Site-verwiesene Immobilisierung von Knochen morphogenetische Protein 2 an feste Oberflächen durch Click-Chemie

Zusammenfassung

Biomaterialien, dotiert mit Knochen morphogenetische Protein-2 (BMP2) wurden als neue therapeutische Strategie zur Pseudarthrose Knochenbrüche zu heilen. Um Nebenwirkungen durch eine unkontrollierbare Freigabe des Faktors zu überwinden, schlagen wir eine neue Strategie zur Website-Faktors, wodurch Materialien mit verbesserten osteogene Funktionen direkt zu immobilisieren.

Zusammenfassung

Verschiedene therapeutische Strategien für die Behandlung von nicht heilenden lange Knochendefekte wurden intensiv untersucht. Derzeit verwendeten Behandlungen vorhanden mehrere Einschränkungen, die auf die Verwendung von Biomaterialien in Kombination mit knochenbildenden Wachstums-Faktoren, wie zum Beispiel Knochen morphogenetische Proteine (BMPs) geführt haben. Häufig verwendete Absorption oder Kapselung Methoden erfordern supra-physiologischen BMP2, was in der Regel in einem so genannten ersten Ausbruch-Release-Effekt, der mehrere schwere Nebenwirkungen hervorruft. Eine mögliche Strategie, um diese Probleme zu überwinden wäre, das Protein kovalent zum Schafott zu koppeln. Darüber hinaus sollten Kupplung in gewissem Sinne ortsspezifische durchgeführt werden, um einen reproduzierbaren Produkt Ergebnis zu garantieren. Deshalb haben wir eine BMP2 Variante, in der eine künstliche Aminosäure (Propargyl-L-Lysin) in den Reifen Teil des Proteins BMP2 Codon Usage Expansion (BMP2-K3Plk) eingeführt wurde. BMP2-K3Plk wurde an funktionalisierten Perlen durch Kupfer katalysierten Azid-Alkinen Cycloaddition (CuAAC) gekoppelt. Die biologische Aktivität des gekoppelten BMP2-K3Plk wurde in Vitro nachgewiesen und die knochenbildenden Aktivität der BMP2-K3Plk-funktionalisiert Perlen wurde in zellbasierte Assays nachgewiesen. Die funktionalisierten Perlen in Kontakt mit C2C12 Zellen konnten Expression der alkalischen Phosphatase (ALP) in lokal begrenzten Nähe des Wulstes induzieren. Damit, mit dieser Technik funktionalisierten Gerüste hergestellt werden können, können die Zelldifferenzierung in Richtung einer osteogene Abstammung auslösen. Darüber hinaus sind niedrigere BMP2 Dosen ausreichend durch die kontrollierte Ausrichtung der Site-verwiesene gekoppelten BMP2. Mit dieser Methode sind BMPs immer ihre Rezeptoren auf der Zelloberfläche in der entsprechenden Ausrichtung ausgesetzt, die nicht der Fall ist, wenn die Faktoren über Site-verwiesene Kopplungstechniken gekoppelt sind. Das Produkt Ergebnis ist höchst steuerbar und somit Ergebnisse in Materialien mit homogenen Eigenschaften, verbessern ihre Anwendbarkeit für die Reparatur von kritischen Größe Knochen Defekte.

Einleitung

Das ultimative Ziel des Tissue Engineering und Knochen Knochenregeneration ist die Überwindung der Nachteile und Einschränkungen bei gemeinsamen Behandlungen der Pseudarthrose Frakturen auftreten. Auto oder allo-Transplantationen werden vorwiegend als aktuelle Therapiestrategien eingesetzt, obwohl sie beide mehrere Nachteile haben. Die ideale Knochentransplantat sollte Osteogenesis durch Osteoinduction sowie Osteokonduktion, führend zu die Osteointegration des Transplantats in den Knochen induzieren. Heute ist nur Auto-Transplantation als der "Goldstandard" betrachtet, da es alle Eigenschaften eines idealen Knochentransplantat bietet. Leider stellt es auch wichtige negative Aspekte, wie langen OP-Zeiten und eine zweite Trauma-Website, die in der Regel mehr Komplikationen (z.B., chronische Schmerzen, Hämatom Formationen, Infektionen, kosmetische Fehler, etc.) mit sich bringt. Allogene Transplantate, haben auf der anderen Seite suboptimale Eigenschaften für alle allgemeines¹. Alternative Bone Graft Technologien wurden in den letzten Jahren, mit dem Ziel, die Gerüste herstellen osteoinduktiv, osteokonduktiv, biokompatibel, und bioresorbierbaren verbessert. Da viele Biomaterialien nicht all diese knochenbildenden Merkmale zeigen, wurden verschiedene Wachstumsfaktoren, vor allem BMP2 und BMP7, aufgenommen um das osteogene Potenzial des bestimmten Gerüst²zu verbessern.

Als ein wesentliches Kriterium sollten solche Wachstumsfaktor-Delivery-Systeme eine kontrollierte Dosis Version im Laufe der Zeit bereitstellen, um die wesentlichen Ereignisse wie Zelle Rekrutierung und Bindung, Zelle Einwachsen und Angiogenese zu erleichtern. Jedoch immobilisiert BMPs sowie andere osteogene Wachstumsfaktoren wurden häufig nicht kovalent³. Verlockende Falle und Adsorption Techniken erfordern den Einsatz von supra-physiologischen Mengen an Protein durch einen ersten Ausbruch-Freisetzung, führt zu schweren Nachteilen in-vivo, in der Regel Auswirkungen auf das umliegende Gewebe durch Induktion Knochen Wucherung, Osteolyse, Schwellung und Entzündung⁴. Somit kann die Beibehaltung der Wachstumsfaktoren an der Lieferstelle für längere Zeit durch kovalente Immobilisierung Methoden erreicht werden. BMP2 chemisch modifiziert (Succinylated⁵, Schimmelpilzschäden⁶ oder biotinylierte⁷) entwickelt Heterodimere⁸oder BMP2 abgeleiteten Oligopeptide⁹ entwickelt und verwendet, um die Beschränkungen zu überwinden wurden im Zusammenhang mit Absorption. Die Bio-Aktivität diese Konstrukte ist jedoch nicht vorhersehbar, da die Anordnung möglicherweise die Bindung des immobilisierten Liganden an den zellulären Rezeptoren hemmt. Wie zuvor dargestellt ist es wichtig, dass alle vier Rezeptor-Ketten beteiligt an der Gründung der aktivierten Ligand-Rezeptor-Komplexe mit den immobilisierten BMP2 interagieren, um vollständig alle nachgelagerten Signalisierung Kaskaden¹⁰aktivieren.

Um die Probleme der inhomogenen Produkt Ergebnis mit Einschränkungen in Bezug auf die Bioaktivität, Stabilität und Bioverfügbarkeit von immobilisierten Faktor zu überwinden, entwarfen wir eine BMP-Variante kovalent binden Gerüste in gewissem Sinne Seite gerichtet. Diese Variante, genannt BMP2-K3Plk umfasst eine künstliche Aminosäure, die durch genetische Codon Erweiterung¹¹eingeführt wurde. Diese Variante wurde erfolgreich für Gerüste mit einer kovalenten Kupplung Strategie und gleichzeitig seine biologischen Aktivität verbunden.

Protokoll

(1) Herstellung von BMP2 Variante BMP2-K3Plk

1. Klonen von BMP2-K3Plk von Site-verwiesene Mutagenese mittels PCR ¹²
   1. Menschliche Reife BMP2 zu verstärken (hmBMP2) aus einer p25N-hmBMP2-Vektor (siehe Tabelle der Materialien) mit einem forward Primer (5' GACCAGGACATATGGCTCAAGCCTAGCACAAACAGC 3') und eine rückwärts-Primer (5' CCAGGAGGATCCTTAGCGACACCCACAACCCT 3') Einführung einer Bernstein Stop-Codon ( TAG) an der Position der ersten Lysin Reife Teil BMP2´s. Durchführung der PCR-Reaktion mit 33,5 µL H₂O, 10 µL des PCR-Reaktion-Mix, 1,5 µL 10 µM dNTP Stammlösung, 1,5 µL forward Primer (10 Pmol/µL), 1,5 µL des rückwärts-Primer (10 Pmol/µL) 1 µL p25N-hmBMP2 (10 ng/µL) , und 1 µL DNA-Polymerase (siehe Tabelle der Materialien) in einem Thermocycler (Denaturierung bei 95 ° C für 5 min, 30 Zyklen der Denaturierung bei 95 ° C für 1 min, Glühen bei 60 ° C für 1 min, Dehnung bei 72 ° C für 1 min und eine letzte Verlängerung bei 72 ° C für 10 min).
   2. Das PCR-Produkt mit einem kommerziell erhältlichen Kit nach Empfehlungen des Herstellers zu reinigen (siehe Tabelle der Materialien).
   3. Das PCR-Produkt mit dem Restriktionsenzym NdeI bei 37 ° C für 45 min. mit 16 µL von H₂O, 3 µL der Verdauung Puffer, 10 µL DNA zu verdauen (20 ng/µL) und 1 µL Restriktionsenzym. Hitze-inaktivieren das Enzym bei 65 ° C für 5 min. verdauen das PCR-Produkt mit dem Restriktionsenzym BamHI bei 37 ° C für 1 h mit 16 µL von H₂O, 3 µL der Verdauung Puffer, 10 µL DNA (20 ng/µL) und 1 µL Restriktionsenzym. Inaktivieren Sie Hitze-Enzym bei 80 ° C für 5 min.
   4. Die pET11a-PyrtRNA-Vektor mit NdeI bei 37 ° C für 2 h 45 min mit 16 µL von H₂O, 3 µL der Verdauung Puffer, 10 µL DNA zu verdauen (20 ng / µL), und 1 µL Restriktionsenzym. Hitze-inaktivieren bei 65 ° C für 5 min. verdauen den pET11a-PyrtRNA-Vektor mit BamHI bei 37 ° C für 1 h mit 16 µL von H₂O, 3 µL der Verdauung Puffer, 10 µL DNA (20 ng/µL) und 1 µL Restriktionsenzym. Wärme bei 80 ° C für 5 min zu inaktivieren.
   5. Unverdaute Vektor den verdauten Vektor trennen und Verdauung Reste von Agarose gel Elektrophorese (0,8 % Agarose, 60 min bei 100 V). Verbinden Sie den verdauten BMP2-K3TAG-Einsatz mit verdaute pET11a-PyrtRNA Rückgrat bei Raumtemperatur (RT) für 2 h mit 100 ng pET11a PyrtRNA Rückgrat und 34,5 ng BMP2-K3TAG einfügen (molares Verhältnis 1:3). Das Reaktionsgemisch enthält das DNA-Rückgrat und einfügen "," 2 µL Ligase Puffer, 1 µL DNA Ligase und H₂O auf ein Gesamtvolumen von 20 µL.
   6. Führen Sie eine Co-Transformation des pET11a-PyrtRNA-BMP2-K3Plk und pSRF-Duett-PyrtRNAsynth in BL21(DE3) Bakterien:
      1. Fügen Sie 50 ng jedes Plasmid für Bakterien, legen Sie die Mischung auf Eis für 30 min, Hitzeschock bei 42 ° C für 50 s, für 5 min auf Eis legen, 500 µL Lysogeny Brühe (LB)-Medium in der Mischung hinzufügen und bei 300 u/min 60 min schütteln.
      2. 100 µL der bakteriellen Mischung auf vorgewärmten Kanamycin (50 µg/mL) zu verbreiten / Ampicillin (100 µg/mL) Platten, und über Nacht bei 37 ° c inkubieren
2. Expression und Reinigung von BMP2-K3Plk ^{13 , 14}
   1. Propagieren Sie eine einzige Kolonie über Nacht in 50 mL LB-Medium mit 50 µg/mL Kanamycin und 100 µg/mL Ampicillin bei 37 ° C.
   2. Verdünnen Sie Übernachtung Kulturen 01:20 in 800 mL tolle Brühe (TB) Medium mit 50 µg/mL Kanamycin und 100 µg/mL Ampicillin ergänzt, und bei 37 ° C zu wachsen Sie, bis ein OD₆₀₀ von 0,7 erreicht ist. Fügen Sie Propargyl-L-Lysin, eine Endkonzentration von 10 mM. Sammeln Sie 100 µL Probe aus der Kultur vor Isopropyl-β-D-1-Thiogalactopyranoside (IPTG) Induktion.
   3. Gen-Expression durch die Zugabe von IPTG in einer Endkonzentration von 1 mM zu induzieren. Wachsen Sie die Kultur bei 37 ° C in einem Orbitalschüttler mit 180 u/min 16 h. Sammeln Sie 100 µL Probe aus der Kultur.
   4. Zentrifugieren der ganzen Kultur 9000 X g für 30 min. verwerfen des Überstands und Aufschwemmen der bakteriellen Pellets in 30 mL TBSE Puffer (10 mM Tris, 150 mM NaCl, 1 mM Ethylenediaminetetraacetic Säure (EDTA)) mit 1: 1000 (V/V) 2-Mercaptoethanol (frisch hinzugefügt).
      Achtung: Griff 2-Mercaptoethanol unter dem Abzug. Vermeiden Sie Kontakt mit Haut und Augen. Vermeiden Sie das Einatmen von Dampf oder Nebel. Alle Schritte Wiederfreisetzung mit Puffern mit 2-Mercaptoethanol unter dem Abzug.
   5. Eine leere Zentrifuge Becher wiegen und die resuspendierte Pellet in den leeren Becher zu übertragen. Zentrifugieren bei 6.360 x g für 20 min. überstand verwerfen und wiegen das Becherglas mit dem Pellet. Ziehen Sie das Gewicht des leeren Bechers um das Gewicht des Geschosses zu berechnen.
      Hinweis: Das Protokoll kann hier angehalten werden. Frieren Sie die Pellets bei-20 ° C kurzfristig oder bei-80 ° C auf lange Sicht. Tauen Sie bei der Wiederaufnahme des Protokolls die Pellets bei RT
   6. Aufzuwirbeln Sie das Pellet in STE-Puffer (10 mM Tris pH 8,0; 150 mM NaCl; 1: 1000 (V/V) 2-Mercaptoethanol (frisch hinzugefügt), 1 mM EDTA, 375 mM Saccharose). Verwenden Sie 200 mL STE Puffer für je 10 g Pellets.
   7. Beschallen Sie die Suspension auf Eis (10 min mit 40 s Puls, 20 s-Bremse und 30 % Amplitude). Zentrifugieren bei 6.360 x g für 20 min. überstand verwerfen und wiegen das Pellet. Wiederholen Sie die Beschallung und Zentrifugation Schritte 4 Mal.
   8. Das Pellet in 100 mL TBS-Puffer (10 mM Tris, 150 mM NaCl) aufzuwirbeln. Zentrifugieren bei 6.360 x g für 20 min. überstand verwerfen und wiegen Pellet.
   9. Aufschwemmen das Pellet in Nuklease Puffer (100 mM Tris, 1 mM EDTA, 3 mM MgCl₂) mit frisch hinzugefügten 80 U/mL Nuklease (z.B.Benzonase) mit 10 mL/g Pellets. Inkubieren Sie die Suspension über Nacht bei RT auf eine mitreißende Platte (30 u/min).
   10. Triton Puffer (60 mM EDTA, 1,5 M NaCl, 6 % (V/V) 4-(1,1,3,3-Tetramethylbutyl) Phenyl-Polyethylenglykol) an der Aufhängung. Das Volumen der Triton Puffer hinzufügen entspricht 0,5 Volumen Teil der Federung. 10 min bei RT (nicht gerührt) inkubieren. Zentrifugieren bei 6.360 x g für 20 min. überstand verwerfen und wiegen das Pellet.
   11. Aufschwemmen das Pellet in TE-Puffer (100 mM Tris, 20 mM EDTA) mit 8 mL/g Pellets. Zentrifugieren bei 6.360 x g für 20 min. überstand verwerfen und wiegen das Pellet.
   12. Aufschwemmen der Pellets durch Zugabe von 4 mL/g 25 mM NaAc pH 5,0 und 5 mL/g von 6 M GuCl mit 1 mM Dithiothreitol (DTT) (frisch hinzugefügt). Inkubieren Sie die Suspension über Nacht bei 4 ° C auf eine mitreißende Platte (30 u/min).
   13. 75.500 x g für 20 min zentrifugieren. Der Überstand enthält nun das entfaltete Monomere BMP2 Protein. Sammeln Sie die überstand und Konzentrat dieser Extrakt 20 OD/ml mit einer 3 kDa Molekulargewicht (MWCO) Cut-off Membran in einer Konzentration Zelle (siehe Tabelle der Materialien).
   14. Hinzufügen der konzentrierten Monomere in einzelne Tropfen des Renaturierung Puffers (2 M LiCI, 50 mM Tris, 25 mM CHAPS, 5 mM EDTA, 1 mM Glutathion-Disulfid (GSSG), 2 mM Glutathion (GSH)) rühren (30 u/min). 120 h im Dunkeln bei RT inkubieren.
       Hinweis: Während dieses Inkubationszeit Umfaltung Occours. Die Lösung von diesem Schritt ab enthält die gefalteten dimeres BMP2-K3Plk.
   15. Stellen Sie den pH-Wert der Lösung bis 3.0 mit konzentrierter HCl. Dialyze die Lösung gegen 1 mM HCl. Konzentrat der dialysierten Lösung mit einer 10 kDa Molekulargewicht (MWCO) Cut-off Membran in eine konzentrierende Zelle.
   16. Equilibrate die Lösung durch Zugabe von Puffer A (20 mM NaAc, 30 % Isopropanol). Fügen Sie ein Volumen von Puffer A entspricht einem 30 % Volumen der Lösung. Zentrifugieren Sie die Lösung bei 4700 X g für 15 min.
   17. Equilibrate der Spalte für Ionenaustausch auf ein schnelles Protein Flüssigkeitschromatographie (FPLC) System¹⁵ mit 150 mL Puffer A. Last die Proteinlösung auf die äquilibriert Säule. Brüche mit einem linearen Farbverlauf des Puffers B (20 mM NaAc, 30 % Isopropanol, 2 M NaCl) eluieren mit 100 mL Puffer B. sammeln 2 mL Fraktionen.
       Hinweis: Konzentrieren Sie sich das Protein vor der Verladung in die Spalte nach der Spalte "Gesamt" Volumen. Das endgültige Protein-Laufwerk sollte < 5 % der Spalte "Gesamt".
   18. 20 µL der einzelnen Fraktionen durch die SDS-Polyacrylamid-Gel (12 %)-Elektrophorese (SDS-PAGE) ¹⁶ und Coomassie Brilliant Blue Färbung¹⁷ (siehe Tabelle der Materialien) zu analysieren.
       Hinweis: Die Coomassie Brilliant Blue gebeizt SDS-PAGE Gel zeigt Brüche, Dimere (26 kDa) und Brüche mit Monomeren (13 kDa) enthalten.
   19. Dimer-haltige Fraktionen zu bündeln. Dialyse am Pool Dimer mit Fraktionen über Nacht bei 4 ° C gegen 1 mM HCl (5 Liter Volumen). Das fertige Produkt mithilfe einer 10 kDa Konzentration zentrifugale Filtereinheit zu konzentrieren (siehe Tabelle der Materialien). Analysieren Sie das Endprodukt durch SDS-Polyacrylamid (12 %) Gelelektrophorese (SDS-PAGE) und Coomassie Brilliant blau färben.
       Hinweis: Die Band auf die Coomassie Brilliant blau gebeizt SDS-PAGE Gel sollte nur ein Band auf 26 kDa zeigen. Dies ist das Endprodukt der BMP2-K3Plk.

2. Optimierung des Kupfers (I)-katalysierte Alkinen-Azid Cycloaddition (CuAAC) Bedingungen

1. Wirkung von Natrium-Ascorbat (NaAsc) und Kupfer (II) Sulfat (CuSO ₄ ) _{auf Wildtyp BMP2 (BMP2-WT)}
   1. Inkubieren 20 µM BMP2-WT mit unterschiedlichen Seitenverhältnissen der NaAsc CuSO₄. Verwenden Sie in einem Volumen von 50 µL 0,5 mM NaAsc und 0,5 mM CuSO₄ (ab Konzentration). Fahren Sie mit der folgenden Verhältnissen von NaAsc mit CuSO₄: (1:1), (1.7:1), (10:1), (20: 1), CuSO₄ Konzentration bei 0,5 mM konstant zu halten und die Konzentration der NaAsc entsprechend anpassen. Führen Sie die Reaktion in H₂O auf einem rotierenden Mischer (20 u/min) über Nacht bei RT
   2. Bereiten Sie reduzierte Proben vor, indem man laden Puffer mit 5 % 2-Mercaptoethanol und inkubieren Sie Probe bei 95 ° C 6 min. Analyze reduziert und nicht-reduzierte Proben von SDS-Polyacrylamid gel (12 %)-Elektrophorese (SDS-PAGE) und Coomassie Brilliant blau färben. Die Coomasie gebeizt SDS-PAGE Gelen zeigen Bands im Bereich von 13 kDa (reduzierte Conditons) 26 kDa und höherem Molekulargewicht (Bedingungen nicht reduziert).
2. Wirkung von Tris(3-hydroxypropyltriazolylmethyl) Amin (THPTA) auf der CuAAC-Reaktion
   1. Inkubieren 20 µM BMP2-K3Plk mit unterschiedlichen Seitenverhältnissen der THPTA CuSO₄. Verwenden Sie 5 mM NaAsc und 200 µM 3-Azido-7-Hydroxycoumarin (NaAsc und 3-Azido-7-Hydroxycoumarin konstant halten). Als Konzentrationen ab verwenden Sie 50 µM THPTA und 0,5 mM CuSO₄ . Verwenden Sie unterschiedliche Verhältnisse der THPTA CuSO₄: (7:1); (10:1); (12:1); (15:1); (20:1). Reaktion in H₂O (50 µL Gesamtvolumen) für 24 h bei RT auf einem rotierenden Mischer (20 u/min) durchführen.
   2. Kupplung wird 3-Azido-7-Hydroxycoumarin ein Fluoreszenzfarbstoff. Proben in reduziert und nicht reduziert Bedingungen vorbereiten und Auswerten von SDS-PAGE. Visualisieren Sie die Gele unter der Erregung-Kanal mit der spezifischen Wellenlänge für die 3-Azido-7-Hydroxycoumarin (λ_abs = 404 nm; λ_Em = 477 nm).

(3) kovalente Kupplung Technik der BMP2-K3Plk zu Bleiazid funktionalisiert Agarose Korne

1. 2 h bei RT auf eine rotie inkubieren Sie 20 µM BMP2-K3Plk oder BMP2-WT (verwendet als Negativkontrolle) mit 20 µL der Azid-aktivierte Agarose Korne in einem Gesamtvolumen von 500 µL in Reaktion Puffer (0,1 M HEPES pH 7,0, 3,9 M Harnstoff, 50 µM CuSO₄, 250 µM THPTA, 5 mM Natrium Ascorbat) NG-Mixer (20 u/min). Stoppen Sie die Reaktion durch Zugabe von 5 mM EDTA (Endkonzentration).
2. 15 min auf einem rotierenden Mischer (20 u/min) bei RT inkubieren. Zentrifugieren Sie Proben bei 20.000 x g für 1 min bei RT. sammeln die Überstände.
3. Waschen Sie die Pellets mit Perlen dreimal mit 1.000 µL HBS₅₀₀ Puffer (50 mM HEPES, 500 mM NaCl), dreimal mit 1.000 µL 4 M MgCl₂und zwei Mal mit 1.000 µL Phosphat gepufferte Kochsalzlösung (PBS). Bei jedem Waschschritt Zentrifugieren bei 20.000 x g für 1 min bei RT und Überstände zu sammeln. Lagern Sie gekoppelte Perlen in 1.000 µL PBS bei 4 ° c
   Achtung: Bitte nicht stören Sie die Wulst Pellet beim Entfernen des Überstands.

4. überprüfen das Vorhandensein und die biologische Aktivität von immobilisierten BMP2-K3Plk mit Texas rot beschriftet BMP Rezeptor ich ein Ektodomäne (BMPR-IA _EG )

1. Inkubieren Sie 50 µL der BMP2-K3Plk funktionalisiert Perlen mit 1 µM Texas rot beschriftet BMPR-IA_EG mit 150 µL HBS₅₀₀ Puffer (50 mM HEPES, 500 mM NaCl) bei RT für 1 h auf einem rotierenden Mischer (20 u/min).
2. Zentrifugieren Sie die Perlen bei 20.000 x g für 1 min bei RT. verwerfen der Überstand. Waschen Sie die Perlen mit 1000 µL HBS₅₀₀ Puffer. Wiederholen Sie eine zusätzliche Waschschritt 3 Mal. Zentrifuge bei 20.000 x g für 1 min bei RT nach jedem Waschen Schritt.
3. Die Perlen in 500 µL PBS Aufschwemmen und 50 µL auf einen Glasobjektträger Deckel pipette. Setzen Sie den Mikroskop-Filter zwischen 561 oder 594 nm. Texas Red – BMPR-IA_EGzu erkennen – BMP2-K3Plk funktionalisiert Perlen mit Fluoreszenz-Mikroskopie und fotografieren.

5. Messung der alkalischen Phosphatase (ALP) Ausdruck, die In vitro- Bioaktivität der BMP2-K3Plk produziert vor und nach der Koppelung Reaktion zu beweisen.

1. Alkalische Phosphatase (ALP) assay
   1. Kultur Promyoblastic C2C12 Zellen (ATCC CRL-172) in Dulbeccos geändert Eagle Medium (DMEM) mit 10 % fetalen Kalb Serum (FCS), 100 U/mL Penicillin G und 100 µg/mL Streptomycin bei 37 ° C in eine feuchte Atmosphäre um 5 % CO₂.
   2. Samen Sie C2C12 Zellen bei einer Dichte von 3 × 10⁴ Zellen/Brunnen in einer 96-Well-Mikrotestplatte. Lassen Sie Zellen, die über Nacht legen. Medium zu entfernen und inkubieren Sie C2C12 Zellen in Anwesenheit von 0,5-200 nM BMP2-WT oder BMP2-K3Plk in 100 µL/Well des DMEM (2 % FCS, 100 U/mL Penicillin G und 100 µg/mL Streptomycin) bei 37 ° C in eine feuchte Atmosphäre bei 5 % CO₂ für 72 h.
   3. Entfernen Sie Medium zu und waschen Sie Zellen mit 100 µL PBS pro Bohrloch. Lösen Sie Zellen bei RT für 1 h mit 100 µL/Well der Lyse Puffer (1 % NP-40, 0,1 M Glycin, pH 9,6, 1 mM MgCl₂, 1 mM ZnCl₂) auf ein Schütteln Platte (220 u/min).
   4. Die Zelle lysate fügen Sie 100 µL/Well der ALP Puffer (0,1 M Glycin, pH 9,6, 1 mM MgCl₂, 1 mM ZnCl_{2 hinzu}) mit 1 mg/mL p-Nitrophenylphosphate (frisch hinzugefügt).
   5. Messung der Absorption bei 405 nm in einem multiplate Reader nach dem Hinzufügen der ALP-Puffer und alle 5 Minuten, bis die Entwicklung der Farbe abgeschlossen ist. Dosis-Wirkungs-Kurven und EC50-Werte mit einem logistischen Modell generieren y = A₂ + (₁-₂) / (1 + (X/x₀)^p).
2. Alkalische Phosphatase (ALP) Färbung
   1. Kultur Promyoblastic C2C12 Zellen (ATCC CRL-172) in Dulbeccos geändert Eagle Medium (DMEM) mit 10 % fetalen Kalb Serum (FCS), 100 U/mL Penicillin G und 100 µg/mL Streptomycin bei 37 ° C in eine feuchte Atmosphäre um 5 % CO₂.
   2. Samen Sie C2C12 Zellen bei einer Dichte von 3 × 10⁴ Zellen/Brunnen in einer 96-Well-Mikrotestplatte. Lassen Sie Zellen, die über Nacht legen. Entfernen Sie Medium zu, und fügen Sie 20 µL/Well BMP2-K3Plk gekoppelt Perlen. BMP2-K3Plk gekoppelt Perlen sind in 1000 µL einer PBS-Suspension.
   3. Bereiten Sie eine Lösung von 0,4 % niedriger Schmelzpunkt Agarose in DMEM. In der Mikrowelle (600 W für 3 min) schmelzen Sie und abkühlen Sie lassen in einem Wasserbad bei 37 ° C bis zur Verwendung.
   4. Fügen Sie 20 µL 0,4 % niedriger Schmelzpunkt Agarose in jede Vertiefung (Bedeckung Perlen und Zellen). Zentrifuge bei 2000 X g für 5 min bei 20 ° C. Fügen Sie 80 µL DMEM (2 % FCS, 100 U/mL Penicillin G und 100 µg/mL Streptomycin) und Inkubation bei 37 ° C in eine feuchte Atmosphäre bei 5 % CO₂ für 72 h.
   5. Entfernen Sie Mittel, ohne dabei die erstarrten 0,4 % Agarose trennen. Hinzufügen von Schritt 1 NBT 100 µL/Well/Substratlösung BCIP (Nitro-blau-Tetrazolium-Chlorid, 5-bromo-4-chloro-3'-indolyphosphate p-Toluidin-Salz).
   6. Analysieren Sie alkalische Phosphatase Färbung mit Lichtmikroskopie, sofort nachdem die violette Färbung erkennbar wird. Verwenden Sie helle Nahfeldmikroskopie und fotografieren.

Ergebnisse

In diesem Artikel beschreiben wir eine Methode, um eine neue Variante der BMP2, BMP2-K3Plk, kovalent an handelsüblichen Azid funktionalisiert Agarose Korne (Abbildung 1) zu koppeln. Die Bioaktivität der produzierten BMP2-K3Plk-Variante wurde durch die Induktion der Genexpression der alkalischen Phosphatase (ALP) in C2C12 Zellen überprüft. Der in-vitro- Test zeigt ähnliche ALP Ausdruck Ebenen induziert durch Wildtyp BMP2 (BMP2-WT) und BMP2-K3Plk (

Diskussion

Tagged Protein Variantenbildung durch genetische Codon Expansion ermöglicht die Einführung von verschiedenen nicht-natürliche Aminosäure-Analoga prinzipiell an jeder Stelle die primäre Proteinsequenz. Im Falle von BMPs wie BMP2, gemeinsame Stichwörter wie ein 6-Histidin (His)-Tag kann nur N-Terminal eingeführt, da die Protein´s C-terminalen Ende ist innerhalb der tertiären Proteinstruktur begraben, und somit nicht von außen zugänglich ist. An anderen Positionen kann die Größe des eingeführten Tags sehr wahrscheinlich bau...

Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien

Name	Unternehmen	Katalognummer	Kommentare
Material
1-Step NBT/BCIP	Thermo Fisher	34042	Lösung zu Zellen hinzufügen
3-Azido-7-hydroxycumarin	BaseClick	BCFA-047-1	Chemikalie für die Click-Reaktion
Agarose niedriger Schmelzpunkt	Biozym	840101	Agarose für ALP-Assay
Azid-Agarose-Kügelchen	Jena Bioscience	CLK-1038-2	Kügelchen für die Reaktion
verwendet BamHI (Fast Digest Enzym)	Thermo Fisher Scientific	FD0054	Restriktionsenzym
BMP-Rezeptor IA (BMPR-IAEC)	--	--Hergestellt	in unserem Labor
Coomassie Brilliant Blue G-250 Farbstoff	Thermo Fisher Scientific	20279	Chemikalie für die Brillantblaufärbung von SDS PAGE
Kupfer (II)-sulfat wasserfrei (CuSO4)	Alfa Aesar	A13986	Chemikalie für die Klickreaktion
DNA-Polymerase und Reaktionspuffer	Kapabiosystems	KK2102	KAPA HiFi PCR Kit
Dulbecco' s modifizierter Eagle" s Medium (DMEM) GlutaMAX	Gibco	61965-026	Zellkulturmedium
Ethylendiamintetraessigsäure (EDTA)	Sigma Aldrich GmbH	E5134-1kg	Chemikalie zum Stoppen der Klickreaktion
Isopropyl ß-D-1-thiogalactopyranosid (IPTG)	Carl Roth GmbH	2316.5	Bakterieninduktion (1mM Endkonzentration)
NdeI (Fast Digest Enzyme)	Thermo Fisher Scientific	ER0581	Restriktionsenzym
NHS-aktivierte Texas Red	Life Technologien	T6134	Gekoppelt an Rezeptor
P-Nitrophenylphosphat	Sigma Aldrich GmbH	N4645-1G	Alkalische Phosphatase
p25N-hmBMP2	--	-	-Plasmid freundlicherweise zur Verfügung gestellt von Walter Sebald an J. Nickel
pET11a-pyrtRNA	--	-	-Zur Verfügung gestellt vom Lehrstuhl für Pharmazie und Biopharmazie, Universität
Würzburg Propargyl-L-lysin (Plk)	--	--	Bereitgestellt vom Lehrstuhl für Pharmazie und Biopharmazie, Universität Würzburg
pSRFduet-pyrtRNAsynth	--	--	Zur Verfügung gestellt vom Lehrstuhl für Pharmazie und Biopharmazie der Universität Würzburg
Qiagen Gel Extraction Kit	Qiagen	28704	Gelaufreinigung
Qiagen PCR Aufreinigungskit	Qiagen	28104	PCR Aufreinigung
Natrium-L-ascorbat	Sigma Aldrich GmbH	A7631-100G	Chemikalie für die Click-Reaktion
T4 DNA Ligase	ThermoScientific	EL0011	Ligation
tris(3-hydroxypropyltriazolylmethyl)amin (THPTA)	BaseClick	BCMI-006-100	Chemikalie für die Click-Reaktion
4-(1,1,3,3-Tetramethylbutyl)phenyl-polyethylenglykol	Sigma Aldrich GmbH	X100-1L	Triton X 100
Name	Unternehmen	Katalognummer	Kommentare
Ausrüstung
Amicon konzentrierende Zelle 400 ml	Merck KGaA	UFSC40001	Konzentrationseinheit
Amicon Ultra-15 Zentrifugalfiltereinheiten	Merck KGaA	UFC901024	Konzentrierende Zentrifugaleinheit
Ä KTA avant FPLC &	Auml; KTA	--FPLC	Maschine
Avanti J-26XP	Beckman Schar	393124	Zentrifuge für Bakterienkulturen
Bakterien-Schüttel-Inkubator	Infors HT		Schüttel-Inkubator für Bakterienkultur
FluorChem Q-System	proteinsimple	--	Bildgebungs- und Analysesystem für SDS-PAGE
Fluoreszenz-Mikroskop	Keyence	BZ-9000 (BIOREVO)
Fraktogel® EMD SO3- (M)	Merck KGaA	116882	Ionenaustauscherchromatographie Säulenmaterial
Greiner CELLSTAR®   96-Well-Platten	Sigma	M5811-40EA	96-Well-Platten für die Zellkultur (ALP-Assay)
Heraeus Multifuge X1R	ThermoScientific	--	Zentrifuge
M-20 Mikrotiterplatten-Ausschwingschaufel Rotor	ThermoScientific	75003624	Rotor für Mikrozentrifuge für Platte während der ALP-Färbung
Mikrozentrifuge - 5417R	Eppendorf	--	Zentrifuge
OriginPro 9,1 G	OriginLab	-	Software für die stastische Analyse von ALP-Assay-Daten
Polysine Slides	ThermoScientific	10143265	Objektträger
Rotor JA-10	Beckman Coulter	--	Rotor für Avanti J-26XP Zentrifuge
Rotor JLA 8.1	Beckman Schar	--	Rotor für Avanti J-26XP Zentrifuge
Rotor JA 25.50	Beckman Schar	--	Rotor für Avanti J-26XP Zentrifuge
Tecan infinite M200 Multiplate Reader	Tecan Deutschland GmbH	--	Multiplate Reader für ALP Assay
Thermocycler - Labcycler Gradient	SensoQuest GmbH	--	PCR
TxRed - Mikroskopfilter	Keyence		Filter für Fluoreszenzmikroskop
Ultrafiltration Scheiben aus regenerierter Zellulose 3 kDa	Merck KGaA	PLBC04310	Verwendung mit Amicon Konzentrationszelle 400 ml
Ultrafiltration Scheiben aus regenerierter Cellulose 10 kDa	Merck KGaA	PLGC04310	Verwendung mit Amicon Konzentrationszelle 400 ml