Name: 利用右心导管测量大鼠肺动脉压 (视频) | JoVE Journal
Uploaded: 2025-12-16T14:30:00.000+00:00
Duration: 7 min 21 s
Description: 学习利用右心导管术测量大鼠肺动脉压的优化方案，适用于缺氧和野百合碱诱导的肺动脉高压模型。该方法无需显微镜，可降低心脏穿孔风险，提高测量效率与准确性，为肺动脉高压研究提供可靠的技术支持。

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本工作得到中国国家自然科学基金（编号：81971784，81830062）的资助。

所有操作均按照陆军军医大学机构动物护理委员会的指南进行。所采用的操作程序均遵循机构指南。由于右心导管插入术具有侵入性，动物在数据采集后应立即实施安乐死。安乐死应根据机构的动物研究指南执行。本研究使用健康雄性Sprague-Dawley（SD）大鼠，特定病原体阴性（SPF）级，体重为300 ± 20 g。
1. 导管的准备
<ol>
	<li>选择一根外径为 1.6 mm、内径为 1.0 mm、长度为 25 cm 的静脉输液针（PVC 管）。剪去针尖部分。将直径小于 1.0 mm 的铜丝穿入管中。</li>
	<li>将尾端弯成直径为 7 mm 的圆环（图 1A）。实验者可使用适当尺寸的圆柱形物体（例如铅笔）辅助弯曲导管。将环形端浸入 100 °C 水中 10 分钟，然后取出。抽出铜丝。尾端形似猪尾，另一端可连接三通旋塞阀（图 1B）。</li>
</ol>
<img alt="用于临床用途的导管长度测量示意图，显示不同类型医用导管及标尺" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/69559/69559fig1.jpg" data-altupdatedat="1778558422000" data-alt="图1"> 
图1：导管的制备。 (A) 将铜丝穿入PVC管中，并将管端弯曲成直径为7 mm的圆环。 (B) 将圆环端浸入100 ℃水中10分钟后，取出铜丝。此时管子定型，形状类似于猪尾形。 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/69559/69559fig1large.jpg" target="_blank">请点击此处查看该图的放大版本。</a>
2. 动物准备
<ol>
	<li>温度控制：打开加热垫并将温度设置为 37 °C。在整个手术过程中保持温度为 37°C。</li>
	<li>通过腹腔注射对大鼠进行麻醉，每 100 g 体重注射 0.3 mL 的 2% 戊巴比妥钠。通过捏压足爪或尾部检查大鼠是否无反应，以确认麻醉效果。应避免因麻醉不足导致动物在手术中苏醒，以及因麻醉过量导致的死亡或其他不良反应。手术过程中需持续监测大鼠的心率和呼吸是否正常。</li>
	<li>将大鼠仰卧位放置在大鼠手术台的加热垫上，并使用橡胶带将其门齿和后肢固定在手术台上。</li>
</ol>
3. 手术操作步骤
<ol>
	<li>剃除右侧颈部区域的毛发，并用浸有异丙醇的棉签对该区域进行消毒。使用组织剪在颈部右侧皮肤上做一个2 cm的切口。使用弯头眼科镊钝性分离右侧颈外静脉。</li>
	<li>游离约1 cm长度的静脉。用5-0缝合线结扎静脉的远端，在近端打一个活结。用止血钳夹住远端的缝合线，并轻轻向头部方向牵拉，以适度收紧血管。</li>
	<li>进行静脉切开时，将预先准备好的7号针头向针尖相反方向弯曲45°（图2A），然后朝近端方向穿刺颈外静脉（图2B）。 
	注意：针头属于锐器，使用时应避免直接接触其尖端。</li>
</ol>
<img alt="手术过程示意图，显示在医学实验中以倾斜角度插入针头并进行组织操作。" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/69559/69559fig2.jpg" data-altupdatedat="1778558422000" data-alt="图 2"> 
图 2：静脉切开术工具示意图。 (A) 将7号针头朝与针尖相反的方向弯曲45°。 (B) 向近端方向穿刺颈外静脉。由于针头已预先弯曲，实验操作将更为方便。<a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/69559/69559fig2large.jpg" target="_blank">请点击此处查看此图的放大版本。</a>
<ol start="4">
	<li>用肝素钠溶液填充连接三通阀的心脏导管，然后关闭三通阀。 
	注意：肝素作为一种抗凝剂，可在插管过程中防止血栓形成。通过将肝素钠与生理盐水混合，配制500 mL浓度为1000 IU/mL的肝素钠溶液。</li>
	<li>将自制7号针的弯曲针尖插入静脉，抬起针头，沿针道将弯头眼科镊插入静脉以扩张静脉（图3A）。撤出针头，通过镊子撑开的间隙将导管插入静脉（图3B）。</li>
	<li>撤出弯头眼科镊。解开活结，向前推送导管，然后打一个新的活结以固定导管，防止其脱落（图3C）。活结不宜扎得过紧，应确保无血液渗漏，同时导管仍可自由推进。</li>
</ol>
<img alt="大鼠伤口愈合实验的手术操作，包括缝合和导管置入。" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/69559/69559fig3.jpg" data-altupdatedat="1778558422000" data-alt="图 3"> 
图 3：导管置入。 (A) 将弯头眼科镊插入静脉以撑开血管。 (B) 通过镊子撑开的间隙将导管插入静脉。 (C) 打一个新的活结以固定导管，防止其脱落。确保无血液渗漏，同时导管可自由推进。 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/69559/69559fig3large.jpg" target="_blank">请点击此处查看该图的放大版本。</a>
<ol start="7">
	<li>打开多导生理记录仪，连接压力传感器，并用生理盐水排空压力传感器，确保其中无气泡。</li>
	<li>启动记录软件，通过暴露于大气中进行调零，然后使用汞柱血压计进行两点校准。在软件中将滤波类型设置为低通，截止频率设置为 40 Hz，采样率设置为 1000 SPS。</li>
	<li>波形测量与位置判断：将连接导管的三通阀与压力传感器相连，确保三通阀内无气泡。然后打开并旋转三通阀开关，使导管与压力传感器相通，即可观察到静脉波形（图 4A）。</li>
	<li>边旋转导管边向前推进。若遇到阻力，切勿强行推进。抬起垫片（由手术刀片制成），将导管稍许撤出，再旋转并重新推进，直至感到阻力突然消失，提示已进入较大腔隙，此时出现心室波形（图 4B）。</li>
	<li>再次向前推进至肺动脉。推进过程中可感受到导管尖端滑过心脏壁的触感。肺动脉波形将随之出现（图 4C）。</li>
	<li>若出现 图 4D 所示的心室波形，可能意味着导管在此位置难以进入肺动脉。此时应稍许撤出导管，旋转后再次前推，直至出现 图 4B 所示的心室波形，随后即可顺利进入肺动脉。同时，初学者也可参考 Sarkar 等人的研究，以更好理解各阶段的波形特征9。</li>
</ol>
<img alt="血压波动图；各图板中的时间序列数据；心血管动力学分析。" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/69559/69559fig4.jpg" data-altupdatedat="1778558422000" data-alt="图 4"> 
图 4：压力波形。 (A) 静脉波形。 (B) 心室波形。 (C) 肺动脉波形。 (D) 异常心室波形。 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/69559/69559fig4large.jpg" target="_blank">请点击此处查看此图的放大版本。</a>
4. 数据采集
<ol>
	<li>当确认肺动脉压力的特征性波形且波形稳定持续1分钟时，轻柔地放置导管并保持稳定。此时测量肺动脉压（PAP）。</li>
	<li>记录至少连续10个心动周期的稳定波形。若实验需要长期连续测量PAP，应用纱布覆盖暴露的皮肤，以防止因长时间暴露于环境中导致皮肤干燥或不良反应。</li>
	<li>右心房、右心室和肺动脉的压力应分别设定为2–6 mmHg、0–25 mmHg和10–25 mmHg，各具其特征性波峰7,8,9,10,11,12,13。当右心室压力波形的收缩期峰值出现切迹时，导管更易进入肺动脉。</li>
	<li>数据采集完成后，根据机构的动物实验指南对动物实施安乐死。通过腹腔注射补充麻醉剂，最终以每100 g体重10–20 mg的戊巴比妥钠剂量对大鼠实施安乐死。所有数据采集结束后，清洗导管。 
	注意：实验过程中产生的所有废弃物应妥善处理。使用过的针头及其他锐器应立即放入专用的锐器废弃物容器中。生物组织（包括动物尸体）应进行无害化处理。使用过的化学试剂应倒入废液桶，并经集中净化后排放。</li>
</ol>

<ol><li>Krishnan, A., Markham, R., Savage, M., Wong, Y. W., Walters, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Right+Heart+Catheterisation%3A+How+To+Do+It%5BTitle%5D)+AND+%22Heart+Lung+Circ%22%5BJournal%5D)">Right Heart Catheterisation: How To Do It.</a> Heart Lung Circ. 28 (4), e71-e78 (2019).</li>
<li>Kosova, E., Ricciardi, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cardiac+Catheterization%5BTitle%5D)+AND+%22JAMA%22%5BJournal%5D)">Cardiac Catheterization.</a> JAMA. 317 (22), 2344(2017).</li>
<li>Sun, P., Liu, W. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Method+for+measuring+the+pulmonary+artery+pressure+with+a+right+cardiac+catheter+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Acad+Med+Sinicae%22%5BJournal%5D)">Method for measuring the pulmonary artery pressure with a right cardiac catheter in rats.</a> Acta Acad Med Sinicae. 6 (6), 465-467 (1984).</li>
<li>Zou, L., Chen, M., Huang, X., Wang, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+meliorative+technique+to+measure+pulmonary+artery+pressure+by+right+heart+catheterization+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Chinese+J+Pathophysiol%22%5BJournal%5D)">A meliorative technique to measure pulmonary artery pressure by right heart catheterization in rats.</a> Chinese J Pathophysiol. 30 (4), 757-762 (2014).</li>
<li>Yan, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optimization+of+the+Method+for+Measuring+Rat+Pulmonary+Artery+Pressure+via+Right+Heart+Catheterization%5BTitle%5D)+AND+%22Chinese+J+Integrative+Med+Cardio-Cerebrovasc+Dis%22%5BJournal%5D)">Optimization of the Method for Measuring Rat Pulmonary Artery Pressure via Right Heart Catheterization.</a> Chinese J Integrative Med Cardio-Cerebrovasc Dis. 20 (11), 1986-1988 (2022).</li>
<li>Tontodonati, M., Ridley, D., Remie, R., Clements, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Improved+method+for+the+catheterization+of+the+right+ventricle+in+a+rat+model+of+pulmonary+artery+hypertension%5BTitle%5D)+AND+%22Interact+Cardiovasc+Thorac+Surg%22%5BJournal%5D)">Improved method for the catheterization of the right ventricle in a rat model of pulmonary artery hypertension.</a> Interact Cardiovasc Thorac Surg. 30 (4), 535-537 (2020).</li>
<li>Yuan, Z., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Megakaryocytic+leukemia+1+%28MKL1%29+regulates+hypoxia+induced+pulmonary+hypertension+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Megakaryocytic leukemia 1 (MKL1) regulates hypoxia induced pulmonary hypertension in rats.</a> PLoS One. 9 (3), e83895(2014).</li>
<li>Yang, Y. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nogo-B+Receptor+Directs+Mitochondria-Associated+Membranes+to+Regulate+Vascular+Smooth+Muscle+Cell+Proliferation%5BTitle%5D)+AND+%22Int+J+Mol+Sci%22%5BJournal%5D)">Nogo-B Receptor Directs Mitochondria-Associated Membranes to Regulate Vascular Smooth Muscle Cell Proliferation.</a> Int J Mol Sci. 20 (9), 2319(2019).</li>
<li>Sarkar, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Catheterization+of+Pulmonary+and+Carotid+Arteries+for+Concurrent+Measurement+of+Mean+Pulmonary+and+Systemic+Arterial+Pressure+in+Rat+Models+of+Pulmonary+Arterial+Hypertension%5BTitle%5D)+AND+%22Bio+Protoc%22%5BJournal%5D)">Catheterization of Pulmonary and Carotid Arteries for Concurrent Measurement of Mean Pulmonary and Systemic Arterial Pressure in Rat Models of Pulmonary Arterial Hypertension.</a> Bio Protoc. 13 (16), e4737(2023).</li>
<li>Neelakantan, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dissecting+contributions+of+pulmonary+arterial+remodeling+to+right+ventricular+afterload+in+pulmonary+hypertension%5BTitle%5D)+AND+%22Bioeng+Transl+Med%22%5BJournal%5D)">Dissecting contributions of pulmonary arterial remodeling to right ventricular afterload in pulmonary hypertension.</a> Bioeng Transl Med. 10 (4), e70035(2025).</li>
<li>Neelakantan, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Right+Ventricular+Stiffening+and+Anisotropy+Alterations+in+Pulmonary+Hypertension%3A+Mechanisms+and+Relations+to+Right+Heart+Failure%5BTitle%5D)+AND+%22J+Am+Heart+Assoc%22%5BJournal%5D)">Right Ventricular Stiffening and Anisotropy Alterations in Pulmonary Hypertension: Mechanisms and Relations to Right Heart Failure.</a> J Am Heart Assoc. 14 (5), e037126(2025).</li>
<li>Mendiola, E. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Right+Ventricular+Architectural+Remodeling+and+Functional+Adaptation+in+Pulmonary+Hypertension%5BTitle%5D)+AND+%22Circ+Heart+Fail%22%5BJournal%5D)">Right Ventricular Architectural Remodeling and Functional Adaptation in Pulmonary Hypertension.</a> Circ Heart Fail. 16 (2), e009768(2023).</li>
<li>Swan, H. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Catheterization+of+the+heart+in+man+with+use+of+a+flow-directed+balloon-tipped+catheter%5BTitle%5D)+AND+%22New+Engl+J+Med%22%5BJournal%5D)">Catheterization of the heart in man with use of a flow-directed balloon-tipped catheter.</a> New Engl J Med. 283 (9), 447-451 (1970).</li>
<li>Ruopp, N. F., Cockrill, B. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Diagnosis+and+Treatment+of+Pulmonary+Arterial+Hypertension%3A+A+Review%5BTitle%5D)+AND+%22JAMA%22%5BJournal%5D)">Diagnosis and Treatment of Pulmonary Arterial Hypertension: A Review.</a> JAMA. 327 (14), 1379-1391 (2022).</li>
<li>Ferrero, P., Krishnathasan, K., Constantine, A., Chessa, M., Dimopoulos, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pulmonary+arterial+hypertension+in+congenital+heart+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Heart+%28British+Cardiac+Society%29%22%5BJournal%5D)">Pulmonary arterial hypertension in congenital heart disease.</a> Heart (British Cardiac Society). 110 (18), 1145-1152 (2024).</li>
<li>Deten, A., Millar, H., Zimmer, H. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Catheterization+of+pulmonary+artery+in+rats+with+an+ultraminiature+catheter+pressure+transducer%5BTitle%5D)+AND+%22Heart+Circ+Physiol%22%5BJournal%5D)">Catheterization of pulmonary artery in rats with an ultraminiature catheter pressure transducer.</a> Heart Circ Physiol. 285 (5), H2212-H2217 (2003).</li>
</ol>

作者声明本文发表不存在利益冲突。

1970年，Swan和Ganz报道了使用漂浮导管测量肺动脉压的方法13，确立了有创性右心导管检查作为诊断肺动脉高压的金标准14,15。然而，在涉及大鼠等小动物的研究中，导管的尺寸限制了经胸导管插入术的可行性。1984年，Bo等人3描述了一种使用自制右心导管（外径为0.9 mm的PE管）测量大鼠肺动脉压的方法。近年来，多项研究报道了右心导管制备和插入技术的改进与优化4,5,6，但在实际应用中仍存在若干挑战。
本研究中，我们通过详细描述导管材料的选择、制备、颈外静脉的分离、导管插入以及导管位置的确定，分享了在此领域的经验与技术。所检测到的肺动脉压力波形与文献报道的结果相似<sup class...

目前，通过右心导管术测量肺动脉压是诊断肺动脉高压的金标准1。在人类和大型动物中，漂浮导管主要用于右心导管术2。然而，在小型动物（如大鼠）中，由于缺乏合适的漂浮导管，该技术的应用受到限制，这给利用大鼠复制肺动脉高压模型的科学研究带来了不便3。用于建立肺动脉高压模型的大鼠通常体重范围为300–400 g。较小的体型意味着其血管更细、心壁更薄，这使得导管插入操作更加困难。尽管已有文献报道使用外径0.9 mm、内径0.5 mm的聚乙烯（PE）管自制右心导管及其插管技术3,4,5，并成功监测到肺动脉压力波形，但在实际操作中仍存在诸多问题：导管容易误入下腔静脉，或长时间滞留在右心室而无法进入肺动脉。导管插入时间过长还可能导致大鼠心率下降及压力测量波形失真。甚至可能因操作不当导致导管刺穿右心房，造成实验失败4,5,6。分析其原因，可能是导管的韧性和硬度影响了导管尖端的弯曲度，从而导致难以顺利进入肺动脉。
为了解决这一问题，本研究选用了一种添加增塑剂的聚氯乙烯管（外径1.6 mm，内径1.0 mm，长度25 cm，适用于体重超过150 g大鼠的颈外静脉），该材料具有更高的弹性和韧性，作为导管制备的材料。我们提出了一套系统化的操作方案，包括导管尖端猪尾状结构的制作、颈外静脉的解剖、导管的插入以及导管位置的确定。通过对先前方法的改进，我们能够更顺利地将导管送入肺动脉，并提高手术成功率7,8。因此，本方法可为小型动物肺动脉高压模型的研究提供更为可靠的技术支持。

<table><tbody><tr><td>5-0 缝合线</td><td>Zhongke Huida</td><td>23030306</td><td></td></tr><tr><td>75% 酒精消毒液</td><td>山东卓健医疗科技有限公司</td><td>Q/371402SDZJ005</td><td></td></tr><tr><td>烧杯</td><td>成都玻璃仪器厂</td><td>GG-17</td><td>250mL</td></tr><tr><td>铜丝</td><td>ThermoFisher</td><td>000098.G2</td><td></td></tr><tr><td>加热垫</td><td> Tigergene Technology Inc</td><td>TG-TP-BS</td><td>20&amp;times;35cm</td></tr><tr><td>止血钳</td><td>Beyotime</td><td>FS245</td><td></td></tr><tr><td>静脉输液针</td><td>汉江县长城医疗器械厂</td><td>GB 18671-2002</td><td></td></tr><tr><td>LabChart Pro 升级版 v7 for Windows</td><td>AD Instruments</td><td>GR85-XNCB-MEDA</td><td></td></tr><tr><td>医用棉签</td><td>华泰医疗器械有限公司</td><td>YY/T 10330-2015</td><td></td></tr><tr><td>多通道生理记录系统&lt;br/&gt;（PowerLab 4/35，AD Instruments）</td><td>AD Instruments</td><td>PowerLab 4/35</td><td></td></tr><tr><td>针头</td><td>上海 kindly 企业发展集团有限公司</td><td>0.7&amp;times;32 TW LB</td><td></td></tr><tr><td>生理盐水</td><td>Servicebio</td><td>G4702-500ML</td><td>溶剂？清洗液</td></tr><tr><td>眼科弯钳</td><td>Beyotime</td><td>FS229</td><td></td></tr><tr><td>压力传感器</td><td>AD Instruments</td><td>SP 844</td><td></td></tr><tr><td>大鼠手术台</td><td>玉研仪器</td><td>30351</td><td></td></tr><tr><td>肝素钠</td><td>biosharp</td><td>BS145</td><td>抗凝作用</td></tr><tr><td>戊巴比妥钠</td><td>sigma-aldrich</td><td>P3761</td><td>用于大鼠麻醉</td></tr><tr><td>无菌注射器</td><td>上海 kindly 企业发展集团有限公司</td><td>5ml</td><td></td></tr><tr><td>手术刀片</td><td>Beyotime</td><td>FS205</td><td>用于制作垫片</td></tr><tr><td>三通阀</td><td>B.Braun</td><td>409511CN</td><td></td></tr><tr><td>组织剪</td><td>Beyotime</td><td>FS209</td><td></td></tr></tbody></table>

使用右心导管术测量大鼠肺动脉压力

Measurement of Pulmonary Artery Pressure in Rats Using Right Heart Catheterization

通过右心导管术测量的肺动脉压（PAP）被认为是诊断肺动脉高压的金标准。大鼠已被广泛用于建立肺动脉高压模型。然而，初学者在对肺动脉高压大鼠模型进行右心导管术以测量PAP时，导管常会意外进入下腔静脉，或滞留在右心室而未能到达肺动脉，导致导管操作时间延长，引起大鼠心率下降，并产生失真的压力读数。此外，还存在穿破右心房的风险，导致实验失败。本研究旨在通过视频演示的方式，分享本实验室在利用右心导管术测量PAP方面的经验。我们详细列举了右心导管术所涉及的手术步骤及所需手术器械。我们根据导管材料的特性改进了导管的选择，并描述了导管的制备方法。同时，我们还阐述了将导管插入肺动脉的过程以及判断导管位置的方法。我们相信，该实验方案将有助于初学者准确测量肺动脉压。

我们已发表使用该方法测得的慢性缺氧性肺动脉高压大鼠及平原地区正常对照大鼠的平均肺动脉压数据7,8。结果与文献报道的数据基本一致9,10,11,12。采用本方法进行实验，成功率可达95%。
本研究通过高原环境模拟舱（将大鼠置于模拟海拔5800米高原环境的模拟舱中28天）和化学方法（每100 g体重皮下注射1 mL 60%野百合碱（MCT）溶液，连续28天）建立了两种缺氧性肺动脉高压模型。采用该技术测得的右心室收缩压（RVSP）和平均肺动脉压（mPAP）显著高于对照组（表...

本方案详细介绍了使用右心导管术检测大鼠肺动脉压力的操作经验，有助于更高效地获得准确数据，并提高实验成功率。该方法还可提升不同实验室间实验的可重复性。

通过右心导管术测量的肺动脉压（PAP）被认为是诊断肺动脉高压的金标准。大鼠具有……

本实验室已在多个方面优化了传统的右心导管术操作流程，以提高实验效率和成功率。其难点在于，初学者难以掌握通过右心导管术测量小型动物肺动脉压的技术。首先，使用剪刀剪去一套静脉输液装置的针头尖端，该装置配备一段聚氯乙烯（PVC）导管，外径为1.6毫米，内径为1毫米，长度为25厘米。将直径小于1毫米的铜丝穿入聚氯乙烯管中。将管子尾端围绕圆柱形物体（如铅笔）缠绕，形成直径为7毫米的圆环，并将圆环端浸入加热至100°C的水中，持续10分钟。加热后，将管子从水中取出。然后从导管中抽出铜丝。确保尾端保持类似辫状的弯曲形状，并确认另一端可连接至三通旋塞阀。用剃毛刀剃除麻醉大鼠右侧颈部区域的毛发，暴露皮肤表面，并使用浸有异丙醇的棉签对暴露区域进行消毒。然后使用组织剪在颈部右侧皮肤上做一个两厘米的切口。用弯头眼科镊进行钝性分离，暴露右侧颈外静脉。仔细游离约一厘米已暴露的颈外静脉，并用5-0缝合线结扎静脉的远端。在静脉近端打一个活结。使用止血钳夹住缝合线的远端，并轻轻向头部方向牵拉，以适度收紧血管。现在将准备好的7号针头在与针尖相反的方向弯曲成45度角。然后用肝素钠溶液填充与三通旋塞相连的 cardiac catheter。填充后关闭三通旋塞，以防止反流。将已准备好的7号针的弯曲针尖插入外颈静脉。轻轻向上抬起针头，沿针道插入弯眼科镊进入静脉以撑开静脉。小心地将针头从静脉中撤出，通过镊子形成的间隙将导管插入静脉。随后，小心地将弯眼科镊从静脉中撤出，并解开先前在静脉近端结好的滑结。将导管进一步推入静脉，然后在静脉周围打一个新的滑结以固定导管。确保结扎松紧适度，无血液渗漏，同时允许导管顺畅移动。打开多导生理记录仪设备，并将压力传感器连接至多导生理记录仪。用生理盐水冲洗压力传感器，以排除任何气泡。然后，在连接的计算机上打开记录软件。通过将压力传感器暴露于大气压下进行调零，并使用汞柱血压计进行两点校准。在软件中，将滤波器类型设置为低通，截止频率设置为 40 赫兹，采样率设置为每秒 1000 个样本。将连接至导管的三通旋塞阀连接到压力传感器。确保三通旋塞中无气泡。打开三通旋塞的开关并旋转，使导管与压力传感器相通，并观察静脉波形。在缓慢向前推进导管的同时旋转导管。如果遇到阻力，应停止推进，抬起用手术刀制作的垫片，稍微回撤导管，然后旋转并再次向前推进，直至感觉到阻力突然消失，提示已进入较大的腔隙，此时出现心室波形。继续向前推进导管以到达肺动脉。在导管前进过程中，注意体会导管尖端沿心脏壁滑行的感觉。观察屏幕以识别肺动脉波形的出现。如果出现异常的心室波形，可能提示导管在此位置难以进入肺动脉。此时应将导管稍加回撤，旋转后再次推进，直至出现正常心室波形，随后导管应可顺利进入肺动脉。建立了两种缺氧性肺动脉高压模型。一种通过高原环境模拟舱实现，模拟海拔5,800米的环境；另一种通过颈部位注射1毫升60%野百合碱，持续28天。在两种模型中，均采用该方法测量了右心室收缩压和平均肺动脉压，其数值均显著高于对照组。本方案无需使用显微镜，可优化穿刺心壁的操作流程并降低相关风险。该技术有助于我们更高效、更准确地测量小型动物的肺动脉压力。本方案为肺动脉高压模型相关研究的可重复性提供了支持和框架。

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利用右心导管测量大鼠肺动脉压

本文介绍了一种特异性强且快速的实验方案，可同时研究右心功能、肺部炎症及免疫反应，可作为学习工具。视频和图示以系统化的团队协作方式描述了生理学检测和显微解剖技术，该方法可灵活适用于从小规模到大规模的各种研究。...

小鼠右心室收缩压测量联合肺组织与免疫组织样本采集

右心室（RV）功能障碍在心血管疾病的发病机制中至关重要，但目前可用于评估右心室功能的方法十分有限。近年来超声成像技术的进步为长期纵向研究右心室提供了无创且准确的选择。本文中，我们详细描述了一种利用右心室压力超负荷小鼠模型进行的逐步超声心动图检测方法。...

经胸超声心动图评估肺动脉缩窄小鼠模型中右心室结构与功能

通过逐步阻塞肺动脉，在仔猪中诱导出慢性血栓栓塞性肺动脉高压（CTEPH）和右心室（RV）功能障碍。其表现与CTEPH患者中观察到的情况极为相似。该动物模型对于开展CTEPH及右心室衰竭的病理生理学和治疗研究将是一个非常有用的工具。...

慢性血栓栓塞性肺动脉高压及仔猪右心室功能评估

肺动脉高压（PAH）是一种累及肺小动脉的疾病，可导致肺小动脉闭塞并引发右心室衰竭。啮齿类动物PAH模型对于理解PAH的病理生理机制至关重要。本文展示了在小鼠和大鼠中通过右心导管术和超声心动图进行血流动力学表征的方法。...

肺动脉高压啮齿类动物模型的血流动力学表征

本方案描述了一种在大鼠中建立血流诱导肺动脉高压（PAH）模型的手术方法，以及分析该模型主要血流动力学和组织学终点的实验步骤。...

分流手术、右心导管检查及血管形态测量在血流诱导型肺动脉高压大鼠模型中的应用

本文介绍了一种通过开胸手术方法在小鼠中进行右心室和肺动脉有创血流动力学评估的实验方案。...

小鼠右心室系统侵入性血流动力学评估及缺氧诱导的肺动脉高压

本方案描述了在肺动脉高压大鼠模型中，对右心室形态和功能进行超声心动图表征的方法。...

肺动脉高压大鼠模型中右心室功能的全面超声心动图评估

本方案提供了在小鼠中进行多次静脉推注给药及有创血流动力学监测的逐步操作流程。研究人员可利用本方案开展未来针对肺动脉高压的治疗性化合物筛选。...

低氧诱导小鼠肺动脉高压模型中的多次静脉推注给药与侵入性血流动力学评估

我们描述了一种通过肺动脉干缩窄诱导右心室压力超负荷的小鼠模型。本文包含了气管插管、手术操作以及通过超声心动图进行表型分析的详细实验方案。气管插管和手术过程中使用了自制的器械，可实现模型的快速建立且成本低廉。...

通过肺动脉干缩窄建立压力超负荷诱导的小鼠右心室肥厚与衰竭模型

本文介绍了通过向气道注射博来霉素建立与肺纤维化相关的肺动脉高压（PF-PH）大鼠模型的方法。同时提供了对该动物模型进行验证的逐步操作流程。...

建立并验证与肺纤维化相关的肺动脉高压大鼠模型

详细介绍右心室功能评估方法将提升肺动脉高压研究的质量和可靠性，为未来的研究提供坚实的框架，并增强不同实验室之间的可重复性。...

肺动脉高压实验模型中右心室功能的评估

学习利用右心导管术测量大鼠肺动脉压的优化方案，适用于缺氧和野百合碱诱导的肺动脉高压模型。该方法无需显微镜，可降低心脏穿孔风险，提高测量效率与准确性，为肺动脉高压研究提供可靠的技术支持。

使用右心导管术测量大鼠肺动脉压力

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