2025年6月6日
本方案描述了一种独特的植入物相关感染实验模型,可在单只小鼠体内于相同条件下同时孵育两个植入物与细菌。该模型还可利用优化的比较分析方法,精确评估植入物表面的生物膜形成情况,展示了评价生物材料抗菌性能的先进实验技术。
我们的研究旨在开发针对植入物相关感染的创新治疗方法。为了评估具有潜在抗菌特性的新型生物材料,我们建立了一种更为精确的体内测试方法。以往的动物模型通常仅能在一个动物体内产生单一的植入物相关感染,这可能导致从多个动物获得的平均结果存在显著变异。
我们的小鼠模型可在单个动物体内对两种印记在相同感染条件下进行直接比较,从而对材料的抗菌活性提供宝贵的评估。我们的体内实验方法将加速潜在抗菌生物材料的研究,有助于未来开发治疗植入物相关感染的新疗法。本实验方法可在常规研究环境中利用标准设备和简单操作步骤进行重复,从而加深对抗菌作用机制的理解。
首先,将麻醉后的小鼠置于手术床上。用无菌空气填充一支10毫升注射器,并在出口处连接一支27号针头。然后,轻轻捏住并提起小鼠颈部基部,以在皮下组织与筋膜之间形成间隙。
将针头插入小鼠肩胛骨之间的中线位置,皮下注射三毫升无菌空气以形成气囊。然后将小鼠放回垫有加热垫的笼子中。每隔两天注射三毫升无菌空气,以维持气囊的膨胀状态并形成成熟的气囊。
动物麻醉后,皮下注射布比卡因。在囊袋顶部做一道3毫米长的正中纵向切口,通过切口将带有连接导线的18号针头插入囊袋内。使用25号脊髓针的内芯注射器推出导线。
将18号针头的尖端留在袋内,轻轻取出内筒,并使用注射器小心注入Xen36菌液。移除所有针头,用伤口夹闭合皮肤,并用外用皮肤粘合剂封合。最后,将小鼠放回配有加热垫的温控笼中进行监测。
结晶紫染色显示,两种导丝上均形成了一致的生物膜,且无明显差异。溶解结晶紫的吸光度测定结果显示,两种导丝之间的细菌载量无统计学显著差异。针对16S核糖体RNA和LuxA基因的菌落形成单位计数及定量PCR分析也显示,两种导丝之间的细菌载量无统计学显著差异。
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本研究提出了一种用于研究植入物相关感染的新型小鼠模型,可在相同条件下同时评估两种植入物。该方法通过精确的生物膜分析,增强了对生物材料抗菌性能的评价。
外科植入物上生物膜形成的可靠量化是临床前生物材料研究中的关键挑战&D,直接影响抗菌效果的预测置信度。该双植入物小鼠模型可在统一的感染条件下对候选材料进行可控且定量的比较,降低生物学变异性,并支持可靠的靶点验证。该方法通过提供可重复的定量数据,助力新型抗菌生物材料的机制性风险评估,从而加强早期研发阶段的项目组合决策。
这种双植入物小鼠模型通过实现对抗菌生物材料的早期定量评估,并支持优先筛选候选物质以进行后续开发,从而融入从发现到临床前研究的连续过程。