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Die Verwendung einer optischen Falle für das Studium der Wirt-Pathogen-Interaktionen für Dynamic Live Cell Imaging

DOI:

10.3791/3123

July 28th, 2011

In This Article

Summary

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Eine Methode ist beschrieben, einzeln auswählen, bearbeiten und Bild zu leben Erreger mit einer optischen Falle gekoppelt an eine sich drehende Scheibe Mikroskop. Die optische Falle bietet räumliche und zeitliche Steuerung von Organismen und legt sie neben Wirtszellen. Fluoreszenzmikroskopie erfasst dynamische interzelluläre Wechselwirkungen mit minimaler Störung der Zellen.

Abstract

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Dynamische Live Cell Imaging ermöglicht die direkte Visualisierung von Echtzeit-Interaktionen zwischen den Zellen des Immunsystems 1, 2, aber der Mangel an räumlicher und zeitlicher Steuerung zwischen den Fresszellen und Mikroben geleistet hat Beobachtungen in den ersten Interaktionen von Wirt Reaktion auf Krankheitserreger konzentrieren schwierig. Historisch gesehen haben interzellulären Kontakt Veranstaltungen wie Phagozytose 3 durch Mischen von zwei Zelltypen abgebildet worden, und dann kontinuierlich Scannen der field-of-view, um serendipitous interzellulären Kontakte auf der entsprechenden Stufe der Interaktion zu finden. Die stochastische Natur dieser Ereignisse macht dieses Verfahren langwierig, und es ist schwer zu früh oder flüchtige Ereignisse in Zell-Zell-Kontakt durch diesen Ansatz zu beobachten. Diese Methode erfordert finden Zellpaaren, dass am Rande der Kontakt sind, und beobachtet sie, bis sie vollendet ihre Kontaktdaten, oder nicht. Um diese Einschränkungen nutzen wir optische Fallen als nicht-invasive, nicht-destruktive, sondern eine schnelle und effektive Methode, um Zellen in Kultur positionieren.

Optische Fallen oder optische Pinzette, sind zunehmend in der biologischen Forschung eingesetzt, um zu erfassen und physisch zu manipulieren Zellen und anderen Mikrometergröße Teilchen in drei Dimensionen 4. Strahlungsdruck wurde zum ersten Mal beobachtet und auf optische Pinzette-Systeme in 1970 5, 6, und wurde zum ersten Mal verwendet werden, um biologische Proben im Jahr 1987 7 zu steuern. Seither haben optische Pinzette in eine Technologie ausgereift, um eine Vielzahl biologischer Phänomene 8-13 Sonde.

Wir beschreiben eine Methode, 14, die Fortschritte Live Cell Imaging durch die Integration einer optischen Falle mit Spinning-Disk-konfokale Mikroskopie mit Temperatur und Luftfeuchtigkeit auf exquisite räumliche und zeitliche Steuerung von pathogenen Organismen in einer physiologischen Umgebung bieten, um Wechselwirkungen mit Wirtszellen, wie die ermittelten erleichtern Betreiber. Live, wurden pathogene Organismen wie Candida albicans und Aspergillus fumigatus, die tödlich enden, invasive Infektionen bei immungeschwächten Personen 15, 16 (z. B. AIDS, Chemotherapie und Organtransplantation Patienten) kann dazu führen, optisch gefangen mit zerstörungsfreien Laserintensitäten und zog neben Makrophagen, die den Erreger phagozytieren können. Hohe Auflösung, Durchlicht und Fluoreszenz-basierten Filmen etabliert die Fähigkeit zur frühen Ereignisse der Phagozytose in lebenden Zellen zu beobachten. Zur Demonstration der breiten Anwendbarkeit in der Immunologie, wurden primäre T-Zellen auch gefangen und manipuliert werden, um Synapsen mit anti-CD3 beschichteten Mikrokügelchen in vivo bilden und Zeitraffer-Bildgebung der Synapsenbildung wurde ebenfalls erhalten. Durch die Bereitstellung einer Methode, um feine räumliche Steuerung von Live-Erreger in Bezug auf Immunzellen ausüben können zelluläre Interaktionen mittels Fluoreszenzmikroskopie mit minimaler Störung von Zellen aufgenommen werden und können leistungsfähige Einblick in frühen Reaktionen der angeborenen und erworbenen Immunität zu erhalten.

Protocol

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1. Kultur Bedingungen von Krankheitserregern für optische Fallen

  1. Wachsen A. fumigatus (B-5233/RGD12-8) auf einem semi-Agar-Medien mit SBD (Sabouraud Dextrose) bei 30 ° C für 3 Tage.
  2. Wachsen C. albicans (SC5314) in YPD (Hefe-Pepton Dextrose) Flüssigkultur mit 100 ug / ml Ampicillin über Nacht in einem Schüttelinkubator bei 30 ° C.

2. Vorbereitung von Krankheitserregern für Fluoreszenzmarkierung

  1. Ernte gewünschten Betrag von Krankheitserregern und in ein 1,5 ml Reaktionsgefäß.
  2. Add 300 ul Phosphat-gepufferter Kochsalzlösung (PBS), um Reaktionsgefäß.
  3. Mit Ultraschall-Ge....

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Discussion

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In dieser Arbeit verwenden wir einen optischen Falle auf Krankheitserreger mit Abmessungen zwischen 3 um einzufangen - 5 pm. Obwohl Krankheitserreger von Interesse für unser Labor in der Regel diese Dimensionen haben, ist die optische Pinzette hier beschriebene System flexibel auf eine Vielzahl von Größen Falle. In der Tat optische Fallen wurden verwendet, um Partikel von einzelnen Atomen, Zellen etwa 10 um im Durchmesser erfassen. Zusätzlich wurde diese optische Fallen System in der Lage, Partikel in verschiedenen Form.......

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Disclosures

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Keine Interessenskonflikte erklärt.

Acknowledgements

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Diese Arbeit wurde vom Massachusetts General Hospital Department of Medicine Internal Funds (JMT, MKM, MLC, JMV), National Institute of Biomedical Imaging and Bioengineering gewähren T32EB006348 (CEC), Massachusetts General Hospital Center for Computational and Integrative Biology Fonds für die Entwicklung und AI062773 unterstützt ( RJH), Zuschüsse AI062773, DK83756 und DK 043351 (RJX), NSF 0643745 (MJL), NIH R21CA133576 (MJL) und National Institute of Allergy and Infectious Diseases (NIAID) der National Institutes of Health (NIH) AI057999 (JMV ). Wir danken Nicholas C. Yoder für hilfreiche Diskussionen und Charles Filze (RPI, Inc.) für die technische Unterstützung. ....

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Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
Name des Reagenzes Firma Katalog-Nummer Kommentare (optional)
A. fumigatus Albino-Stamm, B-5233/RGD12-8, Geschenk von KJ Kwon-Chung, NIH
C. albicans SSY50-B-Mutante, Geschenk von Eleftherios Mylonakis, MGH, SC5314-Stamm, Geschenk von Gerald Fink, Whitehead Institute
Alexa Fluor 488 Invitrogen ± 20000
Alexa Fluor 647 Invitrogen A20006
Dimethylformamid Sigma D4551
Frisches Blut Gift aus RJW Heath, MGH, HMS
Nikon inversen Mikroskop Nikon Modell Ti-E
Trapping-Laser, ChromaLase Blue Sky Research CLAS-106-STF02-02
Fluoreszenz-Anregungs-Laser Kohärent Modell Innova 70C
Breadboards zum Einfangen von Komponenten Thorlabs MB1224, MB1218
Optische Lufttisch Technische Manufacturing Corporation
Elektronischer Verschluss mit Pedal Uniblitz Gekauft von Vincent Associates, Rochester, NY
Singlemode Glasfaser Oz Optics PMJ-3S3S-1064-6
Fiber Stellungsregler Thorlabs PAF-X-5-C
Faserkollimator Oz Optics HPUCO-23 bis 1064-P-25AC
Objektive für Teleskop Thorlabs AC254-150-B Brennweite von 150 mm
Übersetzung Stufen (x, y, z) Newport M-461-XYZ
IR dichroitischen Spiegel Chroma ET750-sp-2P8
Objektiv (100X) Nikon NA = 1,49, Öl-Immersion, TIRF Ziel
Konfokale Kopf Yokogawa CSU-XI
Polarizer Nikon MEN51941
Wollaston-Prisma Nikon MBH76190
EM-CCD-Kamera Hamamatsu C9100-13
CCD-Kamera (ORCA ER) Hamamatsu C4742-80-12AG
Filterrad Ludl 99A353
Filterrad Sutter LB10-NWE
Chambered Deckglas Lab-Tek/Nunc 155409
Dynabeads Invitrogen 111-51D Beschichtet mit anti-CD3
Dulbecco modifiziertem Eagle-Medium (DMEM) Invitrogen / Gibco 10313
Penicillin / Streptomycin Invitrogen / Gibco 15140-122
L-Glutamin Invitrogen / Gibco 25030-081
Fetal Bovine Serum (HyClone) ThermoScientific SH30071.03

References

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  1. Grakoui, A. The immunological synapse: A molecular machine controlling T cell activation. Science. 285, 221-227 (1999).
  2. Monks, C. R. Three-dimensional segregation of supramolecular activation clusters in T cells. Nature. 395, 82-86 (1998).

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Optical TrappingSpinning Disk ConfocalHost Pathogen InteractionsLive Cell ImagingPhagocytosis ObservationPathogen ManipulationMacrophage InteractionCandida AlbicansAspergillus FumigatusT Cell Synapse

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