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DOI: 10.3791/57278-v
Lorenzo Brunetti*1,2,3, Michael C. Gundry*1,2,4, Ayumi Kitano4, Daisuke Nakada1,2,4, Margaret A. Goodell1,2,4,5
1Stem Cells & Regenerative Medicine Center,Baylor College of Medicine, 2Center for Cell and Gene Therapy,Baylor College of Medicine, 3Centro di Ricerca Emato-Oncologica (CREO),University of Perugia, 4Department of Molecular & Human Genetics,Baylor College of Medicine, 5Texas Children's Hospital & Houston Methodist Hospital
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
本文介绍了一种快速 CRISPR/Cas9-mediated 基因在小鼠和人原发性造血细胞中的破坏的协议。Cas9-sgRNA ribonucleoproteins 是通过电穿孔与 sgRNAs 产生通过体外转录和商业 Cas9。在有限的时间和财务成本下实现了高编辑效率。
该方案的总体目标是使用核糖核蛋白方法通过 CRISPR/Cas9 和原代造血祖细胞实现快速有效的基因破坏。这种方法可以回答正常和恶性造血领域的关键问题,例如基因 X 丢失的分子和表型后果是什么,该技术的主要优点是极其简单、快速且具有成本效益。从实验构思到执行所需的估计时间少于一周。
尽管该方法已针对造血祖细胞进行了优化,但它可应用于其他细胞类型,例如原代 T 细胞、小鼠和人造血细胞系以及原代白血病样本。当我们意识到其他 CRISPR/Cas9 递送方法(包括质粒和病毒)对我们的细胞有毒或周转时间缓慢时,我们第一次有了这种方法的想法。为了设计感兴趣的单向导 RNA,首先导航到 CRISPRscan 网站。
根据目标细胞,点击鼠标或人类按钮,然后在 UCSC 搜索框中输入目标基因并单击开始。接下来,放大您想要定位的外显子。检查在"CRISPRscan predictions on Genes"标题下是否列出了任何单向导 RNA 靶序列。
接下来,单击标记为绿色矩形的目标单向导 RNA,并复制 Oligo 序列下显示的完整序列。然后将序列粘贴到文本文档中。接下来,将核苷酸 ATAGC 添加到序列的三个引物末端。
为全长序列下订单。现在,要合成单向导 RNA 的 DNA 模板,溶解并稀释单向导 RNA 正向和通用反向引物。然后将所有试剂添加到 PCR 管中以执行重叠 PCR。
构建 PCR 反应后,将试管放入热循环仪中并运行程序。程序结束后,使用 DNA 纯化柱纯化 PCR 产物。在 11.5 μL 洗脱缓冲液中稀释 DNA。
然后,在分光光度计上使用洗脱缓冲液作为空白。在分光光度计上测量样品 DNA 的浓度。首先,在 PCR 联管中混合洗脱的 DNA、脱氧核苷酸磷酸盐、反应缓冲液和 T7 RNA 聚合酶混合物。
然后将样品在 37 摄氏度下孵育 4 小时。接下来,使用 RNase 清洁剂从使用的手套上去除 RNase。然后,用无核酸酶的水将每个 RNA 样品的体积调节至 50 μL。
按照制造商的说明纯化 RNA。最后,在 50 μL 无核酸酶水中洗脱 RNA。首先,使用不含核酸酶的水将分光光度计空白,然后测量洗脱的 RNA 的浓度。
使用台盼蓝排除对细胞数进行计数。对于每个重复,每个重复收集 200, 000 个活细胞,然后添加磷酸盐缓冲盐水来洗涤细胞。然后以 300 倍 g 离心试管 7 分钟。
离心后,小心去除上清液。在离心过程中,将 1.5 μg Cas9 与 1 μg 单向导总 RNA 在 PCR 管中孵育 20 至 30 分钟。这是为了为每个重复制备 Cas9-sgRNA RNP 复合物。
计算出所需的重悬缓冲液 T 的体积后,溶解在重悬缓冲液 T 中获得的细胞沉淀,然后在含有 Cas9-sgRNA RNP 复合物的 PCR 管中加入 10 微升溶解的细胞悬液。接下来,打开电穿孔装置。将比色皿滑入比色皿支架。
然后加入 3 毫升缓冲液 E.在电穿孔装置上设置条件。要进行电穿孔,首先握住电穿孔移液器,然后伸出爪子并抓住移液器吸头内的圆盘,然后用力向下按压移液器以固定吸头。接下来,通过上下吹打 10 次来混合样品。
抽取 10 微升样品,确保没有气泡。接下来,将吸头直接插入电穿孔比色皿中的电解缓冲液中。然后点击 Start 开始 在屏幕上。
让完整的消息显示在屏幕上。然后从比色皿中取出移液管。接下来,将比色皿中的内容物分配到装有新 HSPC 培养基的孔中。
为了研究Cas9-sgRNA RNP电穿孔的功效,用靶向GFP或tdTomato的单向导RNase对从小鼠中分离的HSPCs进行电穿孔。这些 HSPCs 普遍表达 GFP 或 tdTomato。流式细胞术分析显示,在蛋白质水平上,HSPC 中 GFP 或 tdTomato 表达的损失约为 75% 和 74%。
然后,用来自电穿孔细胞 GFP 基因座的 PCR 扩增的 DNA 进行基于 T7 核酸内切酶 one 的测定。这是为了量化 GFP 的基因破坏效率。ImageJ 软件用于计算裂解条带强度与未裂解条带的强度之比,以计算裂解的百分比。
在 HL-60 AML 细胞系中测试了三种靶向人 CD45 的不同单向导 RNA 的效率。流式细胞术显示,与对照相比,单向导 RNA1 是最有效的一种,敲除效率为 98%。然后,使用单向导 RNA1 在原代人脐带血 CD34 阳性 HSPC 中也进行 CD45 敲除。
流式细胞术分析显示,与仅 Cas9 相比,近 80% 的细胞 CD45 缺失,CD34 表达没有改变。为了研究人CD45敲除HSPCs的植入,从CD34阳性眼眶后转染的NSG小鼠中收获骨髓和脾细胞进行分析,显示编辑细胞为HLA-ABC阳性和CD45阴性。一旦掌握,如果执行正确,该协议可以在三天内完成。
在尝试此程序时,请务必记住保持所有表面和试剂不含 RNase,使用多种技术验证有效的基因破坏,并使用适当的实验对照。看完这个视频,你应该对如何设计、合成和转染Cas9-sgRNA核糖核蛋白到造血祖细胞中,以获得快速高效的基因破坏有了很好的了解。
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