Die Bioverfügbarkeit von Schadstoffen ist eine Voraussetzung für ihren effektiven biologischen Abbau im Boden. Die durchschnittliche Massenkonzentration eines Kontaminanten ist jedoch kein geeignetes Maß für seine Verfügbarkeit; Die Bioverfügbarkeit hängt vielmehr von dem dynamischen Zusammenspiel des potentiellen Stofftransports (Flusses) einer Verbindung zu einer mikrobiellen Zelle und der Fähigkeit dieser ab, die Verbindung abzubauen, ab. In wasserungesättigten Teilen des Bodens haben Myzelien gezeigt, dass sie Einschränkungen der Bioverfügbarkeit überwinden, indem sie organische Verbindungen aktiv über einen Zentimeterbereich transportieren und mobilisieren. Während das Ausmaß des Myzel-basierten Transports mit chemischen Mitteln leicht quantifiziert werden kann, erfordert der Nachweis der Schadstoff-Bioverfügbarkeit für Bakterienzellen eine biologische Methode. Um diese Einschränkung zu beheben, wählten wir das PAK-Fluoren (FLU) als Modellverbindung und entwickelten einen wasserungesättigten Modellmikrokosmos, der eine räumlich getrennte FLU-Punktquelle und das FLU-abbauende Bioreporter-Bakterium Burkholderia sartisoli RP037-mChe durch ein Myzelnetzwerk von Pythium ultimum verbindet. Da der Bioreporter eGFP als Reaktion des PAK-Flusses auf die Zelle exprimiert, könnte die bakterielle FLU-Exposition und der Abbau direkt im Mikrokosmos mittels konfokaler Laser-Scanning-Mikroskopie (CLSM) überwacht werden. CLSM- und Bildanalysen zeigten einen signifikanten Anstieg der eGFP-Expression in Gegenwart von P. ultimum im Vergleich zu Kontrollen ohne Myzel oder FLU, was auf die Bioverfügbarkeit von FLU für Bakterien nach Myzel-vermitteltem Transport hinweist. Die CLSM-Ergebnisse wurden durch chemische Analysen in identischen Mikrokosmen unterstützt. Der entwickelte Mikrokosmos erwies sich als geeignet, die Bioverfügbarkeit von Kontaminanten zu untersuchen und gleichzeitig die beteiligten Bakterien-Myzel-Wechselwirkungen sichtbar zu machen.