Methodenartikel

Rekombinante Expression von Funktions Hämagglutinin und Neuraminidase-Proteine ​​aus dem Roman H7N9 Influenza-Virus mit dem Baculovirus-Expressionssystem

DOI:

10.3791/51112

⸱

6. November 2013

 ,  , 
1Department of Microbiology, Icahn School of Medicine at Mount Sinai, 2Graduate School of Biological Sciences, Icahn School of Medicine at Mount Sinai, 3Department of Medicine, Icahn School of Medicine at Mount Sinai

In diesem Artikel

Zusammenfassung

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Hier beschreiben wir einen Weg, korrekt gefaltete und funktionelle Influenza-Virus-Oberflächenantigene von den neuen chinesischen H7N9-Virus in Insektenzellen abgeleitet auszudrücken. Die Technik lässt sich an beliebigen Ektodomänen viraler oder zellulärer Oberflächenproteine ​​exprimieren.

Zusammenfassung

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Das Baculovirus-Expressionssystem ist ein leistungsfähiges Werkzeug für die Expression von rekombinanten Proteinen. Hier verwenden wir es richtig gefaltet und glykosylierten Varianten des Influenza-A-Virus-Oberflächen Glykoproteinen produzieren - das Hämagglutinin (HA) und Neuraminidase (NA). Als Beispiel haben wir die HA-und NA-Proteinen durch das neuartige H7N9-Virus, das vor kurzem in China entstanden ausgedrückt. Jedoch kann das Protokoll leicht für HA-und NA-Proteine ​​von einem anderen Influenza A-und B-Virus-Stämmen exprimiert angepasst werden. Rekombinante HA (rHA) und NA (RNA)-Proteine ​​sind wichtige Reagenzien für immunologische Tests wie ELISA und ELISPOT und sind auch im breiten Einsatz für die Impfstoff-Standardisierung, Antikörper-Entdeckung, Isolierung und Charakterisierung. Darüber hinaus können rekombinante NA-Moleküle Bild für kleine Moleküle als Inhibitoren verwendet werden und sind nützlich für die Charakterisierung der enzymatischen Funktion der NA, sowie seiner Empfindlichkeit gegenüber antiviralen Mitteln. Rekombinanten HA-Proteine ​​sind auch being getestet experimentelle Vakzine in Tiermodellen, und ein Impfstoff auf Basis von rekombinanten HA wurde kürzlich von der FDA zur Verwendung bei Menschen zugelassen. Die Methode, die wir hier beschreiben, diese Moleküle zu erzeugen ist einfach und kann die Forschung in Labors Influenza zu erleichtern, da es für die Produktion von großen Mengen von Proteinen schnell und zu geringen Kosten. Obwohl hier konzentrieren wir uns auf Influenza-Virus Oberflächen-Glycoproteine, kann diese Methode auch verwendet werden, um andere virale und zelluläre Oberflächenproteine ​​zu produzieren.

Einleitung

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Als eine erste Reaktion auf die jüngste Aufkommen der neuen H7N9 Influenzavirusstamm in China, haben wir Plasmide die genomischen Sequenzen für Hämagglutinin (HA) und Neuraminidase (NA)-Gene der ersten zwei Isolate. Unter Verwendung dieser Plasmide waren wir in der Lage, schnell zu konstruieren Baculovirus-Expressionsvektoren zur Produktion von rekombinanten HA-und NA in Insektenzellen. Dieses Expressionssystem ist in unserem Labor etabliert und ist entscheidend für viele unserer laufenden Forschungsprojekte 8.1 bewiesen. Insektenzellen sind in der Lage, korrekt zu falten und post-translational komplexe Proteine ​​ändern. Diese Modifikationen umfassen N-verknüpften Glykosylierung, die für viele virale Glykoproteine ​​ist. Als solches ist es nicht verwunderlich, dass das Baculovirus-System exprimiert wird ganz für Influenzavirus-Oberflächenantigen hergestellt. In der Tat sind viele der HA-und NA-Kristallstrukturen unter Verwendung von Insektenzellen exprimierte Proteine ​​9-11 gelöst. Ein weiterer Vorteil derSystems liegt in seiner zuverlässigen hohen Protein-Ausbeuten von bis zu 30 mg HA / L Zellkultur (basierend auf unserer Erfahrung mit mehr als 50 verschiedene HA-Proteine) - eine Folge von Virus-Infektion Ausdruck angetrieben von der starken Polyhedrinpromotor.

Entfernung der Transmembran-und Endodomäne der HA-und NA-Proteine ​​können für die Expression von sezernierbaren lösliche Versionen der Proteine ​​und somit das Reinigungsverfahren erheblich vereinfacht. Darüber hinaus sind diese Ektodomäne Hexahistidin markiert und kann daher unter Verwendung von Affinitätschromatographie unter Verwendung von Ni 2 +-Harz gereinigt werden. Die Transmembrandomänen von HA und NA-Proteine ​​tragen zu Homotrimer Homotetramer und Bildung auf. Um diese Oligomerisierungen bewahren, eine C-terminale Trimerisierungsdomäne fügen wir die HA-und ein N-terminales Tetramerisierungsdomäne zum NA konstruiert (Abb. 1). Wir haben eindeutig gezeigt, dass eine solche Trimerisierungsdomäne stabilisiert funktional, Folgenrved Konformationsepitope auf dem Halm-Domäne von HA 1. Die richtige Tetramerisierungsdomäne des NA könnte auch Falt-und NA-Funktion 10 zu korrigieren beitragen. Sequenzen und Baculo-Transfer-Vektoren, Trimerisierung oder Tetramerisierung Domains können von den Autoren oder von anderen Laboratorien auf dem Gebiet, 9,10,12 angefordert werden.

Eine weitere wichtige Frage für die Expression von sezernierten Proteinen in Insektenzellen ist die Auswahl der richtigen Zelllinie. Während Spodoptera frugiperda Sf9-Zellen abgeleitet unterstützen Baculovirus-Replikation sehr gut und werden im Allgemeinen für die Virusausbreitung und Rettungs verwendet, sie haben Kapazität, große Mengen an Protein zu sezernieren beschränkt. Trichoplusia ni gewonnen BTI-TN-5B1-4-Zellen (allgemein bekannt als High Five) eine höhere Kapazität und Sekretion sind die Zelllinie der Wahl, die für die Expression in diesem Protokoll 13,14. Darüber hinaus ist es hilfreich, zu reduzieren oder sogar beseitigen fötalem Rinderserum (FBS) von Expressionskulturen. Wir verwenden daher mit Medien reduziert (3%) FBS Inhalt für das Wachstum der Viren-Arbeits Aktien, und wir haben die Proteinexpression in Serum-freien Medien durchzuführen.

Rekombinanten HA-und NA-Proteine ​​für viele immunologische Techniken verwendet. Vielleicht die häufigste ist in ELISA-Tests zur Messung der Serumkonversion bei der Impfung von Menschen oder Tieren 4,6,7,15. Aufweist und NA sind auch in ELISPOT Assays sowohl stimulierende Moleküle und Nachweisreagenzien für Antikörper sekretierende Zellen 16 verwendet. Ihre Verwendung als molekulare Köder ermöglicht, die speziell für Plasmablasten oder andere Arten von B-Zellen, die dann verwendet werden kann, um (therapeutische) monoklonalen Antikörpern (mAbs) zu isolieren, zu sortieren. Rekombinanten HA-und NA-Moleküle werden in der Charakterisierung dieser mAbs 8 verwendet. Weitere Beispiele sind die pH-Stabilität zu studieren oder Rezeptorspezifität wurde von anderen Virus-Isolate ausgedrückt, oder quantitativ Beurteilung spezifischer NA enzymatischeAktivität oder Resistenz gegenüber Inhibitoren. Außerdem rekombinante, gereinigte HA HA verwendet werden, um Inhalte von inaktivierten Influenza-Virus-Impfstoffen zu standardisieren.

Wichtig ist, rHA (und zu einem gewissen Grad NA)-Impfstoff-Kandidaten werden derzeit in Tiermodellen und klinischen Studien am Menschen mit einem Impfstoff von der FDA im Jahr 2013 zugelassen 2,17-19 getestet. Der Vorteil dieser neuartigen Impfstoffen ist, dass aufgrund der Natur der rekombinanten Proteine, die arbeitsintensive Prozess der Erzeugung von hohen Wachstums reassortanten Viren vermieden werden. Vielleicht noch relevant ist die Tatsache, dass ihre Ausbeute an HA hohe und reproduzierbare von Stamm zu Stamm. Da diese Impfstoffe in einer Eierfreien System hergestellt, sie enthalten keine Proteinverunreinigungen, die problematisch für Menschen mit Allergien Ei sind.

Hier haben wir uns für die HA-und NA-Proteine ​​aus zwei Isolate des neuen chinesischen H7N9 Influenza-Virus A / Anh ausdrückenui/1/13 und A/Shanghai/1/13 20,21. Das sind zeitnahe Beispiele, aber die beschriebene Protokoll kann zur Expression Influenza A-und B-HA-oder NA-Proteine ​​verwendet werden, und kann angepasst werden, um irgendwelche anderen sekretierten virale oder zelluläre Proteine ​​zu exprimieren. Trimeres oder tetrameres Transmembranproteine ​​können in die Expressionskassetten für HA und NA verwendet kloniert sind. Allerdings sind die meisten löslichen sekretierten zelluläre Proteine, wie Interferone, zum Beispiel nicht einen zusätzlichen Domänen zur Stabilisierung brauchen, und kann nur mit einem C-terminalen Hexahistidin-Tag ausgedrückt werden.

Zugriff eingeschränkt. Bitte melden Sie sich an oder starten Sie eine Testversion, um diesen Inhalt anzuzeigen.

Protokoll

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. Erzeugung von rekombinantem Baculovirus

  1. Die Klonierung in Baculovirus-Transfer-Plasmide
    1. Klon H7 HA und NA N9 Ektodomäne (oder jede andere HA oder NA-Gen) in modifizierte pFastBac Transferplasmide (siehe Einleitung). Vektoren für die HA mit einer C-terminalen Domäne und Trimerisierung einen Hexahistidin-Tag, wie auch für NA, das einen N-terminalen Tetramerisierungsdomäne und Hexahistidin-Tag, wurden beschrieben, 1,10,11,22 (Fig. 1) und können angefordert werden, die Autoren.
      Erläuterung: HA Ektodomänen ausgedrückt ohne Trimerisierungsdomäne wird vor allem in den Stiel Domain falsch gefaltet werden, was zum Verlust von Konformationsänderungen neutralisierende Epitope. Ebenso stützt sich die NA enzymatische Funktion zur richtigen Tetramerisierungsdomäne.
    2. Generierung von Bacmide
      Transformation Baculovirus-Transfer-Plasmide, die HA-und NA-Gene in Bakterien gemäß DH10Bac Verwendung eines Baculovirus-ExpressionsSystem gemäß Anweisungen des Herstellers. Isolieren und zu reinigen Bacmide mit einem Midiprep Kit nach Herstellerangaben (Abbildung 2).
  2. Rettung der rekombinanten Baculovirus und Überprüfung der Proteinexpression
    Erläuterung: Die folgenden Schritte müssen aseptisch in einer Sterildurchgeführt werden. Führen Sie dieses Verfahren unabhängig für HA und NA (oder jedes andere Gen von Interesse). Insektenzellen werden in der Regel bei 28 ° C ohne CO 2 gezüchtet. Sf9-Zellen für dieses Protokoll werden in voller TNM-FH Insektenzellmedium mit 10% FBS, 1% Pen-Strep * und 0,1% Pluronic F68-Lösung, ergänzt gewachsen, wenn nicht anders angegeben, agiert und 01.04 Uhr zweimal pro Woche. High Five-Zellen in Serum-freien Medien SFX gewachsen und agiert 01.15 Uhr zweimal pro Woche.
    * Zusatz von Antibiotika sollte in der gesamten Protokoll als optional angesehen werden und entsprechend den in jedem Labor eingesetzt Praktiken angepasst.
    1. Platte Sf9 Insektenzellen in 6-Well-Platten in einer Dichte von 2 x 10 5 Zellen / cm 2 und stehen lassen für 20 Minuten in einem 28 ° C-Inkubator (ohne CO 2).
    2. Mix 2 ug (konz. 0,5-2 ug / ul) von rekombinanter Bacmid mit 100 ul TNM-FH-Medium (serumfrei, 1% Pen-Strep). Mix 6 ul Transfektionsagens mit 100 ul TNM-FH-Medium (serumfrei, Pen-Strep). Kombinieren Sie die zwei Bände, vorsichtig mischen und lassen Sie sich für 20 Minuten bei Raumtemperatur (Transfektion Mischung). Fügen Sie ein Mock-Transfektion als Kontrolle (Abbildung 3).
    3. Überstand entfernen aus beschichtetem Sf9-Zellen (Zellen werden nun auf die Platte kleben) und ersetzen mit 2 ml Serum-freiem TNM-FH-Medium, das Pen-Strep (1%). Fügen Sie das komplette Volumen der Transfektion Mischung (aus Schritt 1.2.2) und rocken die 6-Well-Platte vorsichtig 5 Sekunden. Inkubieren in einem 28 ° C Inkubator ohne CO 2 für 6 h (Fig. 3).
    4. Ersetzen Medien with frisch TNM-FH-Medium (mit 10% FBS, 1% Pen-Strep und 0,1% Pluronic F68). Inkubation in einem 28 ° C-Inkubator ohne CO 2 für 6 Tage. Prüfen Sie gelegentlich Zellen unter dem Mikroskop. Infizierte Zellen in der Regel größer, runder erscheinen, haben Kerne vergrößert, und beginnen zu (Abbildung 4) zu lösen.
    5. Ernte der Zellen und die Bestätigung der Proteinexpression
      1. Erntezellen 6 Tage nach der Transfektion durch Zentrifugation bei 2.000 × g für 5 min bei Raumtemperatur. Der Überstand enthält das rekombinante Baculovirus - diese werden verwendet, um Arbeitsstamm direkt zu erzeugen, oder können bei 4 ° C über Jahre gelagert werden.
      2. Um die Proteinexpression überprüfen sammeln Pellets und resuspendieren in 500 ul PBS. Mischungs 50 ul der Suspension mit 50 ul SDS-PAGE-Ladepuffer (enthaltend ein Reduktionsmittel). SDS-PAGE laufen und führen eine Western Blot-Analyse mit einem anti-Hexa-Histidin-Antikörpers, um die Genexpression zu bestätigen. Fügen Zellen aus dem MockTransfektion als negative Kontrollen (Fig. 3).
    6. Herstellung der Arbeitsvorräte
      1. Platte 5 x 10 5 Sf9 Zellen / cm 2 in einem T175 cm 2-Kolben und lassen Sie sich für 20 Minuten damit sie in die Schale legen. Ersetzen vollständige TNM-FH-Medium mit TNM-FH-Medium mit 3% FBS (und 1% Pen-Strep, 0,1% Pluronic F68).
      2. Infizieren Zellen mit 100 &mgr; l des Überstands Rettungs. Inkubation in einem 28 ° C-Inkubator ohne CO 2 für 6 Tage und prüfen Sie gelegentlich, wenn die Zellen infiziert (wie in Schritt 1.2.5 beschrieben.).
      3. Spin bei 2.000 × g bei Raumtemperatur für 5 min und sammeln Stand. Das ist jetzt Ihre P2 Lager. Diese Aktie kann auf unbestimmte Zeit bei 4 ° C gelagert werden Wiederholen Sie den Vorgang mit der Infektion 100 ul des Aktien P2, Zellen zu infizieren. Die daraus resultierende Aktien heißt P3 oder Arbeits Lager, die bei 4 ° C gelagert oder direkt für die Proteinexpression verwendet werden kann. Die P3-Lager enthält in der Regel 10 7 10 9 Plaque-bildende Einheiten / ml.

2. Protein Expression and Purification

Erläuterung: Sf9-Zellen unterstützen das Wachstum von Baculovirus sehr gut. Allerdings ist ihre Fähigkeit, große Mengen an rekombinantem Protein zu sezernieren begrenzt. Deshalb verwenden wir eine andere Insektenzelllinie, High Five-Zellen, die für die Expression der sekretierten rekombinanten Proteinen. Diese Zellen unterstützen keine Baculovirus-Replikation auf sehr hohe Titer 13, aber haben hohe sekretorischen Kapazität.

  1. Growing up High Five-Zellen
    High Five-Zellen wachsen in SFX Insektenzellkulturmedium, in T175-cm 2-Kolben. Passage jeden zweiten Tag 01.03. Für eine 200 ml Expressionskultur müssen Sie 5 Flaschen konfluent wachsen.
  2. Ernte und High Five-Zellen infizieren
    1. Nehmen High Five-Zellen von 5 T175 cm 2-Kolben, indem die Flaschen mit der Hand. Sammeln Sie die Zelle UntBrnsion und Transfer in 50 ml Zentrifugenröhrchen.
    2. Spin bei 1200 × g für 7 min bei Raumtemperatur. Überstand entfernen durch Dekantieren und vereinen die Pellets durch Resuspendieren in 15 ml P3 Lager.
    3. Lassen Sie sitzen für 15 Minuten in der Flow-Haube (Abbildung 5).
    4. Bringen Sie 200 ml Hyclone SFX Kulturmedium in einen sauberen, sterilen 1.000 ml Schüttelkolben (ohne buffles, mit Aluminiumfolie vor dem Autoklavieren verschlossen sind, müssen nicht für Bakterienkulturen verwendet haben).
    5. Übertragen Sie die P3/cell Suspension in den Schüttelkolben. Siegel mit steriler Aluminiumfolie und Transferkolben in einen Shaker. Schütteln bei 70 Umdrehungen pro Minute bei 28 ° C für 72-96 Std.
  3. Ernten rekombinanten Protein aus High Five Zellexpressionsüberständen
    1. 72-96 Stunden nach der Infektion Übertragung Kulturüberständen in 500 ml Zentrifugation Eimer. Spin bei 5.500 × g für 20 min bei 4 ° C. In der Zwischenzeit spülen Sie die Schüttelkolben 3x mit doppelt destilliertem Wasser(DdH 2 O).
    2. Übertragungs 3 ml Ni-Harz-Aufschlämmung in einen 50-ml-Röhrchen mit 45 ml PBS (man braucht pro 200 ml Kultur). Gut schütteln und drehen sich mit 3.000 × g bei Raumtemperatur für 10 min. Dekantiert die PBS und halten die Pellets. Mischen Sie die Insektenzellüberstand mit der Ni-Harz-Pellet und Überführung in den bereits gespült Schüttelkolben. Inkubation bei 4 ° C für 2-4 h unter Schütteln (Abbildung 6).
    3. Berg 10 ml Polypropylen-Säule auf einer Klemme auf einem Standfuß. Entfernen Sie die beiden Kappen und setzen Sie ein Becherglas unter der Spalte um den Fluss durch (Abfall) zu sammeln. Nehmen Sie die Schüttelkolben aus dem Shaker und beginnen, den Überstand / Schlammgemisch auf die Säule zu übertragen, es wird die Ni-Harz erhalten und nur der Überstand wird durch fließen. Geben über das gesamte Volumen der Säule (7).
    4. Mit 15 ml Waschpuffer (50 mM Na 2 HCO 3, 300 mM NaCl, 20 mM Imidazol, pH 8) Waschen des Harzes 4x. Lassen Sie alle Waschpuffer Ablaufaus der Spalte und schließen Sie es mit der Kappe (untere Seite).
    5. 2 ml Elutionspuffer (50 mM Na 2 HCO 3, 300 mM NaCl, 300 mM Imidazol, pH 8) und lassen Sie sich für 5 min. Öffnen Spalte und sammeln das Eluat. Wiederholen Sie diesen Vorgang 3 mal (mit insgesamt 8 ml Elutionspuffer). Eluat, die hohe Konzentrationen von Protein enthält, zeigt typischerweise Schaum beim Schütteln (Abbildung 7). Halten Eluat auf nassem Eis, wann immer möglich.
  4. Pufferaustausch und Konzentration
    1. Prespin 15 ml Ultrafiltrationseinheiten Zentrifugation bei 3.000 × g bei 4 ° C für 20 Minuten (30 kDa cut-off für HA / NA, kann aber je nach dem gereinigten Protein der Größe variieren) mit PBS (pH 7,4-7,6). Verwerfen und durch Last Eluat fließen auf die Spin-Säule. Füllen Sie 5 ml sterilem, eiskaltem PBS und Spin für 60 min bei 3000 × g bei 4 ° C
    2. Fördermenge durch wieder auffüllen mit 15 ml eiskaltem PBS und Spin für 60 min bei 3000 × g bei 4 ° C Wiederholen Sie diesen VerfahDure noch einmal.
    3. Nehmen Sie die Spin-Säule aus der Zentrifuge und sammeln den Puffer ausgetauscht Konzentrat (typischerweise 200 ul). Dies ist hoch konzentriert rekombinanten Proteins. Mit 400 ul sterilem eiskaltem PBS spülen Spin-Säule und fügen Sie diese dem Konzentrat. Halten Sie das Konzentrat auf Eis zu allen Zeiten.

3. Charakterisierung und Qualitätskontrolle

  1. Messung der Proteinkonzentration
    Einen aliquoten des Konzentrats und messen, indem Sie Ihre Proteinquantifizierung Methode der Wahl. Eingestellt Proteinkonzentration auf 1 mg / ml durch Zugabe von PBS und gefrier kleinen Aliquoten bis -80 ° C Einfrieren und Auftauen schadet der Proteinstruktur und können, um die Aggregation führen.
  2. SDS-PAGE und Coomassie-Färbung
    Führen Sie 500 ng Ihres Proteins auf einem SDS-PAGE und Coomassie-Färbung durchführen. Für eine schnelle und bequeme Färbung verwenden Coomassie Reagenz in Kombination mit einer Mikrowelle Protokoll. HA-Proteine ​​bei 64 erscheinen in der RegelkDa wohin NA Proteine ​​sollten bei einer Größe von ca. 56 kDa (8A und B) durchgeführt. Mit dem beschriebenen Protokoll sollten Sie sehen keine Abbauprodukte. Wenn Abbau auftritt, ist es meist ein Zeichen von Hefe / Pilz-Kontamination während der Expression. In diesem Fall wiederholen Sie den Vorgang und stellen Sie sicher, alles steril zu halten.
  3. Western-Blot / ELISA
    Um die Protein Identität zu überprüfen empfehlen wir tun, um eine Western-Blot-oder ELISA-Test mit einem spezifischen Antikörper. Idealerweise werden ELISA-Tests mit einem Antikörper, der an konformationelle Epitope (z. B. Anti-HA-Antikörper Stiel 1) bindet, durchgeführt. Unter Verwendung eines solchen Antikörpers kann die korrekte Faltung des Proteins bestätigt (Fig. 8C).
  4. Mess NA-Aktivität
    Die korrekte Faltung des viralen NA kann auch durch Messen NA-Aktivität bestimmt werden. Wir empfehlen, diesen Test mit den im Handel erhältlichen NA * STAR-Assay (folgen Sie einfach den Benutzerrichtlinien) durchzuführen.

Zugriff eingeschränkt. Bitte melden Sie sich an oder starten Sie eine Testversion, um diesen Inhalt anzuzeigen.

Ergebnisse

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

HA-Moleküle aus A/Shanghai/1/13 und A/Anhui/1/13 gut mit Ausbeuten von etwa 20 mg / l Kultur ausgedrückt. NA-Moleküle beider Stämme zeigte moderate Expressionsniveaus im Bereich von 0,2 mg / l Kultur A/Shanghai/1/13 bis 0,7 mg / l für A/Anhui/1/13. Alle vier Proteinpräparate hatten sehr wenig bis gar keine Verunreinigungen (8A und B) mit HAS wobei der höhere Reinheit als NA, die durch die Expressionsniveau erklärt werden kann. A/Shanghai/1/13 HA wurde weiter mittels ELISA mit dem breit ...

Zugriff eingeschränkt. Bitte melden Sie sich an oder starten Sie eine Testversion, um diesen Inhalt anzuzeigen.

Diskussion

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Obwohl die Expression von Influenzavirus HA-und NA-Proteinen in Insektenzellen unter Verwendung des Baculovirus-Expressionssystem ist in der Regel geradlinig, gibt es einige wichtige Punkte zu beachten. Es ist wichtig, wie in der Einleitung erwähnt, dass die Ektodomäne von HA und NA werden in Fusion mit Trimerisierung oder Tetramerisierung Domänen exprimiert sind. Diese Bereiche gewährleisten eine korrekte Faltung der Moleküle in der Regel von der Transmembran-Domäne, die nicht vorhanden ist, wenn nur die Ektodomäne exp...

Zugriff eingeschränkt. Bitte melden Sie sich an oder starten Sie eine Testversion, um diesen Inhalt anzuzeigen.

Offenlegungen

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Die Autoren haben nichts zu offenbaren.

Danksagungen

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Wir möchten Patrick C. Wilson für monoklonale Antikörper CR9114 danken. Wir danken auch Debeauchamp Jennifer und Richard Webby für die ursprünglichen A/Anhui/1/13 Plasmide. Teilweise Unterstützung für diese Arbeit wurde durch das Nationale Institut für Allergie-und Infektionskrankheiten vorgesehen finanzierte Programm Projektstipendium AI097092-01A1 und CEIRS (Centers of Excellence für Influenza-Forschung und Überwachung, HHSN26620070010C). FK wurde von einem Erwin-Schrödinger-Stipendium (J 3232) aus dem österreichischen Wissenschaftsfonds (FWF) unterstützt.

Zugriff eingeschränkt. Bitte melden Sie sich an oder starten Sie eine Testversion, um diesen Inhalt anzuzeigen.

Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
Name des Materials/ der AusrüstungFirmaKatalognummerKommentare/Beschreibung
Bac-to-Bac Baculovirus-ExpressionssystemInvitrogen10359-016Befolgen Sie die Anweisungen des Herstellers
TNM-FH InsektenmediumGemini Bioproducts600-311
HyClone SFX-InsectThermo FisherSH30278.02
Cellfectin II ReagenzInvitrogenP/N58760
Pluronic F68Sigma1000702664
SimplyBlue SafeStainInvitrogenLC6060
Ni-NTA AgaroseQiagen1018240
Amicon Ultra Centrigual Filter Ultracel 30KMilliporeUFC902024
Pen StrepGibco15140-122
Polypropylen-Säulen (5 ml)Qiagen34964
Maximale Effizienz DH10Bac-BakterienInvitrogen10361-012
PureLink HiPure Plasmidfilter Midiprep KitInvitrogenK210015
ImidazolSigma-AldrichI2399-100Gfür Elutions- und Waschpuffer
Sf9-ZellenATCCCRL-1711
High Fivecells InvitrogenB85502

Referenzen

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Krammer, F., et al. A carboxy-terminal trimerization domain stabilizes conformational epitopes on the stalk domain of soluble recombinant hemagglutinin substrates. PLoS One. 7, e43603(2012).
  2. Krammer, F., Pica, N., Hai, R., Margine, I., Palese, P. Chimeric hemagglutinin influenza virus vaccine constructs elicit broadly-protective stalk-specific antibodies. J. Virol. , (2013).
  3. Leyva-Grado, V. H., Mubareka, S., Krammer, F., Cárdenas, W. B. Influenza virus infection in Guinea pigs raised as livestock, ecuador. Emerg. Infect. Dis. 18, 1135-1138 (2012).
  4. Margine, I., et al. H3N2 influenza virus infection induces broadly reactive hemagglutinin stalk antibodies in humans and mice. J. Virol. , (2013).
  5. Miller, M. S., et al. 1976 and 2009 H1N1 Influenza Virus Vaccines Boost Anti-Hemagglutinin Stalk Antibodies in Humans. J. Infect. Dis. 652, (1976).
  6. Pica, N., et al. Hemagglutinin stalk antibodies elicited by the 2009 pandemic influenza virus as a mechanism for the extinction of seasonal H1N1 viruses. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 109, 2573-2578 (2012).
  7. Sangster, M. Y., et al. The B cell response and hemagglutinin stalk-reactive antibody production in different age cohorts following 2009 H1N1 influenza vaccination. Clin. Vaccine Immunol. , (2013).
  8. Tan, G. S., et al. A pan-h1 anti-hemagglutinin monoclonal antibody with potent broad-spectrum efficacy in vivo. J. Virol. 86, 6179-6188 (2012).
  9. Ekiert, D. C., et al. Antibody recognition of a highly conserved influenza virus epitope. Science. 324, 246-251 (2009).
  10. Xu, X., Zhu, X., Dwek, R. A., Stevens, J., Wilson, I. A. Structural characterization of the 1918 influenza virus H1N1 neuraminidase. J. Virol. 82, 10493-10501 (2008).
  11. Stevens, J., et al. Structure of the uncleaved human H1 hemagglutinin from the extinct 1918 influenza virus. Science. 303, 1866-1870 (2004).
  12. Wei, C. J., et al. Comparative efficacy of neutralizing antibodies elicited by recombinant hemagglutinin proteins from avian H5N1 influenza virus. J. Virol. 82, 6200-6208 (2008).
  13. Krammer, F., et al. Trichoplusia ni cells (High Five) are highly efficient for the production of influenza A virus-like particles: a comparison of two insect cell lines as production platforms for influenza vaccines. Mol. Biotechnol. 45, 226-234 (2010).
  14. Palmberger, D., et al. Insect cells for antibody production: evaluation of an efficient alternative. J. Biotechnol. 153, 160-166 (2011).
  15. Santiago, F. W., Lambert Emo, K., Fitzgerald, T., Treanor, J. J., Topham, D. J. Antigenic and immunogenic properties of recombinant hemagglutinin proteins from H1N1 A/Brisbane/59/07 and B/Florida/04/06 when produced in various protein expression systems. Vaccine. 30, 4606-4616 (2012).
  16. Wrammert, J., et al. Broadly cross-reactive antibodies dominate the human B cell response against 2009 pandemic H1N1 influenza virus infection. J. Exp. Med. 208, 181-193 (2011).
  17. Treanor, J. J., et al. Protective efficacy of a trivalent recombinant hemagglutinin protein vaccine (FluBlok) against influenza in healthy adults: a randomized, placebo-controlled trial. Vaccine. 29, 7733-7739 (2011).
  18. Dalakouras, T., Smith, B., Platis, D., Cox, M., Labrou, N. Development of recombinant protein-based influenza vaccine. Expression and affinity purification of H1N1 influenza virus neuraminidase. J. Chromatogr. A. 1136, 48-56 (2006).
  19. Krammer, F., Grabherr, R. Alternative influenza vaccines made by insect cells. Trends Mol. Med. 16, 313-320 (2010).
  20. Gao, R., et al. Human Infection with a Novel Avian-Origin Influenza A (H7N9) Virus. N. Engl. J. Med. , (2013).
  21. Goff, P. H., et al. Induction of cross-reactive antibodies to novel H7N9 influenza virus by recombinant Newcastle disease virus expressing a North American lineage H7 subtype hemagglutinin. J. Virol. , (2013).
  22. Weldon, W. C., et al. Enhanced immunogenicity of stabilized trimeric soluble influenza hemagglutinin. PLoS One. 5, (2010).
  23. Dreyfus, C., et al. Highly conserved protective epitopes on influenza B viruses. Science. 337, 1343-1348 (2012).
  24. Steel, J., et al. Live attenuated influenza viruses containing NS1 truncations as vaccine candidates against H5N1 highly pathogenic avian influenza. J. Virol. 83, 1742-1753 (2009).
  25. Fouchier, R. A., et al. Avian influenza A virus (H7N7) associated with human conjunctivitis and a fatal case of acute respiratory distress syndrome. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 101, 1356-1361 (2004).
  26. Kost, T., Condreay, J., Jarvis, D. Baculovirus as versatile vectors for protein expression in insect and mammalian cells. Nat. Biotechnol. 23, 567-575 (2005).

Zugriff eingeschränkt. Bitte melden Sie sich an oder starten Sie eine Testversion, um diesen Inhalt anzuzeigen.

Nachdrucke und Genehmigungen

Genehmigung beantragen, um den Text oder die Abbildungen dieses JoVE-Artikels zu verwenden

Genehmigung beantragen

Schlagwörter

Hemagglutinin AufreinigungNeuraminidase CharakterisierungInfluenza H7N9 ProteineAffinit tschromatographieInsektenzellkulturSDS PAGE Western Blotrekombinante Proteinproduktionvirale Oberfl chenglykoproteineimmunologische Assays

Verwandte Artikel