$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Beispiele für Ergebnisse von PCR-Assays für Moskito DNA-Extrakt Qualität (Abbildung 1), Anopheles arabiensis molekulare Identifizierung (Abbildung 2) und P. falciparum-Erkennung (Abbildung 3) zeigen, dass die vereinfachte Chelex Verfahren zu ähnlichen Ergebnissen liefert der Standard Aussalzen Protokoll 10, obwohl viel weniger Schritte (Tabelle 1). Bei vergleichbaren DNA-Qualität in den jeweiligen Extrakten ist es nicht verwunderlich, dass die Probe Positivität Preise in Bezug auf An. gambiae Geschwister Arten sowie Parasiten Infektionsraten waren statistisch nicht unterschiedlich basierend auf McNemar-Chi-Quadrat-Test (Abbildung 3).
Sensitivität (%) wurde berechnet als TP / (TP + FN) * 100, wo TP bezeichnet wahren Positiven und FN bezeichnet falsche Negative. Spezifität (%) wurde als TN / bestimmt (TN + FP) * 100, wo TN bezeichnet wahre Negative und FP bezeichnet Fehlalarme. Die DNA-Qualität (ND4) PCR zeigten 93% Sensitivität und 82% Spezifität für die Chelex Ansatz im Vergleich zu den etablierten Aussalzen Protokoll als Goldstandard. Entsprechende Werte von Sensitivität und Spezifität waren 100% bzw. 78%, jeweils unter Verwendung Geschwisterart Identifizierung PCR und 92% und 80%, jeweils für P. falciparum Nachweis PCR.
Der Zusatz von BSA an Reaktionsgemische ergab eine allgemeine Erhöhung der PCR Positives (3) infolge Entlastung der PCR-Inhibitoren 14, sowohl für die vereinfachte Chelex und regelmäßige Aussalzen Protokoll. Allerdings war dieser Anstieg statistisch nicht signifikant mit Ausnahme von DNA-Qualität (ND4 PCR) auf Chelex Extrakte (p = 0,039). Allel-spezifische Restriktionsenzymverdau auf P. falciparum DHFR (oder andere Target-Gen) Amplikon ermöglicht die Genotypisierung von Mitte Darm und Speicheldrüse Malariainfektionen für Arzneimittelresistenz Allele (Fig. 4; Speicheldrüse Daten nicht gezeigt).
| Einfache Chelex Procedure | Standard Aussalzen Procedure |
| Treppe | Reagenzien | Treppe | Reagenzien |
- Fügen Probe 1,5 ml Mikrozentrifugenröhrchen und homogenisieren in 100 ul 1X PBS / 1% Saponin-Lösung (2 min).
- Hinterlegen bei Raumtemperatur für 20 min.
- Spin bei 20.000 xg für 2 min und Überstand verwerfen.
- Fügen Sie 100 ul 1X PBS und vorsichtig mischen durch kurzes Vortexen (3 sec).
- Spin bei 20.000 xg für 2 min und Überstand verwerfen.
- Fügen Sie 25 ul 20% w / v Chelex in entionisiertem Wasser und 75 ul sterilem entionisiertem Wasser.
- Pierce Loch im Deckel des Probenröhrchens mit heißer, steriler 23G Injektionsnadel und Tubeninhalt Sieden für 10 min.
- Spin Mikrozentrifugenröhrchen bei 20000 × g für 1 min.
- Überstand in sterile prelabeled Fläschchen und store DNA-Lösung bei -20 ° C bis zur Verwendung (2,5 ul in 25 ul PCR-Reaktion).
| PBS Saponin
Chelex-100 Perlen | - Hinzufügen Probe zu 1,5 ml Mikrozentrifugenröhrchen geben und homogenisieren in 100 ul Puffer Bender * mit 1% DEPC (2 min).
- Inkubieren bei 65 ° C für 1 Stunde.
- Fügen Sie 15 ul kalten 8 M Kaliumacetat. Vorsichtig mischen und auf Eis inkubieren für 45 min.
- Spin Probe in Mikrozentrifugenröhrchen bei 20.000 xg für 10 min und Transfer Überstand in ein neues 1,5 ml-Tube.
- Fügen Sie 250 ul 100% Ethanol und gut mischen durch Invertieren des Röhrchens.
- Inkubieren Probe bei RT 5 min.
- Spin Proben bei 20.000 × g für 15 min.
- Ansaugen und Überstand verwerfen, so dass das Pellet vollständig trocknen im Rohr (30 min).
- Pellet in 20 ul 0,1 X SSC + RNAse (10 ug / ml) über Nacht bei 4 ° C.
- Fügen Sie 80 ul DEPC Wasser und bei -20 ° C bis zur Verwendung.
| Diethylpyrocarbonat (DEPC) * Bender Buffer: 0,1 M NaCl 0,2 M Sucrose 0,1 M Tris-HCL 0,05 M EDTA, pH 9,1
0,5% SDS in DEPC Wasser
8 M Kaliumacetat Ethanol 0,1 X Saline Natriumcitrat (SSC)-Puffer RNAse (10 ug / ml) |
| TOTAL TIME: 37 min | TOTAL TIME: 2 Std. 47 min, plus Nacht |
Tabelle 1. Schritt Vergleich der Reagenzien und Zeitbedarf für einfache Chelex Protokoll Schritt und stehenard Aussalzen Methode zur DNA-Extraktion aus Moskito-Proben.

Abbildung 1. ND4 mitochondrialen PCR Vergleich der DNA-Qualität von vereinfachten Chelex "C" und Standard Aussalzen "M"-Extrakten auf Anopheles arabiensis Feldproben. NC, Negativkontrolle; M1 und C1, M2 und C2, C3 und M3 und M4 und C4 sind gepaart Aussalzen und Chelex Extrakte von gleichen An. arabiensis mosquito Proben. L, 100 bp DNA-Leiter.

Abbildung 2 Molecular Identifizierung PCR für Anopheles arabiensis C1 und M1, M2 und C2, C3 und M3 und M4 bedeuten C4 jeweiligen Amplikon aus Aussalzen "M" und vereinfacht Chelex "C" DNA Extrakte zur gleichen Moskito Proben;.. AR, Anopheles arabiensispositive Kontrolle; L, 100 bp DNA-Leiter.

Abbildung 3. Erkennung von Positive auf Chelex und Aussalzen DNA-Extrakte für Moskito Feldproben mit PCR-Assays für die molekulare Identifizierung von Anopheles arabiensis (AR) 10, Arthropoden NADH-Dehydrogenase-Gen 4 (ND4) DNA Qualitätstest 11 und Antifolat drug resistance P . falciparum DHFR Genotypisierung 12 (F-M4). Ergebnisse bei Versuchen mit oder ohne BSA in der Reaktionsmischung ausgeführt dargestellt. McNemar-Chi-Quadrat-Test wurde verwendet, um festzustellen, ob die Unterschiede zwischen Prozent positive PCRs von DNA aus der vereinfachten Chelex extrahiert und die Standard Aussalzen Protokolle waren statistisch signifikant.

P. falciparum-Infektionen bei Mücken (mid-gut-Daten gezeigt) für Resistenz-Allele. BSTN I Verdauung auf Amplikon flankierenden Codon 108 des P. falciparum DHFR-Gen 12 zeigt Cycloguanil-resistente Mutanten in Moskito S108T Proben (M1-M5; mittleres Darm Daten gezeigt). U, unverdaute 522 bp Amplikon; FCR3, Labor-Standard P. falciparum positive Kontrolle Klon trägt S108T; K1, P. falciparum Laborstandard Klon negative Kontrolle Durchführung Cycloguanil-sensitive S108N; L, 100 bp DNA-Leiter.