Isolierung und Charakterisierung von primären Ratte Ventil interstitielle Zellen: ein neues Modell zur Verkalkung der Aortenklappe

Zusammenfassung

Dieses Protokoll beschreibt die Isolierung, die Kultur und die Verkalkung der Ratte abgeleitet Ventil interstitiellen Zellen, ein höchst physiologischen in Vitro Modell der Schulterarthrose Aortenklappe Krankheit (CAVD). Ausbeutung von diesem Rattenmodell erleichtert die CAVD Forschung in der Erforschung der Zelle und der molekularen Mechanismen, die diese komplexen Krankheitsgeschehen zugrunde liegen.

Zusammenfassung

Schulterarthrose Aortenklappe Krankheit (CAVD) zeichnet sich durch die fortschreitende Verdickung der Aortenklappe Flugblätter. Es ist eine Bedingung, die häufig bei den älteren und terminaler Niereninsuffizienz (ESRD) Patienten, leiden häufig unter Hyperphosphatämie und Hyperkalzämie gefunden. Derzeit gibt es keine Medikamente-Therapien, die ihr Fortschreiten aufhalten kann. Die Mechanismen, die diesen pathologischen Prozess zugrunde liegen bleiben unklar. Die Aortenklappe Broschüre besteht aus eine dünne Schicht aus Endothelzellen Ventil (VECs) an den Außenflächen der aortalen Höckern, mit Ventil interstitiellen Zellen (VICs) eingeklemmt zwischen den VECs. Die Verwendung von einem Rattenmodell ermöglicht die in-vitro- Studie ektopische Verkalkungen auf Basis der in Vivo pathophysiologischen Serum-Phosphat (Pi) und Kalzium (Ca) der Patienten, die leiden Hyperphosphatämie und Hyperkalzämie. Das beschriebene Protokoll beschreibt die Isolation einer reinen Ratte VIC Bevölkerung dargestellt durch die Expression von VIC Marker: Alpha-Glattmuskel Aktin (α-SMA) Vimentin und Gewebe Wachstumsfaktor Beta (TGFβ) 1 und 2 und das Fehlen des Clusters der Differenzierung (CD) 31, eine VEC Marker. Durch den Ausbau dieser VICs, können biochemische, genetische und bildgebende Untersuchungen durchgeführt werden, um zu studieren und die wichtigsten Vermittler zugrunde liegenden CAVD zu entwirren.

Einleitung

Die gesunde Aortenklappe besteht aus drei Broschüren, die die Verteilung der mechanischen Beanspruchung beim Öffnen und Schließen des Ventils gleichmäßig aufgeteilt wird. Die Ventil-Broschüre hat eine definierte Struktur aus drei unterschiedlichen Schichten: die Fibrosa, Spongiosa und Ventricularis, welches Haus Ventil interstitielle Zellen (VICs) als die vorherrschenden Zelltyp. Diese drei Schichten sind eingeklemmt zwischen zwei Betten von Valve Endothelzellen (VECs)¹.

VICs spielen eine entscheidende Rolle bei der Progression von Schulterarthrose Aortic Valve Verkalkung (CAVD), in der westlichen Welt die häufigste Herzklappenerkrankung. CAVD bezeichnet man als eine fortschreitende Erkrankung, die durch das Herzklappenfehler Gewebe und seine umliegenden Mikroumgebung aktiv geregelt ist. Zellveränderungen verursachen zunächst fibrotische Verdickung und schließlich eine umfangreiche Verkalkung der Aortenklappe Flugblätter. Dies führt dann zu erheblichen Aortenklappe Stenose und letztlich left ventricular Abfluß Obstruktion², chirurgische Klappenersatz als die einzig mögliche Behandlung verlassen.

Die Pathophysiologie der CAVD ist komplex, aber ähnliche Mechanismen zur physiologischen Knochen Mineralisierung³teilt. Während eine Reihe von Studien die von VICs osteogene Trans-Differenzierung und Verkalkung^4,5unterziehen bewiesen haben, die Mechanismen für diesen Prozess müssen erst noch vollständig aufgeklärt werden, Hervorhebung der entscheidende Voraussetzung für ein machbar und relevanten in-vitro- Modell der CAVD.

Frühere Arbeiten von verschiedenen Labors hat erfolgreich VICs von Schweinen und Rindern Modelle isoliert und kultiviert diese Zellen unter Bedingungen^6,7,8Kalkseife. Aufgrund der Größe der Aortenklappe in diesen Modellen wurde Isolation von Zellen durch enzymatische Verdauung hochwirksame reine Bevölkerungen der Zellen zu generieren. Jedoch können diese Modelle aufgrund der begrenzten Verfügbarkeit von molekulare Werkzeuge für große Tierarten restriktiv sein. Im Gegensatz dazu bleiben die Nager-Modelle vorteilhaft aufgrund der relativ geringeren Kosten, Potenzial für Genmanipulation und die umfangreiche Palette von molekulare Werkzeuge, die zur Verfügung stehen. Jedoch ist die Isolierung von VICs von kleiner Tiermodelle nicht weit verbreitet eingesetzt ist eine wahrscheinliche Folge der Schwierigkeiten bei der Arbeit mit kleinen Gewebeproben.

Dieses ausführliche Protokoll meldet eine umfassende Methode für die direkte Lokalisierung der Ratte VICs. Durch sorgfältige Präparation des Ventils, gefolgt von einer Reihe von enzymatischen Verdauung können VICs isoliert und in einer Vielzahl von experimentellen Techniken, einschließlich der Zelle Kultur, Verkalkung und gen Ausdruck eingesetzt werden. Dieses hochaktuellen in Vitro Modell der CAVD wird zweifellos einen wesentlichen Beitrag zur Erhöhung der unser Wissen über diesen pathologischen Prozess machen.

Protokoll

Alle Tierversuche wurden das Roslin-Institut Tier Benutzer Ausschuss angenommene, und die Tiere waren im Einklang mit Home Office (UK) Leitlinien für die Pflege und Verwendung von Tieren gepflegt. Für das Protokoll beschrieben wurden 5 - Woche alte, männlichen Sprague-Dawley Ratten verwendet.

(1) Reagenz Rezepte

1. Bereiten Sie das Kulturmedium mit Dulbeccos geändert Eagle Medium (DMEM) und nahrhafte Mischung f-12 (DMEM/F12). Fügen Sie 10 % sterilisiert Hitze-inaktivierten fetalen bovine Serum (FBS) und 1 % Gentamicin.
2. Bereiten Sie die Verkalkung Medium mit Nährmedium und 2,7 mM Ca/2.5 mM Pi.
   1. Bereiten Sie 1 M-Kalzium-Chlorid (CaCl₂) durch wiegen, 555 mg CaCl₂ und in 5 mL destilliertem Wasser 5 mL 1 M CaCl₂zu lösen. Filtern Sie die Lösung durch einen 0,22 µm Spritze Filter um die Lösung zu sterilisieren.
   2. Bereiten Sie 1 M Natriumphosphat durch Wiegen 710 mg wasserfreiem Diabas-Natriumphosphat (Na₂HPO₄) und 600 mg wasserfreiem monobasic Natriumphosphat (NaH₂PO₄) Auflösung jeweils separat in 5 mL destilliertem Wasser. Kombinieren Sie 3.870 µL Na₂HPO₄ und 1.130 µL NaH₂PO₄und Filter durch einen 0,22 µm Spritze Filter Lösung zu sterilisieren.
3. Bereiten Sie den Puffer zu waschen mit Hank es ausgewogen Salz-Lösung (HBSS) und 1 % Gentamicin.

2. Vorbereitung der Dissektion Haube

1. Führen Sie alle Sektionen in einem belüfteten Haube, vorher desinfiziert mit 70 % Ethanol zur Sterilität der Proben und Reagenzien zu gewährleisten.
2. Sterilisieren Sie Dissektion Werkzeuge durch Autoklavieren, die ihnen folgten durch Eintauchen der Tipps der Werkzeuge in einem Becher mit 70 % Ethanol vor dem Gebrauch.
3. Bereiten Sie Becher mit Waschpuffer vor, und genießen Sie die Dissektion Werkzeuge Waschpuffer vor Kontakt mit dem Tier oder Gewebe. Behalten Sie stets den Waschpuffer auf Eis.

3. Gewinnung von primären Ratte VICs

Hinweis: Für das Protokoll beschrieben, wurden 5 - Woche alte, männlichen Sprague-Dawley Ratten verwendet.

1. Die Ratten zu Keulen (~ 100 g) durch zervikale Dislokation nach UK Home Office-Richtlinien.
2. Um das Herz der jede Ratte zu sezieren, legen Sie das Tier auf eine Dissektion Glastafel Rückenlage und desinfizieren der Haut durch Besprühen mit 70 % Ethanol.
3. Machen Sie einen Schnitt von 4 cm in der Mittellinie der Ratte mit Hilfe der Dissektion Schere zu entlarven die Bauchhöhle, und entfernen vorsichtig den Brustkorb und die Lungen, das Herz aussetzen.
4. Entfernen Sie das Herz mit einem Paar von Sharp, Frühling gebogene Schere und seziert Herzen im Eis Kaltwäsche Puffer speichern, bis alle Brutto Sezierungen der Ratten abgeschlossen sind.
5. Um Mikro-jedes Herz sezieren, Letzteres Transfer in eine Petrischale in Waschpuffer abgedeckt. Trimmen des Herzmuskels mit der Frühling gerade Schere (6 mm Klinge) mit einer kleinen Umgebung der Aorta ascendens und die Aortenwurzel gelassen werden.
6. Mit den gleichen Frühling gerade Schere (6 mm Klinge), vorsichtig aufschneiden der Aorta ascendens in Richtung des linken Ventrikels und entlarven die Aortenklappe Flugblätter.
7. Übertragung der eröffneten Aorta in eine frische, sterile Petrischale gefüllt mit HBSS. Sezieren Sie Flugblättern der Aortenklappe, gekennzeichnet durch ihre einzigartige 'U'-Form an der Basis der Aorta mit einer Vannas-Typ Kapsulotomie Mikro-Schere (3 mm Klinge).
8. Speichern Sie alle Merkblätter in 1 mL Eis kalt Waschpuffer in einem 1,5 mL Microcentrifuge Schlauch bis alle Sezierungen abgeschlossen sind.
9. Sobald alle Merkblätter geerntet worden sind, Zentrifugieren sie 100 X g für 1 min bei 4 ° C, die Waschpuffer zu entfernen.
10. Nachfolgende Schritte in eine Zelle Kultur Kapuze Sterilisation sicherzustellen. Entfernen Sie die VECs verdauen Sie die Flugblätter in 100 µL 425 U/mL Kollagenase II für 5 min bei 37 ° C. Stören Sie die Verdauung, indem es sanft nach oben und unten mit einer Spitze 200 µL Pipette pipettieren.
11. Zentrifuge bei 100 X g für 30 s, pellet-Flugblätter und entsorgen Sie den Überstand sorgfältig. Zweimal mit 500 µL Waschpuffer waschen und neu pellet der Zellen durch Zentrifugation bei 100 X g für 30 s.
12. Um die VICs aus Flugblätter zu ernten, mit 100 µL 425 U/mL Kollagenase II für 2 h zu verdauen Sie, und lassen Sie die VICs durch sanft nach oben und unten mit einer Spitze 200 µL Pipette pipettieren.
13. Verdünnen Sie die Kollagenase II in 19 mL Kulturmedium und Zentrifuge bei 670 X g für 5 min um die VICs und restlichen Ventil Broschüre Schutt pellet. Überstand verwerfen, und übertragen Sie Flugblätter und VICs auf Platten/Kulturflaschen entsprechend (Tabelle 1).
14. Kultur der VICs für 5-7 Tage in Kulturmedium, bis Konfluenz bei 37 ° C in Anwesenheit von 5 % (Kohlendioxid) CO₂, ändern des Mediums nach 72 h erreicht ist. Für eine spätere Verwendung in in-vitro- Experimenten Passage bis zu 5 Mal nach confluency 100 % erreicht.

(4) Induktion von Verkalkung der Ratte VICs

Hinweis: Für alle Experimente zählen Sie Zellen mit einem Hemocytometer.

1. Führen Sie alle Primärzelle seeding und Passagierung in sterilisierten Hauben um Kontaminationen zu vermeiden. Um primäre Ratte VICs für in-vitro- Verkalkung Experimente vorzubereiten, Samen der Zellen bei einer Dichte von 150.000 Zellen/Brunnen in 6-Well Platten. Pflegen Sie im Kulturmedium bis ≥ 90 % Konfluenz (in der Regel 72 h).
2. Behandeln Sie die VICs mit Verkalkung versus Steuermedium und Inkubation bei 37 ° C in Anwesenheit von 5 % CO₂, für weitere 72 h.
3. Um die verkalkten primären Ratte VICs für spätere nachgelagerte Analysen zu untersuchen, entfernen Sie die Verkalkung/Steuermedium zu und waschen Sie Monolagen mit Waschpuffer, nicht gebundenen Ca und Pi-Ionen zu entfernen.

(5) Ratte VIC Charakterisierung

1. Immunostaining für phänotypische Markierungen zu überwachen, wie z. B. Vimentin und α-SMA, Samen die Ratte VICs bei einer Dichte von 150.000 Zellen/Brunnen in 6 Well-Platten, enthalten in Deckel rutscht (Zellen wachsen auf der Oberfläche der Abdeckung), und bis zu 50 % Konfluenz wachsen lassen.
2. Aspirieren das Kulturmedium und fixieren der Zelle Monolagen mit 4 % Paraformaldehyd (PFA) für 10 min vor dem Waschen sie 3 Mal mit Phosphat gepufferte Kochsalzlösung (PBS), für 5 min jedes Mal.
   Achtung: PFA ist giftig und muss sorgfältig behandelt werden.
3. Inkubieren Sie die Zelle Monolage mit Blockierung und Permeabilisierung Puffer (1 X PBS, 5 % des normalen Serum aus der gleichen Art wie der Sekundärantikörper, 0,3 % Triton x-100) für 1 h bei Raumtemperatur.
4. Inkubieren Sie die Zelle Monolagen mit Maus Anti-Vimentin und Kaninchen Anti-α-SMA-Antikörper Antikörper Verdünnungspuffer verdünnt (1 % Rinderserumalbumin + 0,3 % Triton x-100 mit PBS-Puffer) über Nacht bei 4 ° C, sanft schütteln auf einer Wippe.
   Hinweis: Negative Kontrollen bestand aus nicht konjugiert Maus IgG und Kaninchen IgG, unter Verwendung der gleichen Verdünnungen als der Prüflinge.
5. Am nächsten Tag die primären Antikörper 3 Mal mit PBS für 5 min jedes Mal abwaschen.
6. Inkubieren Sie die Zelle Monolagen mit Fluorophor-konjugierten Sekundärantikörper für 1 h bei Raumtemperatur, sanft schütteln auf einer Wippe.
7. 3 Mal mit PBS waschen und vorsichtig tweeze, Deckgläsern (die Ratte VICs enthalten) mit ein paar Zangen und Platz auf einem Deckgläschen mit 4', 6-Diamidino-2-Phenylindole (DAPI). Lassen Sie die Folien für mindestens 24 Stunden bei 4 ° C zu heilen, bevor die Visualisierung mit einem Fluoreszenzmikroskop.
8. Für Western-Blot Analyse Samen der Ratte, die Vics bei einer Dichte von 150.000 Zellen/Brunnen in 6 Well-Platten und in Kulturmedium bis 100 % konfluierende wachsen lassen.
9. Verwenden Sie 8 µg Protein zum Ausführen ein Western-Blot zur Messung des Ausdrucks der CD31 und Verunreinigungen VEC ausschließen.
   Hinweis: Ein standard-Western-Blot-Protokoll folgte bereits⁹beschrieben.
10. Gen Studien extrahieren Sie Ribonukleinsäure (RNA) mithilfe eines kommerziellen Kits nach den Richtlinien des Herstellers.
11. Erhalten cDNA mit reversen Transkription um zu messen, Zielgene Ausdruck mit Hilfe der Polymerase-Kettenreaktion (PCR) und Real-Time PCR (RT-PCR; auch bekannt als qPCR) mit grünen Fluorophor-Erkennung, mit Gapdh als Referenz gen, als zuvor ¹⁰beschrieben.
    1. Verwenden Sie das folgende Programm für PCR-Analysen: 1 Zyklus von 94 ° C für 3 min 30 Zyklen von 94 ° C für 30 s, 63 ° C für 30 s, 72 ° C für 35 s und schließlich 1 Zyklus von 72 ° C für 5 Minuten.
    2. Verwenden Sie das folgende Programm für qPCR-Analyse: 1 Zyklus von 95 ° C für 10 min, 40 Zyklen von 95 ° C für 15 s, 60 ° C für 1 min und einen zusätzlichen Kreislauf von 95 ° C für 1 min, 55 ° C für 30 s und 95 ° C für 30 s.
12. Führen Sie eine Gelelektrophorese PCR-Produkte mit einem 2 % Agarose-Gel in Tris/Borat/EDTA (TBE) Puffer zu analysieren.

(6) Ratte VIC Verkalkung Studien

1. Alizarin Rot S und biochemische Verkalkung Studien folgen Sie bitte säen und Verkalkung Richtlinien in Abschnitt 4 beschrieben.
2. Die Zelle Monolagen mit 5 % rote Alizarin S-Lösung auf einem Shaker, 20 min sanft schaukelnden Fleck. Anschließend waschen Sie 3 Mal mit destilliertem Wasser für 5 min jedes Mal. Bilder von jedem Bohrloch zu erwerben.
3. Um Ca Ablagerung zu quantifizieren, verwenden Sie eine biochemische Ca Assay Kit. Lauge Ca^{2 +} -Ionen mit 0,6 M Salzsäure (HCl) für 24 h bei 4 ° C, mit sanften Agitation.
4. Ernte der Überstand und messen die Ca-Konzentration über einen Ca-Assay kit (siehe Tabelle der Materialien) nach den Richtlinien des Herstellers.
5. Berechnen Sie die Calcium-Konzentration als Bruchteil der zellulären Gesamtprotein. Denaturieren Sie zelluläre Proteine aus der Zelle Monolagen mit 0,1 M Natronlauge (NaOH) + 0,1 % Sodium Dodecyl Sulfat (SDS). Bestimmen Sie die Gesamt-Protein-Konzentration mit einem Waschmittel kompatibel (DC) Protein Assay nach den Richtlinien des Herstellers.

Ergebnisse

Das Ziel dieses Protokolls war zu beschreiben, die Isolation der primären Ratte VICs und Kultur sie für in-vitro- Experimente der Verkalkung. Durch den Einsatz der oben beschriebenen Methode, Ratte VICs erfolgreich isoliert und für die Erforschung der Mechanismen verantwortlich für CAVD erweitert.

Ratte primäre VICs gemeinsam mit etablierten VIC Marker zu lokalisieren:

Der VIC-Phänotyp der isolierten Zellen wurde bestätigt durch Immunfluoreszenz durch Sondierung für den VIC-Marker: Vimentin und α-SMA (rot und grün, bzw. Abbildung 1A), und ist in Übereinstimmung mit früheren Berichte^11,12. Die repräsentative Negativkontrollen mit nicht konjugiert Maus und Kaninchen IgG sind in Abbildung 1 bdargestellt. Darüber hinaus wurde der Ausdruck des VIC-Wachstumsregulator TGFβ-1 und TGFβ-2 bestätigt mittels PCR-Analyse (Abbildung 1). Um zu bestätigen, dass die isolierte Ratte primäre VICs waren frei von endothelialen Verunreinigungen, Western-Blot Analyse wurde durchgeführt, um zu überprüfen, diese Ratte waren VICs negativ für die Endothelzellen Marker, CD31, Eckzahn mitral VECs als Positivkontrolle ( mit Abbildung 1).

Ca und Pi induzieren Ratte VIC Verkalkung:

Erhöhte systemischen Ca und/oder Pi Konzentrationen fahren in der Regel die Verkalkung der VICs in Vitro. Um das Potenzial der Verkalkung der isolierten Ratte VICs zu schätzen, waren die Zellen ausgesetzt erhöhten Ca und Pi, die pathologische Bedingungen Hyperkalzämie und Hyperphosphatämie ESRD-Patienten zu imitieren. Behandlung von VICs mit 2,7 mM Ca/2.5 mM Pi induzierte Verkalkung, wie bestimmt durch Alizarin Rot S Färbung für Ca Ablagerung (Abbildung 2A) und farbmetrische Bestimmung der Ca nach HCl Auswaschung (81 Falte; p < 0,05 mit der Student t-Test; Abbildung 2 b).

Veränderungen der Genexpression VIC Verkalkung zugeordnet:

Die Verkalkung der vaskulären Zellen in Vitro ist eine deutliche molekulare Profil zugeordnet. In der vorliegenden Studie, die Behandlung von VICs mit 2,7 mM Ca/2.5 mM Pi induziert eine deutliche Zunahme der mRNA Ausdruck der knochenbildenden Marker: Msh Homeobox 2, Msx2 (2,04 Falte ändern; p < 0,01; ( Abbildung 3A), alkalische Phosphatase, Alpl (1,49 Falte ändern; p < 0,001; Abb. 3 b), und Phosphoethanolamine/Phosphocholin Phosphatase, Phospho1 (4.7 Falte ändern; mit One-Way ANOVA p < 0,01; Abbildung 3). Der Ausdruck der knochenbildenden Marker, Runx2und Verkalkung Inhibitor Ectonucleotide Pyrophasphatase, Enpp1, blieb jedoch unverändert (Abbildung 3D–E).

Abbildung 1: Ausdruck von VIC Markern. (A) Immunfluoreszenz zeigt doppelte Färbung und NS1 der Alpha-Glattmuskel Aktin (α-SMA; grün) und Vimentin im Ventil interstitiellen Zellen (VICs). (B) repräsentatives Bild der Negativkontrollen mit Maus und Kaninchen IgG. Kerne sind in blau mit 4', 6-Diamidino-2-Phenylindole (DAPI) gefärbt. Maßstabsleiste = 50 µm. (C) das Vorhandensein der Umwandlung Wachstumsfaktor Beta 1 (TGFβ-1) und TGFβ-2 in VICs (Bahnen 1 - 3) Dargestellt durch PCR-Analyse. Bahn 4 ist das Wasser-Steuerelement. Referenz-gen verwendet wurde Gapdh. (D) Western-Blot Analyse zeigt den reichlichen Ausdruck von CD31 in Eckzahn Mitralklappe Endothelzellen (VECs) im Vergleich zu keinen Ausdruck in VICs. Bitte klicken Sie hier für eine größere Version dieser Figur.

Abbildung 2. In-vitro- Verkalkung der Ratte VICs. Ca-Ablagerung in VICs behandelt mit 2,7 mM Ca/2.5 mM Pi bestimmt: (A) Foto zeigt Alizarin Rot S ganze Zelle Monoschichten in den Brunnen und (B) farbmetrische Bestimmung der Ca nach HCl Auslaugung Färbung. Der Student t-Test wurde durchgeführt, um die Bedeutung zwischen den beiden Gruppen zu analysieren. Ergebnisse werden wie meine ± S.E.M *p < 0,5 verglichen mit Kontrolle; (n = 4).

Abbildung 3. Veränderungen der Genexpression mit VIC Verkalkung verbunden. Falte in der mRNA Expression von knochenbildenden Marker zu ändern, (A) Msx2, (B) Alpl, (C) Phospho1, (D) Runx2und (E) Enpp1 in VICs behandelt mit 2,7 mM Ca/2.5 mM für Pi 48 h. mRNA Ausdruck erscheint als Falte Änderung im Vergleich zu den endogenen Referenz-gen Gadph. Einfache ANOVA mit allgemeines lineares Modell mit paarweisen Vergleiche wurde durchgeführt, um die Bedeutung zwischen mehreren Gruppen zu analysieren. Ergebnisse werden wie meine ± S.E.M **p < 0,01; p < 0,001 im Vergleich zur Kontrolle; (n = 6). Bitte klicken Sie hier für eine größere Version dieser Figur.

Anzahl der Klappensegel	Kultur-Platte/Kolben
9 bis 15	1 in 12-Well-Platte
15 bis 30	1 in 6-Well-Platte
30 +	T25

Tabelle 1. Allgemeine Richtlinien für die Anzahl der Prospekte für die erste Aussaat erforderlich.

Diskussion

Dieses ausführliche Protokoll beschreibt eine praktische Methode zur Erfassung von primären Ratte VICs, wodurch die Isolation dieser Zellen von Ratte Herzklappen durch enzymatische Verdauung. Unsere Methode weiter unterstützt und erweitert die Nutzung eines zuvor gemeldeten Ratte in Vitro Modell Aortenklappe Verkalkung¹³zu studieren. Die Isolierung von VICs von der Aortenklappe stellt das Potential für Verunreinigung von benachbarten VECs. Unsere Immunfluoreszenz Daten bestätigen jedoch, dass der erste Verdauung Schritt um die VECs Rendern die isolierten Zellen negativ für die Endothelzellen Marker, CD31 zu entfernen. Darüber hinaus bestätigt α-SMA Färbung den aktivierten Phänotyp VICs, was für Verkalkung¹²erforderlich ist.

VIC Isolationen zuvor gemeldet wurden großen Tiermodelle^6,7,8. Diese Arten sind jedoch durch die genetischen und molekularbiologischen Werkzeugen für nachgeschaltete Studie sowie deren eingeschränkte Zugänglichkeit in den Labors auf der ganzen Welt zur Verfügung eingeschränkt. Im Gegensatz dazu sind solche Tools etabliert in leicht zugänglich Nagetiere und daher die Fähigkeit, Ratte abgeleitet VICs ermöglicht eine größere Kapazität der Versuchsplanung isolieren. Die Benutzung von VICs aus jungen Ratten bedeutet auch, dass die Zellen relativ mehr proliferative als ältere Ratten, erfordert daher weniger Tiere mehr Zellen zu liefern. Obwohl Mäuse ohne weiteres zugänglich sind, aber aufgrund von Mäusen vor allem kleinere Herzen, die Isolation der primäre Maustaste VICs wäre mehr Zeit in Anspruch und wesentlich mehr Tiere wäre erforderlich, um die gleiche Ausbeute an Zellen als die Rattenmodell zu isolieren.

Ein wesentlicher Vorteil dieser beschriebene Vorgehensweise ist, dass VICs zeitlich vom Wildtyp und transgene Ratten sowie Ratte Modelle von Herz-Kreislauf-Krankheiten und Ventil Verletzungen isoliert werden können. Mit der Rattenmodell würde erfordern eine größere Anzahl von Tieren für groß angelegte Versuche daher, um Tierversuche zu reduzieren, primäre Ratte VICs umgewandelt werden kann, um eine Zelllinie zu produzieren, sobald es gut charakterisiert worden ist.

Während die schweren klinischen Implikationen der CAVD allgemein anerkannt sind, müssen die zugrunde liegenden ursächlichen Mechanismen noch bestimmt werden. Darüber hinaus präsentieren wirksame Medikamente, die Therapien, die verhindern, dass potenziell heilen Verkalkung der Aortenklappe können nicht verfügbar sind. Die Kultur von VICs unter kalzifizierende Bedingungen bietet daher eine hochrelevante in Vitro Modell der CAVD. Wir zeigen, dass erhöhte Ca und Pi-Werte der in-vitro- Verkalkung der isolierten Ratte VICs mit einem gleichzeitigen Anstieg der Ausdruck der knochenbildenden Gen Marker Msx2, Alplund Phospho1induzieren. Weit feststeht, dass diese Marker des pathologischen Prozesses Gefäßverkalkung^14,15,16zugeordnet sind. Unsere Daten zeigen also, dass die Kultur der Ratte VICs in Kalkschalen Medium ein geeignetes Modell zur Aortenklappe Verkalkung in-vitro-Studie. Aktuelle Studien aus unserem Labor verwendet in der Tat, haben dieses Modell zu zeigen, dass Ca Verkalkung der Aortenklappe durch Annexin VI Anreicherung von VIC abgeleitet Matrix Vesikel¹⁷fördert.

Trotz der Vorteile der Verwendung von Ratte VICs und deren effiziente Charakterisierung gibt es noch einige Einschränkungen. Zuerst, VIC Einwohnerzahl innerhalb Ratte Ventile ist sehr klein, und daher viele Tiere sind notwendig, um ausreichende Zellzahlen für umfangreiche in-vitro- Studien zu generieren. Es ist jedoch möglich, diese Beschränkung zu überwinden, indem Unternehmen Vorstudien in verewigt Ventil interstitielle Zelllinien, wie vor kurzem von uns^{18 berichtet}, und anschließend mit Primärkulturen zu überprüfen und diese Erkenntnisse zu erweitern.

Zusammenfassend lässt sich sagen erklärt die beschriebene Methode erfolgreich isoliert, Kultur und Verkalkung der primären Ratte VICs, die anschließend bewertet werden kann, mit einer Vielzahl von Analysen sowie biochemischen Assays, Protein und RNA. Dieses Modell bietet eine zuverlässige und komfortable System, in dem CAVD in Vitrountersucht und stellt ein wertvolles Instrument für die Untersuchung der molekularen Mechanismen für diese zerstörerische Krankheit verantwortlich.

Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien

Name	Unternehmen	Katalognummer	Kommentare
Sezierschere	World Precision Instruments	14393	Autoklav vor Gebrauch.
Feder gerade (8 mm Klinge)	World Precision Instruments	15905	Autoklav vor dem Gebrauch.
SuperFine Vannas Schere (5 mm Klinge, 8 cm)	World Precision Instruments	14003	Autoklav vor dem Gebrauch.
Dumont #5 Pinzette (11 cm)	World Precision Instruments	500342	Autoklav vor dem Gebrauch.
DMEM-F12	Thermo Fisher Scientific	11320074
fötales Rinderserum	Thermo Fisher Scientific	10500064	vor der Zugabe zum Nährmedium filtern.
Gentamicin	Thermo Fisher Scientific	15710049
Absolutes Ethanol	Thermo Fisher Scientific	E/0650DF/17	destilliertem Wasser auf 70 % v/v verdünnen.
Salzsäure (HCl)	Thermo Fisher Scientific	H1150PB17	destilliertem Wasser auf 0,6 M verdünnen.
Natriumhydroxid (NaOH)	Thermo Fisher Scientific	UN1823	Mit destilliertem Wasser auf 0,1 M verdünnen.
DAPI	Thermo Fisher Scientific	P36931
Alexa Fluor 594 Ziegen-Anti-Maus-Antikörper	Thermo Fisher Scientific	A11005	1/250 Verdünnung in Antikörper-Verdünnungspuffer.
Alexa Fluor 488 Esel Anti-Kaninchen Antikörper	Thermo Fisher Scientific	A21206	1/250 Verdünnung in Antikörper-Verdünnungspuffer.
Superscript II Kit	Thermo Fisher Scientific	18064014
dNTP	Thermo Fisher Scientific	18427013
Random Primer	Thermo Fisher Scientific	P/N58875
Taq Polymerase Kit	Thermo Fisher Scientific	18038026
Tris/Borat/EDTA (TBE)	Thermo Fisher Scientific	AM9863	Verdünnen auf 1x mit vor Gebrauch entfeuchtetes Wasser.
Agarose	Thermo Fisher Scientific	16500	2% in 1x Tris/Borat/EDTA(TBE).
Lysepuffer (RIPA)	Thermo Fisher Scientific	89900
T75 Kolben	Thermo Fisher	Scientific 156472
T175 Kolben	Thermo Fisher Scientific	159920
qPCR Platten	Thermo Fisher Scientific	AB0990
Rat Msx2 Primer	Qiagen	QT01084090
Rat Alpl Primer	Qiagen
Ratte Enpp1 Primer	Qiagen	QT00181426
RNeasy Minikit	Qiagen	74104
6-Well-Platten	Sigma	CLS3516
T25 Kolben	Sigma	CLS430639
Monobasisches Phosphat	Sigma	S5011
Dibasisches	Phosphat Sigma	S5136
Calciumchlorid	Sigma	C1016
Natriumdodecylsulfat (SDS)	Sigma	5030	Mit 0,1 % NaOH auf 0,1 % verdünnen.
Paraformaldehyd	Sigma	P6148	Mit PBS auf 4% verdünnen.
Triton X100	Sigma	X100
Rinderserumalbumin (BSA)	Sigma	A3059
Alizarin rot S	Sigma	A5533	Mit destilliertem Wasser bis zu 2 % herstellen und auf pH 4,2 einstellen.
TGFβ-1 Primerpaar: f: GCTACCATGCCAACTTCTGT r: TGTGTTGGTTGTAGAGGGCA	Verwendete Sigma-Konzentration		: 10 μ M
TGFβ-2 Primerpaar: f: GAAGGCAGAGTTCAGGGTCT r: CGCTGGGTTGAGATGTTAG	Sigma		Verwendete Konzentration: 10 μ M
Monoklonales Anti-β-Aktin− Peroxidase-Antikörper, hergestellt in der Maus	Sigma	A3854	1/50000, Verdünnung in 5 % BSA in Tris-gepufferter Kochsalzlösung + 0,1 % Tween (TBS/T).
Maus-Anti-Vimentin-Antikörper	Sigma	v6389	1/900 Verdünnung in Antikörperverdünnungspuffer (1x phosphatgepufferte Kochsalzlösung (PBS), 1% Rinderserumalbumin (BSA), 0,3% Triton X-100).
Maus-IgG	Sigma	I5381	Vor der Verdünnung in Antikörperverdünnungspuffer auf die gleiche Stammkonzentration wie Maus-Antivimentin-Antikörper verdünnt.
Kaninchen-IgG	GeneTex	GTX35035	Vor der Verdünnung in Antikörperverdünnungspuffer auf die gleiche Stammkonzentration wie Kaninchen-Anti-Α-Aktin-Antikörper für die glatte Muskelmuskulatur verdünnt.
Kaninchen Anti-Α-Aktin-Antikörper für glatte Muskeln	Abcam	ab5694	1/200 Verdünnung in Antikörper-Verdünnungspuffer.
Kaninchen Anti-CD31	Abcam	ab28364	1/50 Verdünnung in 5% BSA inTBS/T.
HRP-konjugierter Ziegen-Anti-Kaninchen-Antikörper	Dako	P0448	1/3000 Verdünnung in 5% BSA in TBS/T.
Collagenase II	Worthington	41512862	destilliertem Wasser auf 425 U/ml einstellen und dann filtrieren.
SYBR grüner Mastermix	Primerdesign	PrecisionPLUS-MX-SY
Calcium-Assay-Kit	Randox	CA590
DC Protein-Assay-Kit	Bio-Rad	5000111 ECL-Reagenz
	GE Healthcare	RPN2109
Hyperfilm ECL	GE Healthcare	28906837
Nitrozellulosemembran	GE Healthcare
PCR-Leiter	Bioline	BIO-33057
Ladefarbstoff für die Gelelektrophorese	New England Biolabs	B7025S
Spritzenvorsatzfilter (0,22 μ m)	Merck Millipore	SLGP033RS
Deckgläser Wissenschaftlicher	Laborbedarf LTD	MIC3100
Hämatozytometer	Marienfeld Superior	640030
Name	Unternehmen	Katalognummer	>
Kamera eingestellt für Alizarin rot Bilder:
Kamera	Nikon D800
Objektiv	Nikon AF_s Micro, Nikko 105 mm, 1:2.8 GED
Dissektionszange 10 cm, gebogene Enden	World Precision Instruments	15915	Autoklav vor Gebrauch.