Methodenartikel

Fluoreszierende Funktionalisierung von virusähnlichen Partikeln durch Disulfid-Re-Bridging

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30. September 2026

In diesem Artikel

Zusammenfassung

Quelle: Chen, Z., et al. Herstellung von konjugationsinduzierten fluoreszierenden pegylierten Virus-ähnlichen Partikeln mittels Dibromomaleimid-Disulfid-Chemie. J. Vis. Exp. (2018)

In diesem Video wird die fluoreszente Funktionalisierung von virusähnlichen Partikeln durch das Wiedervernetzen reduzierter Disulfide mit einem Polyethylenglykol (PEG)-Linker gezeigt, wodurch stabile, verfolgbare Konjugate entstehen, die für die zelluläre Bildgebung und gezielte Abgabe in biomedizinischen Anwendungen geeignet sind.

Protokoll

1. Konjugation von Dibromomaleimid-(DB)-Verbindungen an Bakteriophagen Qβ

  1. Reduzieren Sie Disulfide an Qβ.
    1. Lösen Sie 0,0020 g Tris(2-carboxyethyl)phosphin (TCEP) in 1 mL ultrareinem Wasser, um eine 100x-Stammlösung herzustellen.
      HINWEIS: Bereiten Sie TCEP frisch vor der Reduktion zu.
    2. Geben Sie 200 µL Qβ (5 mg/mL) in ein Mikrozentrifugenröhrchen.
    3. Gegeben Sie anschließend 20 µL der 100x TCEP-Stammlösung hinzu.
    4. Inkubieren Sie 1 h bei Raumtemperatur.
  2. Wiederherstellen der reduzierten Disulfidbrücken mittels Dibromomaleimid-Polyethylenglykol (DB-PEG).
    1. Lösen Sie 0,0017 g Dibromomaleimid-Polyethylenglykol (DB-PEG) in 100 µL DMF.
    2. Geben Sie 680 µL einer 10 mM Natriumphosphatlösung (pH 5) hinzu.
    3. Geben Sie reduziertes Qβ in die DB-PEG-Lösung und beobachten Sie den Mischvorgang unter einer 365 nm UV-Lampe. Die intensive gelbe Fluoreszenz ist unmittelbar nach dem Mischen mit einer tragbaren 365 nm UV-Lampe sichtbar.
    4. Lassen Sie die Reaktion über Nacht bei Raumtemperatur (RT) auf einem Rotisserie-Inkubator laufen.
  3. Reinigen Sie das Reaktionsgemisch dreimal mittels Zentrifugalfilter (Molekulargewichts-Cutoff (MWCO) = 10 kDa) mit 1x PBS (phosphatgepufferter Salzlösung) bei 3.283 × g für 20 min bei 4 °C.
  4. Überwachen Sie die Konjugation mittels nicht-reduzierender SDS-PAGE (Natriumlaurylsulfat-Polyacrylamid-Gelelektrophorese) und nativer Agarose-Gelelektrophorese.
    HINWEIS: VLPs (virusähnliche Partikel) wandern im nativen Agarosegel als intakte Partikel und werden basierend auf ihrer Ladung, Größe und Form getrennt.

Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
2,3-Dibromomaleimid 97%Sigma Aldrich553603-5G 
PolyethylenglykolAlfa Aesar41561-22 
NatriumphosphatFisher ScientificAC424375000 
Acrylamid/Bis-AcrylamidP212121RP-A11310-500.0 
NatriumlaurylsulfatSigma AldrichL3771-100G 
AmmoniumpersulfatFisher ScientificBP179-100 
Amicon Ultra-4 ZentrifalfiltereinheitenMillipore SigmaUFC801024 
Falcon 15-mL-KegelzentrifugenröhrchenFisher Scientific14-959-53A 
Mikrozentrifugenröhrchen: 1,5 mLFisher Scientific05-408-129 
VWR Os-500 OrbitalschüttlerVWR Scientifc Products14005-830 
P1000 PipetmanGilsonF123602 
P200 PipetmanGilsonF123601 
P100 PipetmanGilsonF123615 
P20 PipetmanGilsonF123600 
P10 PipetmanGilsonF144802 
Intel Weighing PM-100 Laborwaage, klassische LaborhochpräzisionswaageIntelligent Weighting TechnologyIWT_PM100 

Tags

PEGylierte VLPskovalente Konjugationzelluläre Bildgebunggezielte AbgabeSDS-PAGEAgarose-GelelektrophoreseZentrifugalfiltrierung