2024年7月5日
本研究介绍了一种独特的钝性分离方法,可保持华通胶(Wharton's jelly, WJ)的完整性,从而减少WJ的损伤,并获得数量更多、活力更高的间充质干细胞(MSCs)。与传统的锐性分离方法相比,该方法具有更高的细胞得率和增殖能力。
我们的研究利用人类干细胞培育出多种类器官,这些类器官能够模拟人类器官的功能。我们开发了独特的技术,用于实现中胚层和内胚层的共分化。
它们使这些类器官具备丰富的血管网络。这些类器官将促进器官发育、再生医学、疾病模型构建、药物筛选以及个性化医疗,例如类器官移植。我们的方案针对现有研究中的空白,优化了从脐带中完整分离华通胶的方法,同时保留其血管旁和次级耳样成分。
该方法旨在提高间充质干细胞的产量、存活率和增殖能力,为增加MSC的生产提供一种经济有效的方法。本方案的优势在于,与传统方法相比,能够利用更多的华通氏胶并收获更多具有更强增殖能力的MSC。首先,将所有无菌外科器械放置于工作台面上。
在生物安全柜中,使用75%乙醇对含有先前采集的人类脐带的试管表面进行消毒。将样本移入培养皿中,并用75%乙醇浸泡带结节的部分30秒。
然后,在新的培养皿中,用无菌 PBS 多次冲洗样本。使用手术剪和镊子剪除结节,再将两个结节之间的脐带横向切成短段。用 1 毫升移液器向静脉中灌注 PBS,直至从脐带另一端流出的液体完全透明。
将一段已切割的脐带转移至新的培养皿中。加入适量的磷酸盐缓冲液(PBS),以保持脐带在操作过程中的湿润。用镊子夹住脐带,并借助蚊式钳沿脐带长轴方向拉出动脉。
为将脐带水平固定,使较粗的一侧朝上,将镊子的一个刀片插入脐静脉中并牢固夹紧,确保镊子夹住较粗的一侧。使用手术刀,沿镊子另一侧刀片的边缘,从一端到另一端在羊膜上皮层做线性切口。从切口的角部开始,用有齿镊夹起羊膜上皮的一角,然后用角膜剪沿上皮内表面继续水平剪开一小段距离。
用钳子分离华通胶和羊膜上皮,并逐渐向脐带一端的整个圆周扩展。纵向剥离上皮层。将镊子的两个叶片插入静脉内。
取部分华通胶,将其翻转以暴露脐静脉的上皮组织,随后轻轻剥离静脉上皮。将收集的华通胶置于预先标记的90毫米培养皿中,用剪刀和镊子将其剪切成1至3毫米大小的组织块。
将培养皿倒置(盖子朝下),放入含5%二氧化碳的培养箱中,在37摄氏度下孵育30分钟。每三天更换一次人源间充质干细胞培养基。与传统方法相比,这种独特的钝性解剖法显著提高了华通胶的产量。
通过两种方法计数华通氏胶间充质干细胞的总数量进行进一步分析,结果显示随着传代次数的增加,细胞数量差距显著。在新方法中,间充质干细胞在培养两天后的增殖速率明显更高。
本研究介绍了一种独特的钝性分离技术,用于优化从脐带中完整分离华通胶(Wharton's jelly, WJ)。该方法可保持WJ的完整性,减少损伤,从而获得更高产量的有活力间充质干细胞(MSCs)。
高产率、低损伤的脐带来源间充质干细胞(MSCs)分离方法解决了再生医学和先进临床前模型中规模化细胞来源的关键瓶颈问题。该方案所获得的MSCs具有更高的存活率和增殖能力,直接影响下游疾病建模、类器官开发及转化研究的可靠性。标准化、可重复的MSC分离技术通过降低生物学变异并提高早期研发阶段的预测可信度,支持企业层面的研发组合决策。
该MSC分离方案整合了早期发现与临床前模型开发的交叉环节,支持从靶点验证到基于类器官筛选的各项工作流程。