Name: 使用CyDye DIGE Fluor公司最小染料的细胞表面蛋白的选择性标签 (视频) | JoVE Journal
Uploaded: 2008-11-26T00:00:00.000+00:00
Duration: 14 min 43 s
Description: 学习使用CyDye DIGE荧光最小染料对细胞表面蛋白进行选择性标记的方法。该技术结合二维电泳和Ettan™ DIGE技术，无需分级分离即可富集低丰度膜蛋白，有效检测差异表达蛋白并研究细胞通讯机制。

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感谢奥地利维也纳大学临床病理学研究所的 Dontscho Kerjaschki 教授、Corina Mayrhofer 和 Sigurd Krieger 与我们的合作。

细胞培养
<ol>
<li>使用含10%胎牛血清、50 U/ml青霉素及GlutaMAX I的F-12 Ham培养基，按照标准细胞培养操作规程培养中国仓鼠卵巢细胞（CHO-K1） 50 &micro;g/ml 硫酸链霉素（Invitrogen）</li>
<li>将培养基更换为无血清培养基。在不同时间点使用 CyDye DIGE Fluor Cy3 或 Cy5 最小荧光染料对细胞表面蛋白进行标记（参见第 细胞表面标记，如下所示。</li>
<li>将每个时间点的细胞取等量混合，并用 CyDye DIGE Fluor Cy2 标记。使用&nbsp;将这些作为每块二维凝胶的内标。</li>
<li>大部分实验可使用CHO-K1细胞进行，但也可使用小鼠胚胎成纤维细胞（3T3 L1）和小鼠腹水淋巴瘤淋巴母细胞（EL4）（数据未显示）。</li>
<li>将后两种细胞类型在含 GlutaMAX II 的 DMEM 培养基中培养，其余条件相同&nbsp;CHO-K1 细胞所用的相同条件。</li>
</ol>
细胞表面标记
<ol>
<li>小心地非酶法解离贴壁细胞，计数后分装为每份5–10 × 10⁶个细胞。对于悬浮生长的细胞，省略解离步骤。</li>
<li>将细胞悬液在约 800 × g 离心 5 分钟。弃去上清液。&nbsp;含有培养基的上清液。</li>
<li>将沉淀物用1 ml冰浴的Hank’s平衡盐溶液（HBSS）pH 8.5重悬，进行洗涤。&nbsp;800 × g 离心 4&deg;C 2 分钟。</li>
<li>移除&nbsp;上清液，并将细胞沉淀重悬于 200 &micro;l 冰冻标记缓冲液（HBSS，pH 8.5，1 M 尿素）</li>
<li>在冰上避光条件下，用 600 pmol CyDye DIGE Fluor 最小染料标记完整细胞 20 分钟。</li>
<li>通过加入终止反应 20 &micro;l 10 mM 赖氨酸。孵育 10 分钟。</li>
<li>将表面标记的细胞重悬于溶液中，洗涤两次 500 &micro;l HBSS pH 7.4，&nbsp;随后在800 × g条件下离心 4&deg;C 2分钟。</li>
</ol>
细胞裂解与组分分离
<ol>
<li>裂解表面标记的细胞 150 &mu;l 冷裂解缓冲液（7 M 尿素，2 M 硫脲，4% CHAPS，30 mM Tris，5 mM 醋酸镁，pH 8.5）。置于冰上至少1 h，期间偶尔涡旋混匀。</li>
<li>在 10 000 × g 条件下离心裂解液 4&deg;C 5分钟。转移&nbsp;将上清液转移至新管中。此样品为未分级样品，含有全部细胞蛋白。</li>
<li>同时，洗涤&nbsp;细胞沉淀物按上述方法处理后，在进行二维凝胶电泳前，使用膜蛋白分离试剂盒（Pierce）分离为膜组分和胞质组分。膜组分包含细胞内膜及细胞表面膜蛋白。</li>
<li>作为对照，遵循标准的 Ettan DIGE 操作流程 3，裂解、标记，最后分离细胞。使用2-D Quant试剂盒（GE Healthcare）测定样品中的蛋白浓度。</li>
</ol>
二维电泳
<ol>
<li>使用 Immobiline DryStrip Reswelling 托盘（24 cm），在 450 µl 去垢再水化溶液（0.5% IPG 缓冲液）中，于 pH 3–11NL（24 cm）的 Immobiline DryStrip 胶条上进行过夜再水化。</li>
<li>通过多通道装置的阳极杯上样方式，将 CyDye 标记的样品（相当于 50 µg 总蛋白）加样至 Immobiline DryStrip 胶条上，并按照说明书使用 Ettan IPGphor II 等电聚焦系统进行等电聚焦（IEF）。</li>
<li>IEF 完成后，将胶条分两步平衡，并置于大型（26 x 20 cm）12.5% 聚丙烯酰胺凝胶（SDS-PAGE）上方，用含溴酚蓝的电泳缓冲液配制的 0.5% 琼脂糖覆盖，然后使用 Ettan DALTtwelve 大型垂直电泳系统进行二维电泳：先以每胶 5 W 电泳 30 分钟，随后调至每胶 15 W，直至染料前沿迁移至凝胶底部。</li>
</ol>
成像与数据分析
<ol>
<li>完成二维电泳后，使用 Typhoon 9410 多功能成像仪扫描凝胶中的 Cy2、Cy3 或 Cy5 荧光信号。</li>
<li>利用 DeCyder 2-D 差异分析软件4，比较膜组分、胞质组分及未分馏样品的蛋白点图谱&nbsp;。</li>
</ol>
染色后处理
<ol>
<li>成像后，按照标准程序对凝胶进行银染5。</li>
</ol>
蛋白质鉴定
<ol>
<li>按照前述方法培养、收获、洗涤并裂解制备量的细胞（约 1 mg 总蛋白，来自 10 × 10⁶ 个 CHO 细胞）。使用&nbsp;一个 Cy5 标记的细胞表面蛋白样品（见上文）作为内标，与未标记的制备量蛋白样品共同上样。</li>
<li>按照前述方法进行二维电泳，但此次通过阳极杯上样法共同上样 600 µg 未标记细胞裂解液和 50 µg 标记了细胞表面蛋白的内标。使用参考标记物以确保正确挑选蛋白点，并根据推荐方法 3 在灌胶前置于玻璃板之间。</li>
<li>在 Cy5 通道扫描凝胶以获得细胞表面蛋白的 Cy5 蛋白点图谱，随后使用 Deep Purple 全蛋白染色剂对凝胶进行总蛋白染色 3。</li>
<li>使用 DeCyder 2-D 软件将两个蛋白点图谱进行匹配，并为所有对应于 Cy5 标记细胞表面蛋白的蛋白点生成挑点列表。利用 Ettan 蛋白点处理系统挑取细胞表面蛋白，从凝胶胶粒中提取蛋白，并使用 Ettan 酶解仪进行胰蛋白酶消化，最后通过 MALDI-TOF 质谱技术进行鉴定。</li>
</ol>

表1. 使用按照图1中细胞表面蛋白标记方案标记的无血清培养细胞样品进行Ettan DIGE实验。

<table style="width: 517px; height: 139px;" border="1" cellspacing="0" cellpadding="0">
<tbody>
<tr>
<td style="text-align:center; font-weight:bold">样品</td>
<td style="text-align:center; font-weight:bold">血清耗尽时间</td>
<td style="text-align:center; font-weight:bold">使用 CyDye 标记</td>
<td style="text-align:center; font-weight:bold">胶&nbsp;编号</td>
</tr>
<tr>
<td style="text-align:center;">1</td>
<td style="text-align:center;">-</td>
<td style="text-align:center;">Cy 3, Cy 2</td>
<td style="text-align:center;">1</td>
</tr>
<tr>
<td style="text-align:center;">2</td>
<td style="text-align:center;">30 分钟</td>
<td style="text-align:center;">Cy 5, Cy 2</td>
<td style="text-align:center;">1</td>
</tr>
<tr>
<td style="text-align:center;">3</td>
<td style="text-align:center;">2 小时</td>
<td style="text-align:center;">Cy 3, Cy 2</td>
<td style="text-align:center;">2</td>
</tr>
<tr>
<td style="text-align:center;">4</td>
<td style="text-align:center;">4 小时</td>
<td style="text-align:center;">Cy 5, Cy 2</td>
<td style="text-align:center;">2</td>
</tr>
<tr>
<td style="text-align:center;">5</td>
<td style="text-align:center;">16 小时</td>
<td style="text-align:center;">Cy 5, Cy 2</td>
<td style="text-align:center;">3</td>
</tr>
</tbody>
</table>

&nbsp;

<ol><li>Jang, J. H., Hanash, S. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Profiling+of+the+cell+surface+proteome%5BTitle%5D)+AND+%22Proteomics%22%5BJournal%5D)">Profiling of the cell surface proteome.</a> Proteomics. 3, 1947-1954 (2003).</li>
<li>Shin, B. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Global+profiling+of+the+cell+surface+proteome+of+cancer+cells+uncovers+an+abundance+of+proteins+with+chaperone+function%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biol+Chem%22%5BJournal%5D)">Global profiling of the cell surface proteome of cancer cells uncovers an abundance of proteins with chaperone function.</a> J Biol Chem. 9, 7607-7616 (2003).</li>
<li><a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ettan+DIGE+System+User+Manual%5BTitle%5D)+AND+%22GE+Healthcare+user+manual+18-1164-40%22%5BJournal%5D)">Ettan DIGE System User Manual.</a> GE Healthcare user manual 18-1164-40. , (2006).</li>
<li><a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((DeCyder+2-D+Differential+Analysis+Software+v+6.0.+GE+Healthcare+data+file+11-0011-98+Edition+AA%5BTitle%5D)+AND+%22%22%5BJournal%5D)">DeCyder 2-D Differential Analysis Software v 6.0. GE Healthcare data file 11-0011-98 Edition AA.</a> , (2004).</li>
<li><a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((2-D+Electrophoresis+using+immobilized+pH+gradients%2C+principles+and+methods%5BTitle%5D)+AND+%22GE+Healthcare+handbook+80-6429-60+Edition+AB%22%5BJournal%5D)">2-D Electrophoresis using immobilized pH gradients, principles and methods.</a> GE Healthcare handbook 80-6429-60 Edition AB. , (2002).</li>
<li><a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((CyDye+DIGE+fluors+and+labeling+kits.+GE+Healthcare+data+file+18-1164-84+Edition+AB%5BTitle%5D)+AND+%22%22%5BJournal%5D)">CyDye DIGE fluors and labeling kits. GE Healthcare data file 18-1164-84 Edition AB.</a> , (2003).</li>
<li>Mayrhofer, C., Krieger, S., Allmaier, G., Kerjaschki, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((DIGE+compatible+labeling+of+surface+proteins+on+vital+cells+in+vitro+and+in+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22Proteomics%22%5BJournal%5D)">DIGE compatible labeling of surface proteins on vital cells in vitro and in vivo.</a> Proteomics. 2, 579-5785 (2006).</li>
<li><a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Selective+labeling+of+cell-surface+proteins+using+CyDye+DIGE+Fluor+minimal+dyes.+GE+Healthcare+Application+Note+11-0033-92+Edition+AB%5BTitle%5D)+AND+%22%22%5BJournal%5D)">Selective labeling of cell-surface proteins using CyDye DIGE Fluor minimal dyes. GE Healthcare Application Note 11-0033-92 Edition AB.</a> , (2005).</li>
</ol>

蛋白质浓度
两种标记流程的概述如图1所示。由于按照细胞表面蛋白标记方案进行标记时细胞仍保持完整，因此只有细胞表面蛋白会接触到染料。而在标准Ettan DIGE方案中，细胞在标记前已被裂解，因此细胞内和细胞外的蛋白均会被标记（图1）。在细胞表面蛋白标记方案中，染料与蛋白的相对比例未知，因为无法对细胞表面蛋白进行特异性定量。然而，已知细胞表面蛋白仅占细胞总蛋白的极小部分2。本实验中使用了约5–10×106个细胞与600 pmol染料。由于本研究中仅使用了未分级样品的12.5–25%进行二维电泳，因此可能可以使用更少的细胞数量。
<img src="/files/ftp_upload/old/945_2008_9_11_4/945_Figure-01.png" alt="细胞表面蛋白标记、二维差异凝胶电泳示意图、方案比较、分馏样品分析。" data-altupdatedat="1761735611000" data-alt="图1">
图1....

<table><tbody><tr><td>CyDye DIGE 试剂盒，2 nmol</td><td>试剂</td><td>GE Healthcare</td><td>28-9345-30</td><td></td></tr><tr><td>2-D Quant 试剂盒</td><td>试剂</td><td>GE Healthcare</td><td>80-6484-51</td><td></td></tr><tr><td>IPG 缓冲液 pH 3-11NL</td><td>试剂</td><td>GE Healthcare</td><td>17-6004-40</td><td></td></tr><tr><td>Immobiline DryStrip 干胶条 pH 3-11NL，24 cm</td><td>试剂</td><td>GE Healthcare</td><td>17-6003-77</td><td></td></tr><tr><td>IPGbox</td><td>工具</td><td>GE Healthcare</td><td>28-9334-65</td><td></td></tr><tr><td>IPGbox 试剂盒</td><td>工具</td><td>GE Healthcare</td><td>28-9334-92</td><td></td></tr><tr><td>DeStreak 水化溶液</td><td>试剂</td><td>GE Healthcare</td><td>17-6003-19</td><td></td></tr><tr><td>Immobiline DryStrip 覆盖液</td><td>试剂</td><td>GE Healthcare</td><td>17-1335-01</td><td></td></tr><tr><td>Ettan IPGphor 3 等电聚焦仪</td><td>仪器</td><td>GE Healthcare</td><td>11-0033-64</td><td></td></tr><tr><td>Ettan IPGphor 多通道进样装置</td><td>仪器组件</td><td>GE Healthcare</td><td>80-6498-38</td><td></td></tr><tr><td>Ettan DALTtwelve 凝胶灌注器</td><td>工具</td><td>GE Healthcare</td><td>80-6467-22</td><td></td></tr><tr><td>Ettan DALTtwelve 分离单元及电源/控制单元</td><td>仪器</td><td>GE Healthcare</td><td>80-6466-46</td><td>230 V 单元：80-6466-27</td></tr><tr><td>Typhoon 9410 多功能成像仪</td><td>仪器</td><td>GE Healthcare</td><td>63-0055-81</td><td></td></tr><tr><td>Ettan 斑点挑取仪</td><td>仪器</td><td>GE Healthcare</td><td>18-1145-28</td><td></td></tr><tr><td>Ettan 消化仪</td><td>仪器</td><td>GE Healthcare</td><td>18-1142-68</td><td></td></tr><tr><td>Ettan 点样仪</td><td>仪器</td><td>GE Healthcare</td><td>18-1142-67</td><td></td></tr><tr><td>Ettan MALDI-TOF</td><td>仪器</td><td>GE Healthcare</td><td>18-1142-33</td><td></td></tr><tr><td>DeCyder 二维差异分析软件</td><td>其他</td><td>GE Healthcare</td><td>28-4012-01</td><td></td></tr><tr><td>ImageQuant 分析软件</td><td>其他</td><td>GE Healthcare</td><td>28-9236-62</td><td></td></tr><tr><td>尿素</td><td>试剂</td><td>GE Healthcare</td><td>17-1319-01</td><td></td></tr><tr><td>CHAPS</td><td>试剂</td><td>GE Healthcare</td><td>17-1314-01</td><td></td></tr><tr><td>PlusOne 二硫苏糖醇（DTT）</td><td>试剂</td><td>GE Healthcare</td><td>17-1318-01</td><td></td></tr><tr><td>溴酚蓝</td><td>试剂</td><td>GE Healthcare</td><td>17-1329-01</td><td></td></tr><tr><td>Tris</td><td>试剂</td><td>GE Healthcare</td><td>17-1321-01</td><td></td></tr><tr><td>十二烷基硫酸钠（SDS）</td><td>试剂</td><td>GE Healthcare</td><td>17-1313-01</td><td></td></tr><tr><td>PlusOne 87% 甘油</td><td>试剂</td><td>GE Healthcare</td><td>17-1325-01</td><td></td></tr><tr><td>PlusOne ReadySol IEF 40% T, 3% C</td><td>试剂</td><td>GE Healthcare</td><td>17-1310-01</td><td></td></tr><tr><td>PlusOne TEMED</td><td>试剂</td><td>GE Healthcare</td><td>17-1312-01</td><td></td></tr><tr><td>PlusOne 过硫酸铵</td><td>试剂</td><td>GE Healthcare</td><td>17-1311-01</td><td></td></tr><tr><td>PlusOne 甘氨酸</td><td>试剂</td><td>GE Healthcare</td><td>17-1323-01</td><td></td></tr><tr><td>膜蛋白 2-D 样品制备试剂</td><td>试剂</td><td>Pierce, Thermo Scientific</td><td>89864</td><td></td></tr><tr><td>硫酸链霉素</td><td>试剂</td><td>Invitrogen</td><td>15140-122</td><td></td></tr></tbody></table>

使用cydye dige fluor最小染料对细胞表面蛋白进行选择性标记

Selective Labelling of Cell-surface Proteins using CyDye DIGE Fluor Minimal Dyes

细胞表面蛋白在细胞响应环境及与邻近细胞相互作用中起核心作用。已知它们几乎可诱导所有细胞内信号通路。此外，表面蛋白在环境适应、药物治疗中具有重要作用，并常参与疾病的发生机制与病理过程（1）。蛋白质-蛋白质相互作用是信号转导通路的内在组成部分，为了更深入理解这些复杂的生物学过程，需要灵敏且可靠的方法来研究细胞表面蛋白。二维（2-D）电泳被广泛用于复杂蛋白质样品中生物标志物及其他靶标的检测，以研究差异性变化。由于细胞表面蛋白丰度较低（约占细胞总蛋白的1–2%），在未经分级分离或富集处理的情况下，很难在2-D凝胶中检测到。此外，由于其疏水性及高分子量，这类蛋白在2-D凝胶中的表征通常较差（2）。本研究提出一种针对完整细胞的新方案，采用CyDye DIGE Fluor最小标记荧光染料对这一重要蛋白群体进行特异性标记与检测。结果显示，该方法可特异性标记大量细胞表面蛋白，而对细胞内蛋白的标记极少。该方案快速、操作简便，且三种CyDye DIGE Fluor最小标记染料（Cy 2、Cy 3和Cy 5）均可用于细胞表面蛋白的标记。这些特性使得该方法可与Ettan DIGE技术结合，应用于二维荧光差异凝胶电泳（2-D DIGE），并利用DeCyder 2-D差异分析软件分析蛋白质表达变化。本研究还检测了CHO细胞在不同时间血清饥饿处理过程中细胞表面蛋白水平的变化（见表1）。该方法能够以高准确性检测到丰度的微小变化，且结果经严谨的统计学方法验证。

本文展示了一种无需分级步骤即可对细胞表面蛋白进行荧光标记并增强检测的简单且特异的方法。采用二维（2-D）电泳结合Ettan™ DIGE技术分析细胞表面蛋白的差异丰度。

使用CyDye DIGE Fluor最小染料对细胞表面蛋白进行选择性标记

细胞表面蛋白在细胞对环境的反应以及与邻近细胞的相互作用中起核心作用。已知它们是……的诱导因子

我叫Maria，目前在瑞典NOS的Y Healthcare工作。细胞表面蛋白通常参与细胞与其环境之间的通讯，因此在研究中备受关注，旨在更深入地了解疾病以及由细胞环境变化引起的其他生物学差异。在本视频中，我将向您展示一种简单的侧向避光细胞表面标记实验方案，您将能够通过该技术直观地富集这些丰度较低的蛋白质，而无需进行物理增强，并研究这些细胞表面蛋白的差异。如果您对这项技术感兴趣，可以在二维手册中找到更多信息。此外，我们还针对这一特定主题提供了一份应用说明，您可从 job 下载。在上方所示的细胞表面标记实验方案中，您将在细胞仍保持完整时对其进行标记。在标记过程中，染料仅能接触到细胞表面的蛋白质。标记步骤完成后，对细胞进行分析以验证细胞表面特异性标记。将标记样品分馏为膜蛋白和胞质蛋白，同时平行制备未分馏样品。作为对比，此分步分析并非必需，但此处进行该操作仅为了证明细胞表面标记方案对细胞表面蛋白具有特异性。我们还进行了标准的全细胞蛋白非特异性标记方案（如下图所示），在标记前对细胞进行裂解，从而使所有细胞内蛋白均可被标记。标记步骤完成后，样品进行二维电泳分析。采用非酶法使贴壁细胞脱离，以避免消化目标细胞表面蛋白。本方案中使用细胞刮（rubber policeman）进行操作，但也可选用含酶的细胞解离培养基。将细胞悬液按每管五百万至一千万个细胞分装至多个离心管中。随后离心收集细胞，并用pH 7.4的H-P-S-S-P-H缓冲液洗涤，以去除残留的细胞培养成分。血清蛋白和荧光成分造成的培养基污染可能干扰标记与检测。悬浮生长的细胞在洗涤后直接离心沉淀并清洗，随后在标记步骤中将细胞重悬于 200 微升冰浴标记缓冲液中，缓冲液包含 HPSS（pH 8.5）和 1 摩尔尿素。为了获得细胞表面蛋白标记的最佳条件，务必检查pH值。在标记前，我们使用600皮摩尔的side-eye标记1000万CHO细胞。side-eye与细胞数量的最佳比例会因细胞类型不同而有所变化。由于我们尚不清楚细胞表面蛋白质的确切浓度，因此如何确定蛋白质侧向标记的最佳条件可参见《二维电泳原理与方法手册》。将细胞与侧向标记试剂 D floor、最低剂量的试剂在冰上避光孵育 20 分钟。标记反应完成后，通过加入20微升10毫摩尔的赖氨酸来淬灭未反应的染料。标记的细胞现在用冰冷的HPSS缓冲液（pH 7.4）洗涤两次，以去除多余的染料。因此，在下一步细胞裂解过程中，将不再有游离染料导致非特异性细胞内标记或蛋白质标记。细胞表面的蛋白质现已标记完毕，细胞经过洗涤后已准备好进行裂解。将上一步洗涤所得沉淀重悬于150微升裂解缓冲液中，缓冲液含有7摩尔尿素、2摩尔硫脲、4% CHAPS、30毫摩尔Tris、5毫摩尔乙酸镁，pH 8.5，置于冰上至少1小时，期间偶尔涡旋震荡。样品现可进行二维分离。进行电泳的第一步是准备用于再水合的IPD胶条。通过加入与所用胶条pH范围相对应的IPG缓冲液来配制专用的再水合溶液，并将该溶液加入再水合槽的凹槽中。撕去IPG胶条的保护膜，小心地将胶条干燥面朝下放入含有再水合溶液的再水合槽中。关闭IPG盒的盖子，并在其中对胶条进行过夜复水。在第一维等电聚焦过程中，蛋白质将根据其等电点（pi）进行分离。该步骤使用IPG four three仪器完成。将复水后的胶条放入加样槽中，并将电极安装在上方。每个样品使用加样帽上样50 µg。我们既可以将未经分级的样品直接上样，也可以先将样品分为膜组分和胞质组分后再进行上样。关闭盖子以保护荧光样品免受光照。根据建议对仪器进行编程，并过夜运行。使用成年12孔胶灌制大型12% lamby凝胶。加入Coster置换溶液以避免管路中形成聚合的丙烯酰胺凝胶。凝胶在使用前于室温下静置过夜使其充分聚合。等电聚焦完成后，取出胶条并分两步在含有SDS的缓冲液中进行平衡：首先使用DTT还原半胱氨酸残基中的二硫键，随后用碘乙酰胺进行烷基化处理，以防止丙烯酰胺对巯基的修饰。将IPG胶条浸入电泳缓冲液中，然后小心地放置在大尺寸二维胶的顶部。为避免胶条与凝胶之间产生气泡，可在上方加入含有溴酚蓝的熔化的2%琼脂糖溶液进行密封。此时，凝胶已准备好进行第二向SDS-PAGE分离。蛋白质将根据分子量进行分离，该过程使用Tonal Six系统完成。向电泳槽中加入阳极运行缓冲液，插入凝胶，然后向顶部槽室加入阴极运行缓冲液程序。按照推荐条件连接电源，避光运行第二向电泳，时间约为四到五小时，或直至染料前沿迁移至凝胶底部。在第二向电泳结束后，使用夹具将胶板放入台风荧光成像仪中。可同时扫描两块凝胶和三个通道。该双向电泳结果显示样品中膜蛋白具有高分辨率，尽管疏水性蛋白在双向电泳中存在一些已知的检测限制。结果显示出许多新的细胞表面标记点（图中红色所示），而这些位点在标准标记方法（图中绿色所示）中未能被检测到。这些结果表明，细胞表面标记方案对细胞表面蛋白具有高度特异性。由于仅标记细胞表面蛋白，因此更易于观察，同时避免了高丰度细胞质蛋白的干扰。上方显示了非分馏的膜组分或细胞质组分凝胶的荧光图像。以下是同一凝胶经银染后的图像。结果显示，胞质蛋白未发生荧光标记，但银染表明凝胶中确实存在蛋白质。结果还显示，未分级样品与膜组分样品具有相似的蛋白点图谱模式，表明在进行二维电泳前无需进行分级处理，这使得本实验方案既简单又便捷。SI 二、SI 三和 SCI 五显示出相似的标记模式，均适用于细胞表面实验方案。本研究采用这三种侧向进样DI板最小培养基进行饮食实验，以分析CHO细胞在不同时间长度的血清饥饿条件下细胞表面蛋白的差异表达。实验中所有样本的CY二细胞表面样品被混合后作为内参标准使用。在饥饿期间，可追踪多种细胞表面蛋白的差异性变化。利用细胞表面蛋白分析方案，在制备胶中鉴定蛋白身份时，检测到18种以上采用标准方案未能检出的新型膜蛋白。为便于回溯匹配至分析数据集上的蛋白点，需加入细胞表面样品进行加标。实验结果表明，该方法能够高分辨率地检测大量细胞表面蛋白。该方案对细胞表面蛋白具有高度特异性，未观察到细胞内蛋白的标记。与标准方案相比，使用该方法能够检测到更多的细胞表面蛋白，而且正如您所见，该方案操作非常简便。您只需在细胞保持完整的情况下对细胞表面蛋白进行标记，随后无需进行膜组分分离，即可直接进行二维电泳分析。因此，该方案非常适合用于研究细胞表面蛋白及其在D技术下的差异。

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我们介绍了一种实验方案和数据分析流程，用于在活细胞中结合现代荧光标记技术，开展活细胞双色荧光互相关光谱（FCCS）与荧光共振能量转移（FRET）联用研究膜受体动力学。...

双色荧光交叉相关光谱法研究活细胞中蛋白质-蛋白质相互作用及蛋白质动力学

学习使用CyDye DIGE荧光最小染料对细胞表面蛋白进行选择性标记的方法。该技术结合二维电泳和Ettan™ DIGE技术，无需分级分离即可富集低丰度膜蛋白，有效检测差异表达蛋白并研究细胞通讯机制。

使用CyDye DIGE Fluor最小染料对细胞表面蛋白进行选择性标记

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