药物

在本实验方案中，通过三步酰胺反应合成载有阿霉素的AS1411-g-PEI-g-PEG修饰金纳米颗粒。随后，阿霉素被负载并递送至靶向癌细胞，用于癌症治疗。...

阿霉素负载的适配体-PEI-g-PEG修饰金纳米颗粒的合成用于靶向药物递送

本文描述了在动物模型中将携带RNA寡核苷酸的磁性氧化铁纳米颗粒递送至转移性乳腺癌的体内给药方案，为癌性核酸的治疗性沉默提供了一种具有临床可行性的方法。...

监测纳米药物在小鼠乳腺癌转移灶中的蓄积

学习使用反相高效液相色谱法同时提取和定量分析生物样品中的多柔比星、丝裂霉素C及其代谢物多柔比星醇。该方法无需更换流动相即可实现三种抗癌药物的同步检测，为纳米药物动力学研究提供可靠技术支持。

荷瘤小鼠中纳米颗粒递送药物组合后阿霉素与丝裂霉素C的样品提取及同步色谱定量分析

探索更多视频