1. Isolierung von PBMC
- Draw Blut (7,5 bis 8,0 ml) in einen BD Vacutainer CPT Cell Preparation Röhrchen mit Natrium Heparin. Die Röhre enthält eine Natrium-Heparin als Antikoagulans und eine Ficoll-Hypaque Dichte Flüssigkeit, plus ein Polyester-Gel-Schranke, die die beiden Flüssigkeiten voneinander trennt. Zentrifugenröhrchen / Blutprobe bei Raumtemperatur (18 ° C bis 25 ° C) in einer horizontalen Rotor (swing-out Kopf) für 20 min bei 1800 x g. Schalten Zentrifuge bremst ab.
- Nach der Zentrifugation erfolgt die Reihenfolge der Schichten wie folgt (gesehen von oben nach unten): a) Plasma - b) periphere mononukleäre Blutzellen (PBMC) und Thrombozyten - c) Dichte Lösung - d) Polyester Gel - e) Granulozyten - f) roten Blutkörperchen (Abb. 1).
- Sammeln Sie nur einen Bruchteil der Plasmaschicht, so dass 5 bis 10 mm von Plasma oberhalb der Interphase, ohne die Zellschicht. Das Plasma kann für die Kultur (Abschnitt 2.5) verwendet werden.
- Ernte der angereicherten Fraktion (PBMC) in der Interphase mit einer Pipette aufnehmen und in 15 ml konischen Rohr.
- Waschen Sie die PBMC mit 10 ml Phosphat-gepufferter Salzlösung (PBS), durch Invertieren des Röhrchens 5 mal und dann 5 min bei 400 x g zentrifugieren.
- Wiederholen Sie die Waschschritte zweimal, und dann Zellpellet in 5 ml PBS. Bestimmen Sie die Anzahl der Zellen. In der Regel 1,3 x10 6 Zellen sind von 1 ml Vollblut gewonnen.
- Bestimmen Sie die Frequenz und Phänotyp der γδ T-Zellen in PBMC mittels Durchflusszytometrie (Abschnitt 3) (Abb. 2).
2. Expansion von γδ T-Zellen
- Centrifuge Zellsuspensionen in 15 ml konische Röhrchen für 5 min bei 400 x g bei Raumtemperatur, und entsorgen Sie die Überstände.
- Bereiten Kulturmedium (CM) durch Zugabe von humanem IL-2 (IL-2) und Zoledronat (Zometa), um Endkonzentrationen von 1000 IU / ml und 5 um beträgt. ALyS203 (Cell Science & Technology Institute) oder OpTmizer (Invitrogen) Medien unterstützen eine gute Erweiterung des γδ T-Zellen (weitere Informationen in den Referenzen 6 und 9). Zometa wird in flüssiger Form (4 mg/5-ml Durchstechflasche) zur Verfügung gestellt. Zur Herstellung eines 5 uM Lösung, mit 50 ul von Zometa um 30 ml Kulturmedium.
- Resuspendieren Zellpellet in Kulturmedium und passen zu 1x10 6 Zellen / ml.
- Pipettieren von 1 ml CM mit 1x10 6 Zellen in jedes Well einer 24-Well-Platte. Für großflächige Kulturen, können die Zellen auf 0,5 x 10 6 Zellen / cm ausgesät werden 2 nach den Flächen der Platte Brunnen, Schüssel oder Flasche.
- Add autologem Plasma (Abschnitt 1.3), gepoolten menschlichen AB sera oder FCS, so dass es etwa 10% des Volumens der Kultur (100 ul pro Well einer 24-Well-Platte) ist. Legen Sie die Platten in einem befeuchteten 37 ° C, 5% CO 2-Inkubator für 24-48 Std.
- Pflegen Sie die Kultur mit einer Zelldichte von 0,5-2 x 10 6 Zellen / ml. Fügen Sie frisches Medium mit humanem IL-2 (1000 IU / ml) nur (ohne Zometa) alle 2-3 Tage und Transfer kultivierten Zellen in neue Brunnen oder Flaschen wie nötig, je nach dem Grad der Zellproliferation (Abb. 3). Versorgung Plasma oder Serum, das Medium, so dass die Konzentration im Serum beibehalten werden mindestens 1% betragen.
- Ernten Sie die Zellen am Tag 12-14 und die Frequenz bestimmen, Phänotyp und Funktion der γδ T-Zellen mittels Durchflusszytometrie (siehe unten).
3. Phänotypische Analyse mittels Durchflusszytometrie
- Transfer-200 ul Proben mit 2 x 10 5 Zellen zur Fluoreszenz-activated cell sorting (FACS) Röhren.
- 2 ml kaltem PBS und zentrifugieren Sie für 5 min bei 400 x g. Dann, das Sediment resuspendieren in 50 ul FACS Puffer (PBS + 1% FCS + 0,1% Natriumazid). Add 5 ul jeder Antikörper an die Proben (die monoklonalen Antikörper sind in Tabelle 1 aufgeführt).
- Inkubieren auf Eis im Dunkeln für 20 min.
- 2 ml FACS-Puffer zu jeder Probe und dann Wirbel. Centrifuge Proben für 5 min bei 400 x g bei 4 ° C. Überstand vorsichtig dekantieren.
- Resuspendieren der Zellen in 300 ul FACS-Puffer und vortexen. Analysieren Sie die Proben an einem Durchflusszytometer (Abb. 2).
4. IFN-γ Produktion Assay 10
- Der Tag vor dem Test, bereiten Stimulatorzellen durch Kultivierung von 3-5 x10 5 Daudi Zellen / ml in RPMI 1640-Medium plus 10% FCS (RPMI-10) über Nacht mit Zometa (5 pM) (im Folgenden bezeichnet Z-Daudi).
- Sammeln Z-Daudi und resuspendieren in RPMI-10 bei 2x10 6 Zellen / ml. 100 l von Z-Daudi (2x10 5) in jede Vertiefung einer Rundboden-96-Well-Platte.
- Bereiten γδ T-Zellen bei 2x10 6 Zellen / ml in RPMI-10 mit Brefeldin A bei 20 pg / ml. Transfer 100 ul der γδ T-Zell-Suspension (2x10 5) in jede Vertiefung mit Z-Daudi-Zellen oder in Vertiefungen (100 ul RPMI-10 nur oder RPMI-10 mit 20 ng / ml Phorbol 12-myristat 13-Acetat-Steuerung[PMA] plus 2 pg / ml Ionomycin).
- Mix von Auf-und Abpipettieren mehrmals. Inkubieren für 4 h in einem 37 ° C, 5% CO 2-Inkubator.
- Zentrifugieren Sie die Platte für 5 min bei 400 x g bei 4 ° C und Resuspendieren der Pellets in 200 ul kaltem PBS.
- Übertragen Sie die Proben auf FACS-Röhrchen. 4 ml kaltem PBS und Zentrifugieren für 5 min bei 400 x g bei 4 ° C.
- Resuspendieren der Pellets in 50 ul FACS-Puffer mit FITC-konjugierten Anti-TCRVγ9 (5 ul) und PE/Cy5-conjugated anti-CD3 mAb (2,5 ul). Inkubieren von Licht für 15 min bei Raumtemperatur geschützt.
- 100 l von IntraPrep Reagenz 1 und Inkubation für 15 min bei Raumtemperatur. 4 ml PBS in jedes Röhrchen und zentrifugieren Sie für 5 min bei 400 x g bei Raumtemperatur.
- Entfernen Sie den Überstand durch Absaugen und 100 ul der IntraPrep Reagenz 2. Inkubieren für 5 min bei Raumtemperatur ohne Schütteln.
- Add 5 ul PE-konjugierten anti-IFN-γ mAk in das Reagenzglas. Inkubieren von Licht für 15 min bei Raumtemperatur geschützt.
- 4 ml PBS in jedes Röhrchen und zentrifugieren Sie für 5 min bei 400 x g bei Raumtemperatur. Entfernen Sie den Überstand durch Absaugen und Zellpellet in 0,5 ml FACS-Puffer.
- Analysieren Sie die Zellen durch Durchflusszytometer. Gate auf CD3 + TCRVγ9 + Zellen und untersuchen die Expression von IFN-γ (Abb. 4).
5. Repräsentative Ergebnisse:
Es ist wichtig, den Anteil der γδ T-Zellen in PBMC zu Beginn der Kultur bestimmen. Wie in Abb.. 2 A, der Anteil der CD3 + TCRVγ9 + γδ T-Zellen in PBMC lag bei 1,6% am Tag 0. Die dominierende Populationen wurden CD27 + CD45RA + CD27 + naiven oder CD45RA - zentraler Speicher Phänotypen. Wenn γδ T-Zellen effizient stimuliert wurden, bildeten sie sich zu Clustern an den Tagen 3-5 (Abb. 3 A und B). Als Cluster-Bildung verzögert wurde, das Wachstum von anderen Zelltypen, wie zB CD4 + oder CD8 + αβ T-Zellen oder NK-Zellen das Wachstum von γδ T-Zellen (Abb. 3 C und D) zu dominieren. Nach 14 Tagen der Kultur, nahm die Häufigkeit der γδ T-Zellen um mehr als 93,8% der kultivierten Zellen in erfolgreiche γδ T-Zell-Kulturen (Abb. 2 E). Die kultivierten γδ T-Zellen hochreguliert NKG2D und CD69 Expression (Abb. 2 G und H). Sie zeigten CD27 - CD45RA - Effektor-Memory-Phänotyp (Abb. 2 F). Die Funktionen der γδ T-Zellen wurden im Hinblick auf die Zytokin-Produktion und Zytotoxizität untersucht. Die intrazelluläre IFN-γ Färbung zeigte, dass γδ T-Zellen IFN-γ produziert als Reaktion auf PMA / Ionomycin Behandlung oder Z-Daudi-Zellen, die summiert IPP nach Zoledronat-Behandlung (Abb. 4). Diese Ergebnisse zeigen, dass Zoledronat effizient stimulieren und zu erweitern funktionale γδ T-Zellen.
| Rohr | FITC | PE | ECD | PE/Cy5 |
| 1 | CD3 | CD19 | CD45 | CD14 |
| 2 | CD3 | TCRαβ | CD4 | CD8 |
| 3 | CD3 | | | CD56 |
| 4 | TCR Vγ9 | TCRαβ | CD45 | CD3 |
| 5 | TCR Vγ9 | NKG2D | | |
| 6 | TCR Vγ9 | CD69 | | |
| 7 | TCR Vγ9 | Maus IgG1 | | |
| 8 | TCR Vγ9 | | CD45RA | CD27 |
| 9 | TCR Vγ9 | | Maus IgG1 | Maus IgG1 |
Tabelle 1. Monoklonale Antikörper in multicolor Färbung von γδ T-Zellen verwendet. Ein Beispiel für die phänotypische Analyse von γδ T-Zellen in unserem Labor durchgeführt ist in Abb.. 2.

Abbildung 1. Separation von PBMC. Blood (7,5 bis 8,0 ml) wird in eine BD Vacutainer CPT Cell Preparation Röhrchen mit Natrium Heparin gezogen und direkt für 20 min bei 1800 x g zentrifugiert. Nach der Zentrifugation der resultierenden Schichten von oben nach bo gesehenttom: a) Plasma - b) PBMC und Thrombozyten - c) Dichte Lösung - d) Polyester Gel - e) Granulozyten - f) Rote Blutkörperchen.

Abbildung 2. Typische Oberfläche Phänotyp der γδ T-Zellen. PBMC wurden mit Zoledronat und IL-2 für 14 Tage stimuliert. Die Zellen wurden mit FITC-markiertem anti-TCR Vγ9 und PE/Cy5-labeled anti-CD3, um den Ausbau der γδ T-Zellen (A und E) zu überwachen. γδ T-Zellen wurden durch ihre Expression von TCRVγ9 identifiziert und ihre Expression von CD27 und CD45RA (B und F), NKG2D (C und G) oder CD69 (D und H) wurde untersucht.

Abbildung 3. Representative γδ T-Zell-Kulturen. PBMC wurden mit IL-2 (1000 IU / ml) und Zoledronat (5 pM) stimuliert. Vertreter Felder angezeigt werden (inverse Mikroskop IX71 [Olympus] x 200). Cluster und Aggregate von γδ T-Zellen können am Tag 3 (A) und Tag 5 (B), wenn γδ T-Zellen wurden erfolgreich ausgebaut beobachtet werden. Im Gegensatz dazu waren keine Cluster oder Aggregate beobachtet werden, wenn γδ T-Zell-Wachstum war nicht ausreichend (C und D).

Abbildung 4. IFN-γ Produktion. γδ T-Zellen wurden mit RPMI-10 nur (A) oder PMA / Ionomycin (B) oder Z-Daudi (C) für 4 h inkubiert. Zunächst wurde die Oberflächenexpression von TCRVγ9 gefärbt und dann IFN-γ Produktion wurde durch intrazelluläre IFN-γ Färbung untersucht.

Abbildung 5. Kinetik der γδ T-Zell-Kultur. (A) Absolute Zahl der kultivierten Zellen, (B) Anteil der γδ T-Zellen und (C) absolute Anzahl der γδ T-Zellen zu den angegebenen Zeitpunkten.