Auslassen von Multi-Exon-Verwendung Cocktail Antisense-Oligonucleotiden in der Canine X-chromosomal-Muskeldystrophie

Zusammenfassung

Exon-Skipping ist derzeit vielversprechendsten Therapieoption für Duchenne-Muskeldystrophie (DMD). Um die Anwendbarkeit für DMD-Patienten zu erweitern und die Stabilität / Funktion der resultierenden verkürzten Dystrophin-Proteine, ein Multi-Exon-Skipping-Ansatz Cocktail Antisense-Oligonukleotide wurde zur Optimierung entwickelt und wir zeigten systemische Dystrophin-Rettung in einem Hundemodell.

Zusammenfassung

Duchenne - Muskeldystrophie (DMD) ist eine der häufigsten tödlichen genetischen Krankheiten weltweit, verursacht durch Mutationen im Dystrophin (DMD) Gen. Exon-Skipping beschäftigt kurze DNA / RNA-ähnliche Moleküle, so genannte Antisense-Oligonukleotide (AON), die den Leserahmen wiederherzustellen und produzieren kürzer, aber funktionelle Proteine. Allerdings Exon-Skipping-Therapie steht vor zwei großen Hürden: begrenzte Anwendbarkeit (bis zu nur 13% der Patienten können mit einem einzigen AON Medikament behandelt werden), und unsichere Funktion der verkürzte Proteine. Diese Fragen wurden mit einem Cocktail AON Ansatz adressiert. Während etwa 70% der DMD-Patienten durch einzelne Exon-Skipping (alle Exons kombiniert) behandelt werden können, könnte man möglicherweise mehr als 90% der DMD-Patienten zu behandeln, wenn multiple Exons unter Verwendung von Antisense-Medikamenten Cocktail Überspringen realisiert werden kann. Der Eckzahn X-chromosomal-Muskeldystrophie (CXMD) Hundemodell, dessen Phänotyp ist ähnlich dem menschlichen DMD-Patienten wurde verwendet, um die systemische effic zu testenACY und Sicherheit des Überspringens Multi-Exon der Exons 6 und beherbergt 8. CXMD Hundemodell zu einem Mangel an Exon 7 in Dystrophin - mRNA eine Spleißstelle Mutation in Intron 6, führt. Zur Wiederherstellung erfordert das Leseraster in CXMD Multi-Exon-Skipping der Exons 6 und 8; Daher ist CXMD ein gutes mittelgroße Tiermodell die Wirksamkeit und Sicherheit von Skipping Multi-Exon zum Testen. In der aktuellen Studie, ein Cocktail von Antisense-Morpholinos Targeting Exon 6 und Exon 8 wurde entwickelt, und es restauriert Dystrophin-Expression in Körper-weiten Skelettmuskulatur. Verfahren zur Transfektion / Injektion von Cocktail-Oligos und Bewertung der Wirksamkeit und Sicherheit von Multi-Exon-Skipping im CXMD Hundemodell vorgestellt.

Einleitung

Duchenne - Muskeldystrophie (DMD) ist eine X-chromosomal - rezessiv Muskelerkrankung , die durch progressive Muskelschwäche gekennzeichnet, beschrieben zuerst von Dr. Guillaume-Benjamin-Amand Duchenne (de Boulogne) ^1. DMD ist eine gemeinsame etwa 1 in 3500 Jungen beeinflussen genetische Erkrankung weltweit, mit rund 20.000 betroffenen Kinder pro Jahr geboren ^2,3. Die motorische Entwicklung verzögert und Gangstörungen sind in der frühen Kindheit ^4, gefolgt von Rollstuhlabhängigkeit bei etwa den frühen Teenager gesehen. Der Tod tritt in der Regel im Alter zwischen 20 und 30 aufgrund von Atemwegs- oder Herzversagen ^5-8. Es gibt derzeit keine Heilung für DMD. Behandlung mit Glucocorticoiden kann das Fortschreiten der Muskeldegeneration zu einem gewissen Grad verlangsamen aber mit erheblichen Nebenwirkungen, wie Adipositas und Diabetes mellitus ^2,7,8 assoziiert ist. DMD resultiert aus Mutationen im Dystrophin (DMD) -Gen, mit einem Verlust von funktionellen Dystrophin protei führendenn. DMD ist ein extrem großes Gen mit über 2 Millionen Basenpaaren und 79 Exons ^9,10. Löschen, Blödsinn und Vervielfältigung Mutationen führen zu Out-of-frame-Mutationen sind die häufigste Ursache für die DMD-Phänotyp. Die Regionen der Exons 3 bis 9 und Exons 45-55 sind "Mutation Hotspots" bezeichnet , da die meisten Patienten Deletionsmutationen innerhalb dieser Abschnitte des Gens, was zu einer nichtfunktionellen Dystrophin in DMD - Patienten ^3,9,11-16. Dystrophin Funktionen innerhalb des Dystrophin-Glykoprotein-Komplex (DGC), die eine wichtige Rolle bei der Muskelmembranstabilisierung aufweist. Die N- und C-Termini sind die wichtigsten Bereiche für die Funktion, während der zentrale Stab Domäne eine weniger wichtige Rolle spielt ^3,9,17. Die Einhaltung eines milden Phänotyp im Zusammenhang mit Becker - Muskeldystrophie (BMD), die vor allem ergibt sich aus in-frame - Mutationen innerhalb des DMD - Gens, inspiriert die Anwendung von Exon zur Behandlung von DMD - Skipping. BMD-Patienten haben eine verkürzte, aber functional, Dystrophin - Protein , die beide Enden ^3,6,18 hält. Exon - Skipping, in der Theorie kann das Leseraster wiederherstellen, was zu einer verkürzten , aber funktionelle Dystrophin - Proteine ​​ähnlich denen in BMD ^3,19 gesehen.

Mehrere Arten von Antisense-Oligonukleotide (AON) wurden in klinischen Studien, einschließlich 2'O- methyliert Phosphorothioate (2'OMePS) und Phosphordiamidat Morpholino-Oligomere (PMOs) getestet. Auslassen von Exons 51 und 53 diese AONs verwendet wurde geprüft und während Ergebnisse vielversprechend sind, hat Single-Exon - Skipping Anwendbarkeit begrenzt, da es mutationsspezifischen ^{3, 19, 20,21, 22-26.} Fragen bleiben auch über die Stabilität der resultierenden verkürzten Dystrophin - Proteine ​​produziert von Single-Exon ^22,23 überspringen. Zusätzlich erfordern einige Patienten mehr als ein einziges Exon , um den Leserahmen ³ zur Wiederherstellung übersprungen werden. Während technisch schwieriger, ist Multi-Exon-Skipping eine Methode, dieAdresse konnte diese Probleme ^3,19. Multi-Exon - Skipping hat in dystrophen Hunde- und menschlichen Zelllinien in vitro gezeigt , vorher. Zusätzlich studiert mdx52 Maus und Hunde - X-chromosomal - Muskeldystrophie (CXMD) Hundemodelle für in vivo verwendet wurden , ^{22, 24-27.} Canine X-chromosomal - Muskeldystrophie Japan (CXMD _J) Beagles hier verwendet wurden, da der Leserahmen von CXMD _J kann durch Multi-Exon - Skipping des Exons 6 und 8, oder zusätzliche Exons (zB Exons 3 bis 9) wiederhergestellt werden (Abbildung 1). Beagle-basierte CXMD teilt die gleiche Mutation Muster wie die Golden Retriever - Muskeldystrophie (GRMD) Modell, aber Beagles sind kleiner und billiger zu halten aufgrund ihrer Körpergröße, wodurch ein nützliches Modell für DMD ^28,29 bereitstellt. CXMD Hunde imitieren stärker den menschlichen DMD - Phänotyp als kleinere Tiermodellen, wie Nagetieren und sind zuverlässiger für die toxikologische Bewertung ^3,22,30,31 (Abbildung 2). CXMD Hunde zeigen progressive Muskel Verfall, Gangstörungen und Herz-und Atemprobleme ähnlich wie bei DMD gesehen. Verglichen mit Einzel-Exon-Skipping, ist Multi-Exon-Skipping zu einem viel größeren Anteil der Patienten anwendbar. Unter den drei häufigsten Mutationstypen (Deletionen, Unsinn, und Doppelungen), 80 bis 98% der Patienten , Multi-Exon - Skipping werden könnte ^14,32,33 behandelt durch, während 45% aller DMD - Patienten von speziell Skipping Exons profitieren könnten 45 - 55 ^3,19,22,34.

Mit der Entwicklung von modifizierten Morpholinos, die Effizienz der AON-Cocktails auf Exon-Skipping zu erleichtern hat sich verbessert. Arginin-reichen zellpenetrierendes Peptid-konjugierte PMOs (PPMOs) und vivo-Morpholinos (vPMOs) sind AON Chemien , die deutlich zellpenetrierendes Fähigkeit und Stabilität ^3,35-38 verbessert haben. Sorge bereitet weiter langfristige AON Toxizität; jedoch erhebliche Fortschritteist gemacht worden. Chemische Modifikationen an Morpholinos stark Nebeneffekte zu verringern und präklinischen Studien haben keine signifikanten toxischen Wirkungen ^3,22,39,40 berichtet. Eine verbleibende Herausforderung für Multi-Exon - Skipping ist der Strombedarf für jeden einzelnen AON für Toxizitäts allein getestet werden, als ein einziges Medikament, statt zusammen als ein Cocktail ^{3,19,22,41,42.} In DMD Studien sowohl Einzel- als auch Multi-Exon-Beteiligung an das Herz gezielt Skipping, hat es wenig Verbesserung in der dystrophischen Herzgewebe gewesen. Die Wirksamkeit von Morpholinos im Herzen wird vermutet, gering zu sein wegen der schlechten zellpenetrierendes Fähigkeit. Peptid-konjugiertes PPMOs haben die Fähigkeit von AONs verbesserte Herzzellen eindringen, um die Menge an funktionellen Dystrophin - Protein im Herzen ^3,19,38 gerettet erhöht.

Hier unsere AON Cocktail Ansatz wird ausführlich diskutiert, einschließlich der Gestaltung von AON - Sequenzen mit ESEfinder Software ^43. Protocols für Hunde Experimente mit Skipping Multi-Exon werden ebenfalls beschrieben. CXMD _J Beagles wurden für die Exons 6 und 8 Überspringen Experimente verwendet. Multi-Exon in dem CXMD Hundemodell Überspringen zeigt vielversprechende Ergebnisse, aber Herausforderungen bleiben, dass müssen überwunden werden, bevor sie klinisch anwendbar sind.

Protokoll

Alle Protokolle unten aufgeführt sind in Übereinstimmung mit den Tierpflege Richtlinien des National Center für Neurologie und Psychiatrie (NCNP) in Japan dargelegt. Alle Experimente wurden von der Institutional Animal Care und Use Committee des NCNP genehmigt.

1. Design von Antisense-Oligos

1. Verwenden Rettung ESE und ESEfinder Programme ESE - Sites ^{44, 45-47} zu erkennen.
2. Design 25 Basenpaare (bp) Sequenzen, die Exons Antisense sind, die ausgerichtet werden sollen. Target Exons 6 und 8 im Hundemodell (Abbildung 1).
   1. Verwenden Sie 25 bis 30 bp - Sequenzen für PMOs (Tabelle 1) bzw. 25 bp für 2'OMePS. Bis 25 bp-Sequenzen entwerfen, Auswahl-Sequenzen, die im Zielbereich sind. Betrachten Sekundärstruktur, die Vermeidung von Heterodimeren, Exon Splicing - Enhancer - Motive, und GC - Gehalt stabile Sequenzen ⁴³ zu schaffen. AONs sollte, wie durch die oben erwähnten sof identifizierten mindestens einer der ESE Seiten Zieltware.
   2. Wählen AONs mit einem GC-Gehalt, die weniger als 65% beträgt, mit weniger als 4 aufeinanderfolgende 'G, und enthalten keine selbst-komplementären Sequenzen. Verwenden Sie NCBI Explosion Software Off-Target - Glühen Websites ^22,48,49 zu prognostizieren.
3. Wählen Sie eine geeignete Rückgrat Chemie AON. Für In - vitro - Experimente verwenden 2'O--methyl - Oligonukleotide (2'OMePS) oder Morpholinos. Für die in vivo Experimenten verwenden 2'OMePS, Morpholinos oder vPMOs. ^3,19,48,50

2. In - vitro - Experimente (Exons 6 und 8 Skipping im CXMD Model)

1. 2'OMePS Transfektion von Dog Myoblasten
   1. Kultur CXMD Myoblasten in 3 ml Wachstumsmedium in 6-Well-Platten. Samen von 1 bis 5 x 10 ³ Zellen / cm ² mit 0,5 ml / cm ² von Medium für Myoblasten. Für das Wachstumsmedium verwenden Dulbeccos modifiziertem Eagle-Medium (DMEM) mit 10% fötalem Rinderserum (FBS) und 1%Penicillin / Streptomycin (P / S) ^40.
   2. Inkubieren bei 37 ° C, bis 60 bis 80% konfluent. Dies dauert etwa 12 bis 24 Stunden.
   3. Verdünnte ein kationisches Liposom Transfektionsmittel auf insgesamt 100 & mgr; l in reduziertem Serum - Medium (2: 1 - Verhältnis Transfektionsmittel: AONs, beispielsweise 10 & mgr; l Lipofectin vs. 5 ug AONs). Lassen Sie Mischung bei RT stehen für 30 - 45 min.
   4. Verdünnte AONs (2'OMePS oder Morpholino) zu einem Endvolumen von 100 & mgr; l in reduzierten Serummedium.
   5. Kombinieren Sie das verdünnte Transfektionsmittel mit verdünnter AONs und Inkubation bei RT 10 - 15 min.
   6. Während das Transfektionsmittel / AON Mischung bei RT sitzt, alte Medien von Zellen durch Absaugen entfernen und die Zellen mit den Medien zu waschen.
   7. In 0,8 ml Medium zur Transfektionsagens / AON Mischung und fügen Sie dann die gesamte Lösung auf die frisch gewaschenen Zellen. bei 37 ° C für 3 h inkubiert.
   8. Nach Inkubation ersetzen Medien mit differentiatIonen-Medien (DM); Differenzierung kann bis zu 10 Tage in Anspruch nehmen. Überprüfen Sie, ob die Differenzierung bei etwa aufgetreten 3. Tag beginnt die Differenzierung Medien DMEM mit 2% Pferdeserum, 200 U / ml Penicillin, 200 mg / ml Streptomycin und 10 ug / ml Insulin.
2. Morpholino Transfektion von Dog Myoblasten
   1. Kultur CXMD Myoblasten in einem Wachstumsmedium als 2.1 in Schritt beschrieben.
   2. Wechseln Sie in den Differenzierungsmedium (DM), und fügen Sie 0,1 mM Lager Morpholin zu jeder Vertiefung auf die Endkonzentration 1 uM machen. Wärme Cocktail Morpholinos bei 65 ° C für 10 min vor der Transfektion oder Injektion AON-Aggregation zu vermeiden. Hinzufügen ein Peptid Liefer Reagenz ^39,51 und stellen bis zu einer Endkonzentration von 3 bis 6 & mgr; M.
   3. Nach 16 bis 48 Stunden Inkubation sammeln Zellen zur RNA-Extraktion. 1 ml Säure Guanidiniumthiocyanat-Phenol-Chloroform zu den Zellen Zellen von der Platte zu lösen. Führen RNA extraction nach diesem Schritt.
      1. Alternativ fügen Trypsin so, dass sie alle Zellen bedeckt und bei 37 ° C für 2 min inkubiert.
         Hinweis: Wenn Immunochemie ausführen wollen, verwenden chambered Deckgläser für die Kultivierung. Nach der Differenzierung können Zellen Paraformaldehyd (PFA) (4% für 10 min) festgelegt werden.
3. RNA - Extraktion und Reverse - Transkriptase - Polymerase - Kettenreaktion (RT-PCR)
   1. Sobald Zellen in Myotuben differenziert sind, entfernen Medium und 1 ml Säure Guanidiniumthiocyanat-Phenol-Chloroform; 10 min bei RT inkubiert.
   2. Transfer zum 1,5-ml-Röhrchen. Kombinieren Sie mit 200 ul Chloroform und Inkubation bei RT für 2 min bis drei separate Schichten zu sehen ist. Die drei Schichten von oben nach unten sind: ein RNA-Schicht, eine DNA-Schicht und eine Proteinschicht.
   3. Zentrifuge bei 12.000 × g für 15 min bei 4 ° C. Entfernen Sie die obere Schicht Überstand und in einem Rohr mit 500 & #181; l Isopropanol (wenn hier zu stoppen, speichern Sie den Überstand bei -80 ° C). Zentrifuge der Überstand bei 12000 × g für 10 min bei 4 ° C; nach dem Zentrifugieren, halten Sie die resultierende RNA-Pellet und den Überstand verwerfen.
   4. Waschen des Pellets mit Ethanol und Zentrifugation bei 8.000 xg für 5 min bei 4 ° C. Dampfe restliche Ethanol durch das Rohr 15 min Umkehren und fügen Sie dann 15 - 30 & mgr; l RNase-freiem Wasser. Quantifizieren von Gesamt-RNA-Konzentration unter Verwendung von US / VIS-Spektroskopie bei 260 nm.
   5. Kombinieren Sie die benötigten Reagenzien für eine RT-PCR-Reaktion: 1,5 ul 10 uM Vorwärtsprimer, 1,5 ul 10 uM Reverse-Primer, 1 & mgr; l dNTP, 5 ul Ein-Schritt-PCR-Kit-Puffer, 0,7 ul RNase-Inhibitor, 1 & mgr; l Enzymgemisch aus ein- Schritt-PCR-Kits und 200 ng RNA. Nachdem diese gemischt wurden, Wasser bis zu einem Endvolumen von 25 & mgr; l hinzuzufügen.
   6. Platzieren Mischung in einem Thermocycler. Führen Sie einen 30 Minuten-Zyklus bei 50 ° C, 15 min0; Zyklus bei 95 ° C, dann 35 Zyklen von 94 ° C für 1 min, 60 ° C für 1 min und 72ºC für 1 min. Schließlich eine 10 min Zyklus bei 72 ° C laufen. Store-PCR-Produkt in einem Kühlschrank bei 4 ° C oder -20 ° C
4. Komplementäre DNA (cDNA) Sequencing
   1. Identifizieren Exon 6 - 9-übersprungenen Bänder mit Agarose-Gelelektrophorese. Last 5 & mgr; l jeder Probe in die Vertiefungen eines 1,5% igen Agarosegel laufen 135 V durch das Gel für 5 min und dann 120 V für 20 min. Als nächstes für 30 Minuten das Gel in der DNA-Gel-Färbung bei RT inkubiert. Visualisieren Sie die Bänder mit Imaging-Software.
   2. Excise die Band von Interesse ein Gel-Extraktions-Kits verwenden.
      1. Excise das DNA-Fragment und solubilisieren die Gelschnitte unter Verwendung von 200 & mgr; l NTI / 100 mg Gel. Lassen Sie diese für 5 bis 10 min in einem C-Wasserbad 50 ° sitzen. Dann übertragen Membranschlauch auf Kieselsäure.
      2. Zentrifuge bei 11.000 g für 30 Sekunden. Waschen Sie zweimal mit 700 & mgr; l NT3 Puffer vor centrifuging erneut bei 11.000 xg für 30 sec.
      3. Trocknen Sie die Silica-Membran durch bei 11.000 × g für 1 min zentrifugiert.
      4. Hinzufügen von 15 bis 30 & mgr; l Puffer NE und lassen es bei RT für 1 min zu sitzen. Dann wird bei 11.000 × g für 1 min zentrifugiert. Entfernen Sie das Kieselgel und halten Sie den Inhalt in die Röhre.
   3. Verwenden, um eine Sequenzierungs-Kit die Sequenz gemäß dem Protokoll des Herstellers zu bestimmen.

3. intramuskulär oder Open Muscle Biopsy

1. Für die Versorgung der sterilen Bedingungen während Überleben Chirurgie, entfernen Haarschneider im Bereich der Operationsstelle umgibt (das Hinterbein) verwenden. Verwenden Sie Jodophoren oder Chlorhexidin als Desinfektionsmittel. Verwenden sterilen Tüchern für die Operationsstelle, indem sie und über das gesamte Tier und dem Operationstisch zu sichern.
   1. Tragen Sie saubere Peelings, Gesichtsmasken, Kopfbedeckung, sterile Handschuhe und spezielle Schuhe für den Operationssaal ^52,53.
   2. Injizieren CXMD Hunde mit 20 mg / kg Thiopental-Natrium, sie zu betäuben. Verwenden Tierarzt Salbe auf die Augen, die Augen vor dem Austrocknen zu verhindern.
   3. Verwenden von 2 bis 3% Isofluran Inhalations Narkose (3) zu halten. Überprüfen Muskelreflexe und überwachen Herz und Atemfrequenz der Narkosetiefe zu bewerten. Die normale Atemfrequenz (RR), Herzfrequenz (HR) und SpO ₂ unter Vollnarkose sind wie folgt: RR: 10 - 20 Atemzüge / min; SpO _2: 95-100%, HR: 80 - 120 Schläge pro Minute (bpm).
   4. Mit einem Skalpell, schneiden Sie die Haut über der Schädel Tibia (CT), die auch als tibialis anterior (TA) bekannt ist, und einen einzigen Schnitt machen etwa 5 cm in Längsrichtung (für junge erwachsene Hunde). Um die Injektionsstellen, stich die tiefe Faszie mit einer chirurgischen Nadel und chirurgischen Faden markieren und zwei Maschenmarkierer in 2 cm Abständen machen.
   5. Injizieren Sie die gewünschte Konzentration von AONs in den Muskel mit einer 27 G-Nadel. Die gewünschte Konzentration variiert zwischen den Bedingungen der Behandlung. Für CT, geben zwei Injektionen von 1 ml Volumen jeder, für insgesamt 1,2 mg Cocktail PMOs (0,4 mg je PMO) oder 0,4 mg Cocktail vPMOs (0,13 mg je vPMO). Für die extensor carpi ulnaris (ECU) forelimb Muskel injizieren zwei Volumen von 0,5 ml jeder für insgesamt 1,2 mg Cocktail PMOs (0,4 mg je PMO) oder 0,4 mg Cocktail vPMOs (0,13 mg je vPMO). Lassen Sie die Nadel in 1 min. Verwenden Sie die gleiche Menge von jedem AON für den Cocktail.
   6. Führen Sie offene Muskelbiopsie durch ein Stück Muskelgewebe etwa 2 cm in der Länge von CT Muskel mit einem chirurgischen Skalpell entfernen.
   7. Go 6.5 für Muskelprobenvorbereitung Schritt.
   8. Unter Verwendung einer Nadel, zu verwalten eine intramuskuläre Injektion von 0,02 mg / kg Buprenorphinhydrochlorid vor von Narkose erwacht. Legen Sie Muskelfaszie und die Haut wieder über Muskel-und nähen diese eine 3-0 resorbierbaren Fäden und 3-0 Nylon für Muskelfaszie und Hautverschluss Faden, JEWEILIGENely.
   9. Halten Sie bestimmen den Mund offen, ob der Würgereflex zurückgekehrt ist; wenn der Würgereflex zurückgekehrt ist, extubieren den Hund.
   10. Administrieren 15 bis 30 mg / kg Cefazolin oder Cephalexin (Antibiotika) für bis zu 3 Tage durch intravenöse oder intramuskuläre Injektion Infektion zu verhindern.
   11. Entfernen Nähte innerhalb von sieben Tagen. Nicht der Hund unbeaufsichtigt lassen, bis es genügend Bewusstsein zu halten Brustlage und nicht zulassen, den Hund mit anderen Tieren zu interagieren, bis eine vollständige Genesung wird wiedergewonnen hat. Halten Sie die Endotrachealschläuche an Ort und Stelle so lange wie möglich und sie zu entfernen, wenn das Tier zu kauen oder schlucken beginnt. Überwachen Sie die Herzfrequenz des Tieres, Atmung und Feuchtigkeit, um sicherzustellen, sie sind stabil und innerhalb der normalen Grenzen.
   12. Für postoperative Pflege, bieten Analgesie für 3 Tage (zB Buprenorphin 0,01 mg / kg) und Pflegeunterstützung, einschließlich einer ruhigen, dunklen Ruhestätte, entsprechende Wunde und Verband Wartung, einem weichenAuflagefläche, Rehydrierung mit oralen oder parenteralen Flüssigkeiten und eine Rückkehr zu normalen Fütterung durch die Verwendung von sehr schmackhaften Speisen oder Leckereien. Wenn irgendwelche Tiere die zusätzliche Medikation erfordern, eine intramuskuläre Injektion von 0,3 mg / kg Butorphanoltartrat geben auf die Schmerzsymptome ab.
       Hinweis: Hunde in Schmerz kann beißen, kratzen, oder schützen schmerzhaften Regionen, und wenn behandelt, kann ungewöhnlich ängstlich oder aggressiv. Darüber hinaus Schmerzen in einem Glied führt in der Regel Hinken oder Halte-up der betroffenen Extremität mit Versuchen, es zu benutzen. In solchen Situationen kann eine intramuskuläre Injektion von 0,02 mg / kg Buprenorphin-Hydrochlorid geben jeder 6 - 8 Stunden.

   4. Systemische Injections

   Hinweis: Dieses Verfahren kann für die gewünschte Anzahl von Wochen wöchentlich oder alle zwei Wochen wiederholt werden.

   1. Verhalt Hunde manuell und sanft durch den Hund immer hinlegen und dann drapieren Arme über die Schultern und Hüften, den Hund an Ort und Stelle im gesamten t zu haltener Prozedur.
   2. Injizieren AONs; 120-240 mg / kg Cocktail PMOs (40-80 mg jeweils AON) eine venöse Dauernadel in eine Vene Extremität (bekannt als cephalica oder einer Vena saphena) verwendet wird. Die Menge des injizierten AON hängt von der experimentellen Bedingungen. Verwenden Sie die gleiche Menge von jedem AON für den Cocktail.
   3. Verwenden einer Infusionspumpe oder Spritzenpumpe auf 50 ml Gesamt injizieren mit einer Rate von 2,5 ml / min für 20 min, nach den Anweisungen des Herstellers. Wiederholen Sie Injektionen wöchentlich oder alle zwei Wochen (alle zwei Wochen) mindestens 5-mal, wie Dystrophin-Expression mit wiederholten Injektionen ansammeln.
   4. Führen Sie Bluttests wöchentlich Toxizität zu untersuchen.
      1. Unter Verwendung einer Nadel, sammeln 3 ml Blut - 0,5 ml für komplette Blutbild (CBC) und 2,5 ml für andere - von einem der subkutanen Venen der vorderen oder hinteren Gliedmaßen. Fügen Sie CBC, Gammaglutamyltransferase (GGT), Aspartat-Aminotransferase (AST), Blutharnstoffstickstoff (BUN), Alanin aminotransferase (ALT), Kreatinkinase (CK) und Kreatinin Abschätzungen bei der Prüfung des gesammelten Blutes, nach den Anweisungen des Herstellers aus dem Blut Testkits. ^40,54

   5. Klinische Einstufung der Hunde

   1. Stellen Sie eine Videokamera und Rekordhundeverhalten und Gang auf. Notieren Sie sich die gesamte Begegnung mit dem Hund, da dies als Referenz dienen soll, wenn der Hund Einstufung; Dies bedeutet, jedes Video eine andere Länge auf den Hund Fähigkeiten und die Bereitschaft abhängig sein wird. Verwenden Sie Standard-Aufnahmeparameter. Die Dreharbeiten erstellt einen Datensatz von der Einstufung, so dass es zu einem späteren Zeitpunkt überprüft werden können.
   2. Grade Gangart und Bewegungsstörungen.
      1. Für Gang- und Bewegungsstörungen, verwenden Sie die folgenden Qualitäten:
         Note 1 = keine, Grad 2 = mit Hinterbein sitzen verlängert, Grad 3 = Hase-Hopfen mit Hinterextremitäten, Grad 4 = schlurfenden Gang und Grad 5 = nicht in der Lage zu gehen.
      2. Für Mobilitätsstörungen, verwenden Sie die folgende Noten: Note 1 = keine, grade 2 = down mehr als normal liegen, Grad 3 = nicht auf Hinterbeine springen, Grad 4 = zunehmende Schwierigkeit bewegen, und Grad 5 = nicht in der Lage, aufzustehen und sich zu bewegen.
   3. Zeit, wie lange es den Hund 15 m zu laufen dauert. Messen Sie 15 m, legen Sie den Hund an der Startlinie und ermutigen sie, bis die 15 m Marke zu laufen.
   4. Bestimmen Sie Muskelatrophie des Beines mit dem folgenden Bewertungsskala:
      Note 1 = keine, Grad 2 = Verdächtiger Härte, Grad 3 = kann Härte fühlen oder erscheint dünn, Note 4 = zwischen Klassen 3 und 5 und Grad 5 = extrem dünn oder hart.
   5. Grade sabbern die folgende Skala: Note 1 = keine, Grad 2 = gelegentlich dribbelt Speichel beim Sitzen, Grad 3 = etwas Sabber beim Essen und Trinken, Grad 4 = Saiten sabbern beim Essen oder Trinken, und Grad 5 = Dauer sabbern.
   6. Grade Hypertrophie der Zunge (Makroglossie) unter Verwendung der folgenden Skala: Note 1 = keine, Grad 2 = leicht vergrößert, Grad 3 = extended OUTSIde Gebisses, Note 4 = vergrößert und leicht verdickt und Grad 5 = vergrößert und verdickt.
   7. Grade die Fähigkeit des Hundes anhand der folgenden Skala zu schlucken: Note 1 = keine Schwierigkeit, Grad 2 = braucht Zeit und Mühe in die Lebensmittel, Grad 3 = Schwierigkeiten bei der Einnahme von Nahrungs aus einer Platte, Note 4 = Schwierigkeiten beim Kauen, Schlucken, oder Trinken und Grad 5 = nicht in der Lage zu essen.
   8. Berechnen Gesamtnote durch die Partituren aus jeder Kategorie Zugabe ( mit Ausnahme des 15 m Lauftest) ^55.
      Hinweis: Die Studien geblendet werden sollte, um nicht Bias einzuführen.

   6. Magnetic Resonance Imaging (MRI)

   1. Verwenden Sie ein 3-Tesla (3T) MRT und 18 cm Durchmesser / 18 cm Länge menschlichen Extremitäten Spule T2-gewichteten Bilder von hinteren Extremitäten zu erhalten.
   2. Anesthetize Tiere durch die Injektion von CXMD Hunde mit 20 mg / kg Thiopental. Verwenden Tierarzt Salbe auf die Augen, die Augen vor dem Austrocknen zu verhindern. Verwenden Sie 2-3% Isofluran Inhalation Allgemeinanästhesie zu halten.
      1. Überprüfen Muskelreflexe und überwachen Herz und Atemfrequenz der Narkosetiefe zu bewerten. Die normale Atemfrequenz (RR), Herzfrequenz (HR) und SpO ₂ unter Vollnarkose sind wie folgt: RR: 10 - 20 Atemzüge / min, SpO _2: 95-100%, HR: 80 - 120 Schläge pro Minute (bpm ).
   3. Verwenden Sie die folgenden Einstellungen T2-gewichteten Bilder zu erhalten: TR / TE = 4000/85 ms, Schichtdicke = 6 mm, Scheibenspalt = 0 mm, Sichtfeld = 18 cm x 18 cm, Matrixgröße = 256 x 256, und Anzahl der Erfassungen = 3 bei schnellen Spin - Echo (Abbildung 4).

   7. Muskel Probenahme und der Vorbereitung (Necropsy)

   Hinweis: Die Muskeln sollten ein oder zwei Wochen nach der letzten Injektion AON beproben.

   1. Injizieren Hunde mit 20 mg / kg Thiopental-Natrium, sie zu betäuben. Verwenden vet Salbe auf die Augen während anesthetization Trocknen der Augen zu verhindern.
   2. Verwenden Sie 2 - 3% Isofluran Inhalation anes zu haltenThesia. Überprüfen Muskelreflexe und überwachen Herz und Atemfrequenz der Narkosetiefe zu bewerten. Die normale Atemfrequenz (RR), Herzfrequenz (HR) und SpO ₂ unter Vollnarkose sind wie folgt: RR: 10 - 20 Atemzüge / min; SpO _2: 95-100%, HR: 80 - 120 bpm.
      1. Euthanize Hunde durch Ausbluten unter Allgemeinanästhesie (für Obduktion nur). Verwenden Ausbluten unter tiefer Narkose die Wirkungen von Blut abgeleiteten Faktoren in der molekularen Analyse (beispielsweise Herzmuskel) zu vermeiden.
   3. Präparieren Sie die folgenden Muskeln (Abbildung 5): CT, extensor digitorum longus (EDL), Gastrocnemius, Soleus, Bizeps femoris, Rectus femoris, Bizeps, Trizeps, Deltamuskel, ECU, extensor carpi radialis (ECR), Flexor carpi ulnaris (FCU ), Flexor carpi radialis (FCR), gracilis, intercostal, Bauchmuskeln, Zwerchfell, seitliche dorsi, Speiseröhre, sternocleidomastoid und Herz. Um zu untersuchen, Toxizität, sammeln Niere und liver Proben. Verwenden Evans und Alexander de Lahunta (2009) als Referenz für Dissektionstechnik ^56.
   4. Schneiden Sie die CT, EDL, Gastrocnemius, Soleus, Bizeps femoris, Rectus femoris, Bizeps, Trizeps, Deltamuskel, ECU, ECR, FCU, FCR, gracilis, intercostal, Bauchmuskeln, seitlich dorsi, Speiseröhre, sternocleidomastoid, Herz, Niere, und Leber in kleine Abschnitte etwa 1-1,5 cm in der Länge. Rollen Sie die Membran nach oben und dann schneiden Sie es in 1 bis 1,5 cm Abschnitte ^56.
   5. Legen Sie Tragant, so dass es etwa 0,5 - 1 cm dick auf Korkscheiben. Label Scheiben mit dem Tieridentifizierungs und Muskelnamen auf der gegenüberliegenden Seite des Tragantgummi.
   6. Platzieren Muskeln mit ihrer Längsachse senkrecht zu den Korken in der Tragantgummi.
   7. Platzieren Sie die Korken in einem Behälter von Isopentan, das in flüssigem Stickstoff sitzt. Verschieben Sie es um ständig mit einer Pinzette für 1 min oder bis vollständig gefroren. Shop Muskeln auf Korkenin Ampullen bei -80 ° C. Beim Transport, setzen Fläschchen auf Trockeneis.
   8. Bereiten Glasobjektträger beschriftet mit Tieridentifikation / Muskel Namen und Datum.
   9. In einem Kryostaten auf -25 ° C abgekühlt, montieren Sie den Korken auf den Ständer. Stellen Sie die Schnittdicke auf das gewünschte Niveau. Verwenden Sie 8 um für die Immunhistochemie und 12 & mgr; m für Hämatoxylin und Eosin (HE) Färbung. Verwenden Sie 15 & mgr; m für Western-Blot-Proben. Schneiden Sie etwa ein Viertel des Muskels einen flachen Muskel für die richtige Muskel Probenahme zu erhalten.
   10. Ein Abschnitt des Muskels zu einer Zeit , Schneiden, legen jeden ^6. Abschnitt auf dem gleichen Objektträger aus Glas , wenn die Planung für die Immunhistochemie Proben zu verwenden oder HE - Färbung. Bei der Verwendung von Proben für Western-Blots, setzen 30 - 40 Abschnitte in einem Rohr und bei -80 ° C.
   11. Nach der Herstellung der Folien, Folien lassen für 1,5 h bei RT trocknen. Shop gleitet bei -80 ° C.

   8. Immunhistochemie

   1. Entfernen Sie vorbereitete Folien aus dem Speicher und legen Sie sie ineine Feuchtigkeitskammer die Folien getrennt zu halten und Feuchtigkeit halten. Füllen Sie den Feuchtigkeitskammer, so dass der Boden nur mit Wasser (ca. 1 mm Wasser) bedeckt ist.
   2. Lufttrockener 0,5 Stunden. Zeichnen Sie ein Quadrat der Muskelprobe auf dem Objektträger umschließt eine hydrophobe Barriere Stift.
   3. Hinzufügen, 15% Ziegenserum in Phosphat-gepufferter Salzlösung (PBS) und Inkubation für 2 h bei RT In Reagens blockiert wird.
   4. Hinzufügen anti-Dystrophin Stangenbereich (DYS-1) monoklonalen Maus primären Antikörper oder C-terminal monoklonaler Antikörper (DYS-2) für Hunde Dystrophin-Färbung (1: 150 Verdünnung). Verdünnte einem Blockierungsmittel in 1,25 ml PBS verwendet. Inkubieren O / N in einem Kühlschrank einen 4 ° C.
   5. Waschen mit PBS für 5 min dreimal wiederholt. Hinzufügen sekundären Antikörper Alexa 594 Ziegen-Antikörper gegen Maus-IgG1 (für DYS-2) oder IgG2 (für DYS-1) (1: 2.500). Verdünne mit einem Blockierungsreagenz in PBS, enthaltend 0,1% Octylphenol-ethoxylat. Inkubieren für 0,5 Stunden bei RT.
   6. Waschen mit PBS für 5 Minuten, drei times. Erlauben slide trocknen. Merken 1 - 2 Tropfen (3 ng / ml) von 4 ', 6-diamidino-2-phenylindole (DAPI) Befestigungslösung. Mit einer Pinzette, einen Glas Rutsch über die Oberseite der Abschnitte, die Vermeidung Blasen.
   7. Ansicht dystrophin- (DYS-1 / DYS-2) positive Fasern unter einem Fluoreszenzmikroskop bei 594 nm bei 20facher Vergrößerung.

   9. Western Blotting

   1. In gesammelter Muskelpartien von Kryo-sectioning bis 150 & mgr; l Probenpuffer auf Eis.
   2. Mit einer Hand-Homogenisator homogenisieren kurz die Proteinproben. Wärme Proben in einem 1,5-ml-Röhrchen in einem Inkubator Heizblock bei 95 ° C für 3 - 5 min. Zentrifuge bei 16.500 × g für 15 min und sammeln den Überstand.
   3. Store Aliquots des Überstandes bei -70 ° C. Verwenden Sie destilliertes Wasser bis 100x zu verdünnen.
   4. Bestimmen Proteinkonzentration eines kommerziellen Kits nach Herstellerprotokoll. In 2x Laemmli SDS-Ladepuffer zu den Proben und Wärme für 3 min &# 160; bei 95 ° C.
   5. Laden Sie die Proben in 3 bis 8% Tris-Acetat - Gel , bevor es für 3 Stunden bei 150 V Fügen Sie mehrere verdünnte Wildtyp (WT) Proben (zB 1%, 10% und 50%) für die Quantifizierung läuft. Weniger als 1% WT Ebenen Dystrophin sollte mit diesem Verfahren nachgewiesen werden.
   6. Legen Sie das Gel in Kathodenpuffer für 20 min. Während dieser Zeit nehmen neun Stücke aus Filterpapier und steckte sie in den Transferpuffer (3 Papiere in Kathodenpuffer [+], der Anodenpuffer ([-] und der konzentrierten Anodenpuffer [-], beziehungsweise) Dies. beschreibt eine halbtrockenen Transferverfahren , die Empfindlichkeit (Abbildung 6) zunimmt.
   7. Einweichen eine PVDF-Membran in Methanol für 20 Sekunden und dann in die Anodenpuffer platzieren.
      Stellen Sie das Gel mit der Membran für halbtrockene Transfer und erlauben es 1,5 Stunden bei 400 mA in RT oder in einem kalten Raum zu laufen.
   8. Waschen Sie die Membran mit PBS. Inkubieren der Membran in einem Gemisch aus PBS mit Tween 20 (PBST) und 5% Milchpulver 2 Stunden.
   9. Verdünnte DYS-1 (primärer Antikörper) in PBST und 5% Milchpulver Mischung auf eine 1: 100 Verdünnung. Fügen Sie es zu der Membran und lassen Sie es für mindestens 1 Stunde inkubiert. Waschen dreimal mit je 100 ml PBST 15 min je.
   10. Hinzufügen 65 & mgr; l / Bahn von HRP konjugierten Sekundärantikörper (anti-Maus-IgG2a für DYS1) bei 1: 5,000 Verdünnung für 1 h bei RT in einem dunklen Bereich. Dann wäscht mit dreimal mit je 200 ml PBST 20 min. Mix-Lösungen aus einer Nachweis-Kit, wie verwiesen. Inkubation für 1 min.
   11. Entwickeln Folienbänder zu erfassen und zu analysieren , mit ImageJ Software ^48,57,58.

Ergebnisse

In - vitro - Experimente

Myoblasten wurden mit verschiedenen 2'OMePS Behandlungsbedingungen, um transfizierte die Wirksamkeit der einzelnen AON zu vergleichen. Einzel AON Behandlungen mit 600 nM jeweils Ex6A, Ex6B, Ex8A oder Ex8B wurden durchgeführt, sowie eine Cocktail-Behandlung mit 600 nM jedes aller 4 AON-Sequenzen. RNA-Proben wurden vier Tage nach der Transfektion gesammelt. Nach der RT-PCR wurden Proben für jede Behandlung wurden zusammen mit nicht-behandelten (NT) Proben auf einem Gel laufen gelassen. Bands höher auf dem Gel darstellen out-of-frame DMD Produkte; Diese Banden wurden in NT, Ex8A und Ex8B behandelt Myoblasten gesehen. Ex6A, Ex6B, Ex8A und die Cocktail-behandelten Myoblasten zeigten in-Frame-Produkte. Der Cocktail und Ex6A / B zeigte eine 100% in-frame Produkte, während Ex8A nur 30% in-frame - Produkte (7) gezeigt. Um zu bestätigen, Exon-Skipping und Wiederherstellung vonder Leserahmen wurde cDNA-Sequenzierung durchgeführt; Die Ergebnisse zeigten , dass die Exons 6 bis 9 waren in der Tat (Figur 7) übersprungen worden. Immunhistochemie zeigte , dass AON-behandelten Hunden Dystrophin-positive Fasern im Vergleich zu NT - Proben (8) angestiegen war.

In - vivo - Experimente

Um die Effizienz der verschiedenen AON Behandlungsbedingungen CXMD dogs vergleichen (0,5 - 5 Jahre alt) wurden in verschiedenen Dosierungen einmal mit 1,2 mg Ex6A oder einem Cocktail aus Ex6A, Ex6B und Ex8A injiziert. Zwei Wochen nach der Injektion, Muskelproben wurden gesammelt und gefärbt mit DYS-1 die Anzahl der Dystrophin-positive Fasern zu vergleichen. Alle Cocktail-behandelten Proben zeigten eine erhöhte Dystrophin-Expression im Vergleich zu NT-Proben. Dystrophin-positiven Fasern erhöht mit AON Dosierung (Abbildung 9). Nach Systemic - Injektion, Wildtyp (WT), NT und Cocktail-behandelten CXMD Muskelproben wurden mit DYS-1 (Abbildung 10) gefärbt. Cocktail-behandelten CXMD Hunde zeigten erhöhte Expression Dystrophin im Vergleich zu NT CXMD Hunde, die beide in der CT und der Herzmuskelproben. Allerdings AON-behandelten Skelettmuskel (CT) zeigte viel höhere Expression von Dystrophin im Vergleich zu behandelten Herzmuskel. Ein Immunoblot führte WT, NT und verschiedene Morpholino Cocktail-behandelten Muskeln zu dem gleichen Ergebnis zu vergleichen. Es gab auch eine große Auswahl an Dystrophin - Expression in den behandelten Skelettmuskelproben (Abbildung 10). Hematoxylin und Eosin (HE) Färbung ergab, dass CXMD behandelt Hunde zeigten verbesserte Histopathologie, mit einer signifikanten Abnahme der zentral nukleierten Fasern (CNF) im Vergleich zu NT CXMD Hunden (Abbildung 11). Dies zeigt an, dass mehr Degeneration / Regeneration ist in dem Hund NT auftritt, ein Zeichen der dystrophischen Muskel Pathologie. Zusätzlich hatte behandelten Hunde schnellerZeiten und eine verbesserte Werte auf der klinischen Bewertungsskala läuft. Behandelte CXMD Hunde zeigten bessere Ergebnisse als NT CXMD Hunde in allen Kategorien (Abbildung 12).

Abbildung 1. Mutationsmuster des CXMD Hund und Exons . 6 - 8 Skipping Strategien Verwendung eines Antisense - Cocktail CXMD Hunde haben eine Punktmutation in Exon 6 führt zu einem Verlust von Exon 7 in dystrophischen Hund mRNA. Dies führt zu der mRNA ist out-of-Frame und Dystrophin-Protein-Produktion verloren. Kurze AON-Sequenzen sind so konzipiert, zu binden, 6 zu Exon und 8, die in mRNA-Spleißen führt effektiv Exons Überspringen 6 - 8. Der graue Balken in den AON-Cocktail-behandelten Hunden kurze AON-Sequenzen darstellt. Exon 9 kodiert für ein Gelenk-Domäne und manchmal spontan mit AONs gegen Exon 6 und 8. Die resultierenden mRNA für Proteine ​​codiert Dystrophin, die kürzer aber Funktion gespleißt outal. Bitte hier klicken , um eine größere Version dieser Figur zu sehen.

Abbildung 2. Die wichtigsten klinischen Symptome einer 1-jährigen Canine X-chromosomal - Muskeldystrophie (CXMD) Tier. Ein 1-jährige Wildtyp - Beagle und ein CXMD Hund gezeigt. Die Beteiligung der proximalen, des Körpers und zeitliche Muskeln sind in der Regel aus Alter von 2 Monaten beobachtet. Gemeinsame Kontraktur und eine Verschiebung des Beckens sind offenkundige 4 Monate alt. Bitte hier klicken , um eine größere Version dieser Figur zu sehen.

Abbildung 3. Allgemeine Anästhesie für einen Hund. A) Intramuscular Injektionen und Muskelbiopsien werden unter Vollnarkose mit Isofluran durchgeführt. B) Halten des Tieres für systemische Injektionen. Bitte klicken Sie hier , um eine größere Version dieser Figur zu sehen.

Abbildung 4. Magnetic Resonance Imaging (MRI) von Wild-Typ, nicht behandelt CXMD und behandelte CXMD. MRT - Scans des Hinterbein nach 3 Monaten und 5 Monate in WT und NT CXMD Hunde. Zwei Musterbilder von behandeltem CXMD Hinterbein MRIs prä- (1 Woche vor der ersten Injektion) und nach der Injektion von AON gezeigt. 2703MA wurde 7x wöchentlich mit 200 mg / kg Cocktail Morpholinos behandelt. 2001MA wurde mit 5x wöchentlich intravenöse Injektion von 120 mg / kg Cocktail Morpholinos behandelt. Kontrolle und behandelten Hunden waren altersgleichen. Die behandelten Hunde zeigen T2 Signale verringert. Die Bilder sind ADAP ted mit freundlicher Genehmigung von Yokota et al. (copyright 2009, John Wiley & Sons) ⁴⁰ Bitte hier klicken , um eine größere Version dieser Figur zu sehen.

Abbildung 5. Muskelbiopsie Verfahren für einen Hund. A) Eine untere Extremität wird für Muskelbiopsie fixiert. B) Mit Hilfe der Zange wird die untere Extremität gehalten. C) Die CT Muskel ausgesetzt ist. Die offene Biopsie-Technik wird verwendet, um Muskelproben von injiziertem Websites erhalten. Themen werden verwendet, Biopsieproben zu halten. D) Muskelproben auf Tragant nach der Sektion. Bitte klicken Sie hier , um eine größere Version dieser Figur zu sehen.

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Abbildung 6. Halbtrocken - Übertragungsmethode. Eine Darstellung der halbtrockenen Transferverfahren für Western - Blot dargestellt. Drei Papiere getränkt in konzentrierter Anodenpuffer sind an dem negativen Anschluß festgelegt sind; 3 Papiere in Anodenpuffer getränkt sind oben auf dieser gestapelt. Die Mb PVDF Papier wird in Methanol und dann Anodenpuffer getränkt, bevor sie auf der Oberseite der 6 Papiere gelegt werden. Das Gel, das in Kathodenpuffer getränkt worden ist, wird sanft über die PVDF Papier gelegt. Schließlich 3 in Kathodenpuffer getränkte Papiere sind auf der Oberseite des Gels gelegt. Der positive Anschluss ist auf der Oberseite eingestellt. 1 h, 400 mA durch das System ausgeführt wird. Bitte hier klicken , um eine größere Version dieser Figur zu sehen.

Abbildung 7. Exon - Skipping in CXMD Myoblasten. et al. (Copyright 2009, John Wiley & Sons) ^40. Bitte hier klicken , um eine größere Version dieser Figur zu sehen.

Abbildung 8. Erhöhte DystropHin Expression in 2'O- methyliert Phosphorothioat (2'OMePS) Transfizierte CXMD Myoblasten. CXMD Myoblasten wurden allein mit Ex6A transfiziert oder mit Cocktail 2'OMePS. DYS-2 (rot) und DAPI (blau) Färbung gezeigt. Die behandelten Myoblasten sind im Vergleich zum Wildtyp (WT) und nicht behandelten (NT) Myoblasten. Die Bilder werden mit freundlicher Genehmigung von Yokota et al angepasst. (Copyright 2009, John Wiley & Sons) ^40. Bar = 50 & mgr; m. Bitte hier klicken , um eine größere Version dieser Figur zu sehen.

Abbildung 9. Rettung von Dystrophin Expression mit intramuskuläre Injektionen von Morpholinos in CXMD Hunde. Entweder Ex6A allein oder einem Cocktail aus Ex6A, Ex6B und Ex8A wurden in die CT Muskeln von CXMD Hunden injiziert. Dystrophin (DSY-1) Färbung von Wildtyp(WT), nicht behandelte (NT), und behandelt CXMD Hunde gezeigt. Die Hunde wurden entweder mit 1,2 mg Ex6A allein oder 1,2 mg Cocktail behandelt. Die Bilder werden mit freundlicher Genehmigung von Yokota et al angepasst. (Copyright 2009, John Wiley & Sons) ^40. Bar = 100 & mgr; m. Bitte hier klicken , um eine größere Version dieser Figur zu sehen.

Abbildung 10. Erhöhte Dystrophin - Expression nach Systemische Cocktail Morpholino Behandlung in CXMD Hunde. Dystrophin (DYS-1) Färbung wurde verwendet , um Dystrophin - Expression in Wildtyp (WT) (positive Kontrolle), nicht behandelte (NT) (Negativkontrolle) zu vergleichen, und CXMD Hunde mit 120 mg / kg morpholino-Cocktail (40 mg / kg jeder AON) behandelt. Der Morpholino Cocktail enthielt Ex6A, Ex6B und Ex8A. Die Hunde wurden intravenös 5 mal injiziert wirekly mit diesem Cocktail. A) Ein Vergleich der Dystrophin-Expression in Schädel Tibia (CT) Muskeln von WT, NT und behandelten Hunden. B) Ein Vergleich der Dystrophin-Expression im Herzgewebe zwischen NT und Morpholin Cocktail-behandelten Hunden. C) Immunoblot für Dystrophin mit Desmin als Ladekontrolle für WT, NT und morpholino Cocktail-behandelten Hunden gezeigt. Folgende Muskeln sind für die behandelten Hunden gezeigt: Trizeps (TB), Bizeps (BB), Membran (DIA), der Speiseröhre (ESO), CT, Adduktoren (ADD), extensor digitorum longus (EDL), Kaumuskeln (MAS), und Herz. Die Bilder werden mit freundlicher Genehmigung von Yokota et al angepasst. (Copyright 2009, John Wiley & Sons) ^40. Bar = 200 & mgr; m. Bitte hier klicken , um eine größere Version dieser Figur zu sehen.

Zahl11. Verbesserte Histopathologie in CXMD Hunde behandelt 7 Wochen mit 240 mg / kg Morpholino Cocktail. CXMD Hunde von einem halben Jahr bis zu fünf Jahren im Bereich intravenös mit 240 mg / kg Morpholin - Cocktail (Ex6A, Ex6B und Ex8A) einmal injiziert Woche 7 Wochen. Vierzehn Tage nach der letzten Injektion wurden Speiseröhre Muskeln aufgenommen und Hämatoxylin und Eosin (HE) Färbung wurde durchgeführt. HE - Färbung der Speiseröhre Muskeln von nicht behandelten (NT) und Morpholin Cocktail-behandelt (behandelt) CXMD Hunde (40X Objektiv). Bitte hier klicken , um eine größere Version dieser Figur zu sehen.

Abbildung 12. Verbesserte basiert auf klinischen Grading und 15 m Laufzeit nach Morpholino Behandlung. Morpholino-behandelten Hunden wurden im Vergleich zu nicht behandelten (NT) littermates. Die Fehlerbalken in der Grafik zeigen SEM. A) Gesamtpunktezahl auf der klinischen Einstufung Prüfung wurde berechnet, vor und nach der Behandlung und behandelten Tiere wurden im Vergleich zu NT littermates. B) Ein Vergleich von 15 m Laufzeiten der behandelten und NT Hunde. C) Wie B; jedoch wurden jüngere Hunde eingesetzt. Bilder angepasst sind , mit freundlicher Genehmigung von Yokota et al. (Copyright 2009, John Wiley & Sons) ^40. Bitte hier klicken , um eine größere Version dieser Figur zu sehen.

Antisense - Oligonukleotids	Nucleotid - Sequenz
Ex6A	GTTGATTGTCGGACCCAGCTCAGG
Ex6B	ACCTATGACTGTGGATGAGAGCGTT
Ex8A	CTTCCTGGATGGCTTCAATGCTCAC

Tabelle 1. Antisense - Oligonukleotid - Design.

Diskussion

Exon-Skipping ist eine vielversprechende therapeutische Technik zur Behandlung von DMD. Sowohl in vitro und in vivo Versuche haben gezeigt , dass die Multi-Exon - Skipping führbar ist. Hier wird die Verwendung des CXMD Hundemodell diskutiert. Zunächst wurden AONs entwickelt , um die Rettungs ESE und ESEfinder Programme mit Dystrophin - Exons 6 bis Ziel - 8. Die 2'OMePS AON Chemie für CXMD Myoblasten Transfektion und Morpholin AON Rückgrat Chemie wurde für In - vivo - Experimente ausgewählt verwendet wurde. vPMOs sind effizienter als unmodifizierte PMOs aber aufgrund ihrer höheren Toxizität sind sie für die systemische Injektionen nicht geeignet. RNA-Extraktion, RT-PCR und cDNA-Sequenzierung wurden auf den CXMD Myoblasten durchgeführt. Hunde mit dem PMO Cocktail injiziert waren klinisch abgestufter keine Besserung der klinischen Symptome zu bewerten. Nachdem die Hunde artgerecht eingeschläfert wurden, wurden Muskelproben und für Kryo-Schnitte vorbereitet genommen. Die Halbwertszeit von Dystrophin-Protein, induziert durch AONs wird angenommen, dass etwa 1 zu sein - 2 Monaten. Junge erwachsene Hunde wurden in dieser Studie verwendet wurden, obwohl diese Versuche mit neugeborenen Hunden und älteren Hunden durchgeführt werden (> 5 Jahre). Vorbereitete Muskelabschnitte wurden verwendet , Histopathologie zu bewerten und Dystrophin - Protein Rettung durch Western Blotting und Immunhistochemie ⁴⁸ beurteilen.

Es ist wichtig sicherzustellen, dass das Volumen der Lösung vor der PMO-Injektionen korrekt ist; haben so erhebliche Auswirkungen auf die Ergebnisse zu tun, andernfalls wird. Während intramuskuläre Injektionen wird ein ausreichender Druck erforderlich, um die Muskelfasern zu gelangen. Die Überwachung der Hundegesundheit und Inspektion der Operationsstelle sind wichtig für die Fehlerbehebung. Um die Tiergesundheit, wöchentliche Bluttests überwachen und mit einem Gewicht durchgeführt werden sollte. Nach Euthanasie der Tiere und Herstellung von Muskelproben, Empfindlichkeit ein kritischer Schritt für die Gewährleistung Dystrophin-Protein bei der Erkennung sowohl des Tris-Acetat-Gel und halbtrockenen Blotting-Verfahren zu verwenden,während der Western-Blot-Verfahren.

Wie in den repräsentativen Ergebnissen gezeigt, behandelt Myoblasten mit Ex6A, Ex6B, Ex8A, und der Cocktail (mit Ex6A, Ex6B, Ex8A und Ex8B) im Rahmen DMD Produkte hergestellt. Da keine Ex8B Exon-übersprungenen Produkte produziert, wurde es nicht in den nachfolgenden in vivo Experimenten verwendet. cDNA-Sequenzierung ergab, dass die Exons 6 - 9-Skipping aufgetreten und Immunzytochemie mit DYS-2-Färbung zeigten Dystrophin-Expression in behandelten Proben wiederhergestellt. AON-behandelten Hunden zeigten eine signifikante Zunahme der Dystrophin-positive Fasern. Dies zeigt, dass die Exons 6 bis 8 wurden übersprungenen und ein verkürztes Protein wurde hergestellt. Die Menge an Dystrophin-positiven Fasern erhöht, wenn ein Cocktail von AONs verwendet wurde, und war zu AON Dosierung proportional. Immunoblots zeigten Dystrophin-Expression in systemischen morpholino-behandelten Hunden erhöht. Der Skelettmuskel hatte variable Mengen an Dystrophin-Fasern; jedoch morpholino-behandelten Herzgewebe zeigte wenigVerbesserung der Dystrophin-Expression. Da Dystrophin mit hohem Molekulargewicht (427 kDa) hat der Nachweis von geringen Mengen des Eiweißes kann schwierig sein. Für die besten Ergebnisse, Tris-Acetat-Gel und die halbtrockenen Transferverfahren verwendet wurden. HE-Färbung zeigte verbesserte Histopathologie in den Morpholino-behandelten Hunden. Zentral-nukleiert Fasern (CNF) sind ein Zeichen für ungesunde Muskel und Zyklen von Muskeldegeneration und Regeneration darstellen. Morpholino behandelten CXMD Hunde zeigten eine Abnahme des Anteils der CNFs im Vergleich zu nicht behandelten CXMD Hunden. Klinische Einstufung ergab eine Verbesserung der Symptome, wie erhöhte Geh- und Lauffähigkeit, in morpholino-behandelten Tiere. Die Härte der Muskeln wird angenommen , dass Muskelatrophie zu reflektieren, damit es in der Benotungsskala ⁵⁹ aufgenommen wurde. Die Härte des Oberschenkels (Hinterschenkel) Muskeln bewertet wurde; jedoch ausgeschlossen wir Schädel Schneidermuskel Muskeln, weil sie Hypertrophie zeigen neigen eher als Atrophie in CXMD. Die behandelten Hunde zeigened niedrigere Einstufung Partituren und hatte eine bessere Zeit auf der 15 m Lauftest. Verbesserte Mal auf der 15 - m - Prüfung sind ein Anzeichen für eine verbesserte Muskelfunktion ^40. Höhere Gesamt Einstufung Werte zeigen schlechte Gesundheit und eine erhöhte Muskelatrophie.

Während diese Ergebnisse vielversprechend sind, präsentiert Multi-Exon-Skipping noch viele Herausforderungen, die überwunden werden müssen, bevor die Technik klinische Anwendbarkeit hat. Herzgewebe zeigt noch verminderte Aufnahme von AONs, wahrscheinlich aufgrund der Differenz in der zellulären Handel zwischen Herz- und Skelettgewebe. Keine toxischen Wirkungen wurden bei Tieren unter den gegenwärtigen Dosierungsschemata beobachtet; jedoch muss mehr getan werden, die Langzeittoxizität zu bewerten, bevor die Verwendung von AON-Cocktails zu klinischen Studien bewegen kann. Es ist schwierig, die Genehmigung für AON Cocktail Drogen zu gewinnen, weil jede Regulierungsagentur AON-Sequenz als ein einzigartiges Medikament definieren. Dies bedeutet, dass jede Sequenz in einem Cocktail individuell müssten für Safet getestet werdeny, mehr Zeit und mehr Geld erfordern. Ein weiteres Hindernis für den Einsatz von Multi-Exon-Skippings in einer klinischen Umgebung ist eine große Menge an Zwischenproteinprodukte mit unbekannten Funktionen erzeugt. Diese Proteine ​​können potenziell führen zu unvorhersehbaren Nebenwirkungen in Abhängigkeit von der einzelnen Mutation ^22. Darüber hinaus sind die Mutation Muster innerhalb von aktuellen dystrophischen Hund Modelle begrenzt. Es gibt nur wenige natürlich vorkommende Mutationen, und nicht alle Mutationen sind nützlich zur Untersuchung von Multi-Exon-Skipping. Die dystrophischen Schweinemodell verspricht eine gute Alternative für die zukünftige DMD Exon - Skipping - Studien ^{33, 34} zu sein.

Die DMD Hund Modelle haben einige Vorteile gegenüber anderen DMD-Modelle. Als ein größeres Tiermodell, klinische Sortier- und MRT sind möglich, für eine detailliertere Analyse zu ermöglichen. Da Hunde große Tiere sind, sind sie auch geeignet für Toxikologiestudien und enger die menschliche Krankheit im Vergleich zu dem Maus-Modell darstellen. Hund modelle haben auch Sequenzen DMD - Gen , das ähnlicher zu ²³ Menschen ^{sind, 34, 45.}

Obwohl technisch anspruchsvoll , das Multi-Exon - Skipping Ansatz letztlich profitieren könnten> 90% der DMD - Patienten ^24. Dies macht es eine viel bessere Alternative zu Single-Exon-Skipping, als Single-Exon-Skipping nur für einen kleinen Teil der Patienten ist. Darüber hinaus wird Multi-Exon-Skipping ermöglichen es uns, die Löschmuster auszuwählen, die die Funktionalität der verkürzten Dystrophin-Proteine ​​zu optimieren. Zum Beispiel das Löschen von DMD Exons 45 - 55 mit außergewöhnlich milde Symptome oder asymptomatischen Personen ^14,19,60-63 verbunden ist. Die Multi-Exon - Skipping des Exons 45 bis 55 bereits in einem Mausmodell der DMD mit einem Exon 52 Deletion (mdx52) unter Verwendung systemische Injektionen von vPMOs ^22,26 nachgewiesen. Die Verwendung von Cocktails vPMOs wurde auch in anderen Formen von Muskeldystrophie gezeigt worden, wie beispielswie Fukuyama kongenitale Muskeldystrophie (FCMD). FCMD durch Exon-Trapping verursacht, in denen aberrante mRNA Splicing durch Retrotransposon Insertion verursacht wird. vPMOs wurden ⁶⁴ das Splicing - Muster in sowohl einem FCMD Mausmodell und in menschlichen Zelllinien zu retten gezeigt. Next-Generation AON Chemien höhere Wirksamkeit und eine geringere Toxizität aufweisen würde die effektive Umsetzung des Multi-Exon-Skipping-Ansatz in die klinische Anwendung zu erleichtern. Zusätzlich könnte Multi-Exon - Skipping potentiell auf andere genetische Erkrankungen angewendet werden, wie beispielsweise die dysferlinopathies ^{24, 65.}

Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien

Name	Unternehmen	Katalognummer	Kommentare
2'OMePS Transfektion von Hundemyoblasten
>3 ml 6-Well-Platten	IWAKI	5816-006
Dulbecco' s modifizierter Eagle" s Medium (DMEM)	Gibco	11965-092
Fötales Rinderserum (FBS)	HyClone	SH30071.01
Penicillin	Sigma-Aldrich	P4333	200 U/ml
Lipofectin	Invitrogen	18292-011	Gesamtvolumen von 100 ml in opti-MEM Medien im Verhältnis 2:1 für Lipofectin. 10 ml Lipofectin für 5 mg RNA.
2' OMePS	Eurogentec		Ex6A (GUU GAUUGUCGGACCCAGCUCAGG), Ex6B (ACCUAUGA CUGUGGAUGAGAGCGUU) und Ex8A (CUUCCUGG AUGGCUUCAAUGCUCAC).
Pferde-Serum	Gibco	16050-114	2%
Streptomycin	Sigma-Aldrich	P4333	200 μ g/ml
Rinderserumalbumin (BSA)	Sigma-Aldrich	A9418
Insulin
Morpholino-Transfektion von Hundemyoblasten Sämtliches Material aus der MePS-Transfektion von Hundemyoblasten zur Kultivierung von
Antisense-Morpholinos	Genwerkzeuge		Ex6A(GTTGATTGTCGGACCCAGC TCAGG), Ex6B(ACCTATGACTGTGTGGATGAG AGCGTT),  Ex8A(CTTCCTGGATGGCTTCAAT GCTCAC)                                                    In opti-MEM Medien auf ein Endvolumen von 100 l verdünnen.                                   120– 200 mg/kg Morpholinos à 32 mg/ml in Kochsalzlösung
Endo-Porter	Genwerkzeuge
Guanidiniumthiocyanat-Phenol-Chloroform	Invitrogen	15596-018	1  ml/plate
RNA-Extraktion und Reverse Transkriptions-Polymerase-Kettenreaktion (RT-PCR)
guanidiniumthiocyanat-phenol-chloroform	Invitrogen	15596-018	1  ml/Platte
Chloroform	Sigma-Aldrich	P3803	200 μ l
1,5 ml Tuben	Eppendorf	22363204
Zentrifuge	Beckman-Schar
75% Ethanol	Sigma-Aldrich	34852
UV-Spektrometer
Forward Primer im Exon 5	Invitrogen		CTGACTCTTGGTTTGATTTGGA                                                    1.5 μ L 10 μ M
Reverse Primer im Exon 10	Invitrogen		TGCTTCGGTCTCTGTCAATG                                                        1.5 μ L 10 μ M
dNTPs	Clontech	3040
Einstufiges RT-PCR-Kit	Qiagen	210210
Thermocycler	Scinco
komplementäre DNA (cDNA)-Sequenzierung
Gel-Extraktionskit	Qiagen	28704
Zentrifuge
Terminator v3.1 Zyklus-Sequenzierungs-Kit	Angewandte Biosysteme	4337454
Intramuskuläre Injektionen oder offene Muskelbiopsie
Chirurgische Werkzeuge			Schere, Skalpell, Nadel, chirurgischer Faden
Tierarzt Salbe
Iodophoren	Webtextilien	12190-71-5
Chlorhexidin	Peridex	12134
OP-Abdecktücher
Scrubs
Gesichtsmaske
OP-Handschuhe
Kopfbedeckung
Thiopental-Natrium	Mitsubishi Tanabe Pharma		20 mg/kg
Isofluran	Abbott Laboratorien	05260-05	2-3%
Antisense-Morpholinos	Genwerkzeuge		Ex6A(GTTGATTGTCGGACCCAGC TCAGG), Ex6B(ACCTATGACTGTGTGGATGAG AGCGTT),  Ex8A(CTTCCTGGATGGCTTCAAT GCTCAC)                                                    In opti-MEM Medien auf ein Endvolumen von 100 l verdünnen.                                   120– 200 mg/kg Morpholinos bei 32 mg/ml in Kochsalzlösung
27  G Nadeln	TERUMO	Nr. SG3-2325
50 ml Spritze	TERUMO	SG2-03L2225
Buprenorphin Hydrochlorid
Zungenspatel
Cephalexin		15 bis 30 mg/kg
Cefazolin		15 bis 30 mg/kg
Buprenorphin		0,01 mg/kg
Buprenorphinhydrochlorid	0,02 mg/kg
Systemische Injektionen
Spritzen-Infusionspumpe	Muromachi
22  G Verweilnadeln	TERUMO	SG3-2225
27  G Nadeln	TERUMO	Nr. SG3-2325
50 ml Spritze	TERUMO	SG2-03L2225
Kochsalzlösung	Ohtsuka-Pharmazie	28372<
Videokamera
Stoppuhr
Magnetresonanztomographie (MRT)
>3 Tesla MRT l
18 cm Durchmesser/18 cm Länge Spirale
Muskelprobenahme und -aufbereitung (Autopsie)
Thiopental-Natrium	Mitsubishi Tanabe Pharma		20 mg/kg
Isofluran	Abbott Laboratorien	05260-05	2-3%
Tragantfleisch			10-20 ml
Flüssigstickstoff
Korkscheiben	Iwai-kagaku	101412-806
Trockeneispinzette
Poly-L-Lysin– beschichtete Objektträger	Fisher	22-037-216
Kryostat Mikrosystem	Leica		cm1900
Immunhistochemie
DYS1	Novocastra	NCL-DYS1	1:150 Verdünnungen
DYS2	Novocastra	NCL-DYS2	Verdünnungen 1:150
Alexa 594 Antimaus für Ziegen IgG1	Invitrogen	A-21125	1:2.500 Verdünnungen
Alexa 594 Antimaus für Ziegen IgG2	Invitrogen	A-11005	1:2.500 Verdünnungen
DAPI	Invitrogen	D1306	Enthält das Eindeckmittel
Ziegenserum	Invitrogen	10000C	15%
PBS
Feuchtigkeitskammer	Wissenschaftliches Entwicklungslabor	197-BL
Kammer-Schlitten	Lab-tek
Deckgläser	Fisher	12-540A
Hydrophober Barrierestift
Fluoreszenzmikroskop			594 nm bei 20-facher Vergrößerung.
Western Blotting
Distillwasser
Hand-Homogenisator
2& mal; Laemmli SDS-Ladepuffer			0,1 M Tris– HCl (pH 6,6), 2% (w/v) SDS, 2% (0,28  M) Beta-Mercaptoethanol, 20 % Glycerin, 0,01 % Bromphenolblau
SDS-Gele	Bio-Rad	161-1210	5% auflösende
SDS-Gele	Invitrogen	Invitrogen, WG1601BOX	3-8%
PVDF-Membran	GE	10600021
Methanol
Laufpuffer (10-fach;)			250 mM Tris-Base, 1.920 mM Glycin
Laufpuffer (1&fach;)			10% 10-facher Puffer, 20% Methanol
0,05 % PBS/Tween 20 (PBST)			2.000 ml                            3&fach; 200 ml zum Waschen von
PBST/5% Milchpulver			100 ml
Protein Assay Kit	BCA	T9650
Tween 20	Sigma	P5927
Harnstoff	Sigma	U5378
Beta-Mercaptoethanol	Millipore	ES-007-E
SDS	Sigma	L3771
Tris-Acetat	Sigma
Tris HCl	Sigma	T3253
Glycerol	Sigma	G8773
Lade-/Probenpuffer für Western Blotting	NuPage Invitrogen	NP007
NaCl	Sigma	S3014
PMSF	Sigma	P7626
Protease-Cocktail-Hemmer	Roche	11836153001
Kathodenpuffer			0,025 M Tris-Basis + 40  mM 6-Aminocapronsäure + 20 % Methanol
Anodenpuffer			0,03 M Trisbase + 20 % Methanol
konzentrierter Anodenpuffer			0,3 M Tris Base + 20 % Methanol
Desmin Antikörper	Abcam	ab8592
DYS1	Novocastra	NCL-DYS1	1:150 Verdünnungen
ImageJ Software (Englisch)