Hier dokumentieren wir die Verwendung des Soft-Agar-Koloniebildungsassays, um die Auswirkungen eines Peptidylarginin-Deiminase (PADI)-Enzyminhibitors, BB-Cl-amidin, auf die Tumorigenität von Brustkrebs in vitro zu testen.
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Methodenartikel
Nutzung der Koloniebildung in Weichagar-Assay auf Inhibitoren der Tumorigenität in Brustkrebs-Zellen zu identifizieren
In diesem Artikel
Zusammenfassung
Zusammenfassung
Angesichts der inhärenten Schwierigkeiten bei der Untersuchung der Mechanismen der Tumorprogression in vivo bleiben zellbasierte Assays wie der Soft-Agar-Kolonie-Formations-Assay (im Folgenden als Soft-Agar-Assay bezeichnet), der die Fähigkeit von Zellen misst, sich in halbfesten Matrizen zu vermehren, ein Markenzeichen der Krebsforschung. Ein wesentlicher Vorteil dieser Technik gegenüber herkömmlichen 2D-Monolayer- oder 3D-Sphäroid-Zellkultur-Assays ist die genaue Nachahmung der 3D-Zellumgebung mit der in vivo. Wichtig ist, dass der Soft-Agar-Assay auch ein ideales Werkzeug ist, um die Auswirkungen neuartiger Verbindungen oder Behandlungsbedingungen auf die Zellproliferation und -migration rigoros zu testen. Darüber hinaus ermöglicht dieser Assay die quantitative Bewertung des Zelltransformationspotenzials im Kontext genetischer Störungen. Wir haben kürzlich die Peptidylarginin-Deiminase 2 (PADI2) als potenziellen Biomarker und therapeutisches Ziel für Brustkrebs identifiziert. Hier unterstreichen wir den Nutzen des Soft-Agar-Assays für präklinische Anti-Krebs-Studien, indem wir die Auswirkungen des PADI-Inhibitors BB-Cl-Amidin (BB-CLA) auf die Tumorigenität von humanen duktalen Carcinoma in situ (MCF10DCIS)-Zellen testen.
Einleitung
Sowohl nicht transformierte (normale) als auch transformierte Zellen können sich in einer 2D-Monolayer-Kultur leicht vermehren. Diese Form des adhärenten Zellwachstums unterscheidet sich stark von derjenigen, die in vivo stattfindet, wo sich die Zellen in ihrer Mikroumgebung ohne mitogene Stimulation oft nicht schnell teilen. Der Soft-Agar-Assay hingegen unterscheidet sich von 2D-Kultursystemen, da er die Tumorigenität quantifiziert, indem er die Fähigkeit einer Zelle misst, sich zu vermehren und Kolonien in Suspension innerhalb eines halbfesten Agarosegelszu bilden 1. In dieser Umgebung sind nicht-transformierte Zellen nicht in der Lage, sich ohne Verankerung an der extrazellulären Matrix (ECM) schnell zu vermehren und durchlaufen eine Apoptose, ein Prozess, der als Anoikis bekannt ist. Im Gegensatz dazu verlieren Zellen, die eine maligne Transformation durchlaufen haben, ihre Verankerungsabhängigkeit aufgrund der Aktivierung von Signalwegen wie Phosphatidylinositol-3-Kinase (PI3K)/Akt und Rac/Cdc42/PAK. Daher sind diese Zellen in der Lage, innerhalb der halbfesten Weichagar-Matrix2 zu wachsen und Kolonien zu bilden.
Eine häufige Verwendung des Soft-Agar-Assays besteht darin, zu testen, ob bestimmte Verbindungen, wie z.B. PADI-Inhibitoren, in der Lage sind, das Tumorwachstum in vitro zu unterdrücken. Im Allgemeinen handelt es sich bei der Koloniezahl oder der Koloniegröße um quantitative Messwerte aus dem Assay, die zwischen Kontroll- und Behandlungsgruppen verglichen werden können, um Unterschiede in der zellulären Tumorigenität zu beurteilen. Wenn man also feststellt, dass die Koloniebildung umgekehrt mit zunehmender Wirkstoffkonzentration korreliert, dann könnte man daraus schließen, dass das Medikament in vitro ein wirksamer Inhibitor der Tumorigenität ist. Auf der anderen Seite, wenn das Medikament die Koloniebildung nicht beeinflusst, ist das Medikament entweder nicht in der richtigen Dosierung oder es ist kein wirksamer tumorigener Inhibitor. Neben der Verwendung eines Soft-Agar-Assays zum Testen der Anti-Tumor-Wirkung eines Medikaments kann dieser Assay auch verwendet werden, um die Beziehung zwischen einem bestimmten Gen und der Tumorgenese zu untersuchen. Zum Beispiel kann der Effekt der Unterdrückung der PADI2-Expression auf die Tumorigenität durch eine PADI2-spezifische siRNA-Behandlung behoben werden.
PADIs sind calciumabhängige Enzyme, die Proteine posttranslational modifizieren, indem sie positiv geladene Argininreste in neutral geladenes Citrullin in einem Prozess umwandeln, der als Citrullinierung oder Deiminierung3-5 bekannt ist. Wir haben kürzlich herausgefunden, dass Peptidylarginin-Deiminase 2 (PADI2) als neuartiger Brustkrebs-Biomarker fungieren kann und dass PADI-Inhibitoren Therapiekandidaten für Brustkrebs im Frühstadium darstellen6. Zum Beispiel haben wir bereits gezeigt, dass ein "pan-PADI"-Inhibitor, Cl-Amidin, die Proliferation von Brustkrebszellen mit Hilfe von 2D-Monolayern unterdrückt und dass der Inhibitor das Wachstum von 3D-Tumorsphäroiden unterdrückt6. In diesem Bericht erweitern wir diese Studien und heben den Nutzen des Soft-Agar-Assays hervor, indem wir die Wirksamkeit eines neuen PADI-Inhibitors, BB-CLA, bei der Unterdrückung des Wachstums von MCF10DCIS Brustkrebskolonien testen7. Wir stellen fest, dass wir MCF10DCIS Zellen für dieses Experiment verwendet haben, da es sich um onkogene Derivate von nicht transformierten humanen MCF10A-Zellen handelt und weil sie hohe Steady-State-Spiegel des PADI2-Proteins8 enthalten. Wir vermuten, dass die enzymatische Aktivität von PADI2 eine Schlüsselrolle bei der Tumorigenität dieser Zelllinie spielt und dass die BB-CLA-vermittelte Hemmung der PADI2-Aktivität das Fortschreiten der Krebserkrankung unterdrückt
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Protokoll
1. Herstellung von 3% 2-Hydroxyethyl Agarose
- In einem sauberen, trockenen 100 ml-Glasflasche, fügen Sie 0,9 g 2-Hydroxyethyl Agarose (Agarose VII), gefolgt von 30 ml destilliertem Wasser.
- Mikrowelle die Mischung für 15 Sekunden und leicht schwenken. Wiederholen Sie diesen Schritt mindestens drei weitere Male, bis die Agarose-Pulver vollständig auflöst.
- Autoklavieren der Lösung enthaltende Flasche für 15 min.
- Lassen Sie die Agarose-Lösung auf RT vor der weiteren Verwendung abkühlen. Bewahren Sie die Lösung bei RT.
2. Herstellung der Unterschicht: 0,6% Agarosegel
- Vorwärmen mehrere 5 ml und 10 ml-Pipetten in einem Inkubator bei 37ºC, um die Agarose erstarrt in der Pipette bei der Handhabung zu verhindern.
- Teilweise lösen Sie die Flaschendeckel und Mikrowelle die vorgefertigten 3% 2-Hydroxyethyl Agarose-Lösung für 15 Sekunden. Dann sanft schwenken Sie die Lösung und Mikrowelle für weitere 15 sec. ACHTUNG: Seien Sie vorsichtig beim Schwenken des agarose Lösung, da die Lösung erhebt sich an der Luft und können überschwappen.
- Wenn es Rest festes Gel in der Flasche, Mikrowelle für ein paar Sekunden.
- Halten Sie die Flasche mit der Agarose-Lösung in einem 45 ° C Wasserbad während der nächsten Schritte, um die Agarose-Lösung verfestigt vorzeitig zu verhindern.
- Warm MCF10DCIS Medien in einem 37 ° C Wasserbad. Anmerkung: MCF10DCIS Medien besteht aus DMEM / F12, 5% Pferdeserum, 5% Penicillin-Streptomycin.
- Übertragungs 3 ml der 3% igen Lösung unter Verwendung der vorgewärmten Pipetten in einem sterilen 50 ml konischen Röhrchen.
- Sofort im 12 ml warmem MCF10DCIS Medien und vorsichtig umdrehen das konische Röhrchen, um die Agarose mit den Medien zu mischen. Versuchen Sie nicht, alle Blasen zu bilden, wie es mit der Koloniezahl später stören.
- Vorsichtig 2 ml dieser Mischung in jede Vertiefung einer 6-Well-Kulturplatte hinzufügen, ohne die Bildung von Luftblasen.
- Inkubieren Sie die 6-well-Kulturplatte horizontally auf einer flachen Oberfläche bei 4 ° C für 1 Stunde, damit die Mischung zu verfestigen.
- Nachdem die Mischung sich verfestigt, legen Sie die Platte in einem 37 ° C Inkubator für 30 Minuten. Die untere Schicht ist jetzt einsatzbereit.
3. Herstellung der zellhaltigen Schicht: 0,3% Agarosegel
- Trypsinize MCF10DCIS Zellen und verdünnen, um eine Zellkonzentration von 4 x 10 4 / ml.
- Nehmen Sie 2 ml der 3% igen mit vorgewärmten Pipetten und Überführung in eine sterile 50 ml konischen Röhrchen.
- Sofort an den konischen Rohr 8 ml MCF10DCIS Medien und vorsichtig umdrehen, um die Agarose mit den Medien zu mischen. Vermeiden Sie bilden keine Blasen.
- Nehmen Sie 2 ml der MCF10DCIS Zellen (4 x 10 4 / ml) und behandle mit BB-CLA (0 uM (DMSO) oder 1 & mgr; M).
- In einem 1: 1-Verdünnung, Mischen der Zellen mit 0,6% Agarose.
- Nimm 1 ml der Zelle-Agarose-Mischung und schonend hinzuzufügen auf die untere Schicht der 6-Well-Kultur pspät (2 x 10 4 Zellen / ml).
- Platzieren Sie die 6-well-Kulturplatte horizontal auf einer flachen Oberfläche bei 4 ° C für mindestens 15 Minuten, damit die obere Schicht zu verfestigen.
- Nachdem die Mischung sich verfestigt, legen Sie die Platte in einem 37 ° C Inkubator für eine Woche vor der Zugabe des Fütterungsschicht.
4. Vorbereitung der Feeder-Schicht: 0,3% Agarosegel
- Mikrowelle die vorgefertigten 3% 2-Hydroxyethyl Agarose-Lösung für 15 Sekunden. sanft schwenken Sie die Lösung und Mikrowelle für weitere 15 sec.
- Äquilibrieren Sie die Agarose-Lösung Flasche in einem 45 ° C Wasserbad.
- Wärmen Sie die MCF10DCIS Medien in einem 37 ° C Wasserbad.
- Mix 1 ml 3% Agarose-Lösung mit 9 ml warmem MCF10DCIS Medium in einem 50 ml konischen Röhrchen und vorsichtig umgedreht, um die Agarose zu den Medien mischen. Vermeiden Sie Luftblasen bilden.
- Behandlung der Mischung mit BB-CLA (0 & mgr; (DMSO) oder 1 & mgr; M).
- Vorsichtig 1 ml dieser Mischung (ohne fürming Blasen) in jedes Well der 6-Well-Kulturplatte, die den Boden und weichen Schichten.
- Platzieren Sie die 6-well-Kulturplatte horizontal auf einer flachen Oberfläche bei 4 ° C für mindestens 15 min, die Mischung zu verfestigen.
- Nachdem der Feeder-Schicht erstarrt, legen Sie die Platte in einem 37 ° C Inkubator.
- Wiederholen Sie diese Prozedur Zufuhr wöchentlich durch Überlagerung von 1 ml 0,3% Agarose / mittel / Behandlungslösung auf den vorhandenen Futterschicht, um die Zellen mit neuen Medien aufzufüllen, bis die Koloniebildung beobachtet. Hinweis: Agar in den weichen und Feeder-Schichten sehr weich ist, und daher wird die zugesetzten Nährstoffe aus der Feeder-Schicht leicht in die Zellen enthaltende Schicht diffundieren, um die Zellen zu erreichen.
5. Data Collection
- Nach 2,5 Wochen Zellwachstum in dem weichen Agar, zählen die Anzahl der Kolonien in jeder Vertiefung unter Verwendung eines Lichtmikroskops. Um eine Quantifizierung zu ermöglichen, drucken Sie ein Raster auf eine Transparenz und befestigen Sie das Raster, um die6-Well-Platte, um zu lokalisieren, wo die Zellen während der Zählung sind. Da Koloniegröße (wie durch den Durchmesser jeder Kolonie quantifiziert) variiert vordefinieren eine Referenzkoloniegröße zu bestimmen, welche Kolonien erzielt wird. Beispielsweise umfassen Koloniegrößen von 70 um oder in der Datenanalyse größer.
- Lagern die Proben bei 4 ° C weiter Koloniebildung und für zukünftige Zählung zu verhindern. Verschließen Sie den 6-Well-Kulturplatte mit Parafilm, um die Gele vor dem Austrocknen zu verhindern.
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Ergebnisse
Die Koloniebildung in Weichagar-Assay kann für eine breite Palette von Anwendungen dokumentieren die Tumorigenität von Krebszellen verwendet werden. Ein Hauptvorteil dieser Technik ist, dass die halbfeste Matrix selektiv begünstigt das Wachstum von Zellen, die in einem verankerungsunabhängigen Weise vermehren können. Diese Eigenschaft wird hauptsächlich durch die Krebszellen, aber nicht von normalen Zellen zeigten. Verwendet werden vor allem diese Technik, um die Wirksamkeit der Hemmung des Tumorwachstums durch Medikame...
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Diskussion
Die Rate der Koloniebildung in Weichagar in Abhängigkeit von dem Zelltyp 9 abhängig. Daher ist die Anzahl von Zellen mit zu optimieren und entsprechend angepasst werden starten. Eine vorgeschlagene Startbereich liegt zwischen 5 x 2 bis 01 Oktober x 10 4 Zellen pro Vertiefung unter Verwendung einer 6-Well-Platte. Außerdem variiert Koloniegröße von der Wachstumsrate jeder Zelle abhängig. Daher wird ein vordefinierter ein cut-off für die Koloniegröße erforderlich, um einzelne Kolonien für n...
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Offenlegungen
Die Autoren haben nichts offenzulegen.
Danksagungen
Wir danken Dr. Richard Cerione, Dr. Marc Antonyak und Kelly Sullivan, Cornell University, für ihre technische Beratung, und Dr. Gerlinde Van de Walle, Cornell University, für die Bereitstellung ihres Olympus CKX41 inversen Mikroskops.
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Materialien
| Name | Unternehmen | Katalognummer | Kommentare |
|---|---|---|---|
| Zeiss Axiopot | Carl Zeiss Mikroskopie | 1021859251 | |
| Inverses Mikroskop | Olympus | CKX41 | |
| DMEM/F-12 | Lonza BioWhittaker | 12-719F | |
| HyClone Donor Equine Serum | Fisher Scientific | SH30074.03 | |
| Penicillin Streptomycin | Life Technologies | 15140-122 | |
| 2-Hydroxyethylagarose: Typ VII, niedrige Geliertemperatur | Sigma-Aldrich | 39346-81-1 |
Referenzen
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- Horibata, S., Coonrod, S. A., Cherrington, B. D. Role for peptidylarginine deiminase enzymes in disease and female reproduction. J Reprod Dev. 58 (3), 274-282 (2012).
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Nachdrucke und Genehmigungen
