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Methodenartikel

Nutzung von Ultraschall geführte Gewebe gerichtet zellulären Implantation für die Einrichtung der biologisch relevanten metastasiertem Tumor Xenografts

8K Aufrufe

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DOI:

10.3791/57558

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25. Mai 2018

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In diesem Artikel

Zusammenfassung

Hier präsentieren wir Ihnen ein Protokoll zur Ultraschall-gesteuerte Injektion von Neuroblastom (NB) und Ewing Sarkom (ES) Zellen zu nutzen (gegründet Zelllinien und Patienten abgeleitet Tumorzellen) an biologisch relevanten Standorten erstellen zuverlässigere präklinische Modellen für Krebs Forschung.

Zusammenfassung

Präklinische Tests von Anti-Krebs-Therapien setzt auf relevante Xenograft-Modelle, die die angeborenen Tendenzen des Krebses zu imitieren. Vorteile des standard subkutane Flanke Modelle sind prozedurale Leichtigkeit und die Fähigkeit, Monitor Tumorprogression und Antwort ohne invasive Bildgebung. Solche Modelle sind oft widersprüchlich in translationalen klinischen Studien und eingeschränkten biologisch relevante Merkmale mit geringer Neigung, Metastasen, zu produzieren wie eine native Mikroumgebung fehlt. Im Vergleich dazu zeigten orthotopen Xenograft Modelle an native Tumor Standorten zu imitieren den Tumor Mikroumgebung und wichtige Erkrankung Merkmale wie Ferne Metastasierung zu replizieren. Diese Modelle erfordern oft mühsame Operationsverfahren mit Narkose längere Zeit und Erholung. Um dieses Problem anzugehen, haben Krebsforscher kürzlich Ultraschall-geführte Injektionstechniken zu Krebs Xenograft Modelle für präklinische Experimente, ermöglicht eine schnelle und zuverlässige Einrichtung unter der Regie von Gewebe murinen Modellen genutzt. Ultraschall-Visualisierung ermöglicht auch eine nicht-invasive Methode zur longitudinalen Beurteilung der Tumor Engraftment und Wachstum. Hier beschreiben wir die Methode für die Ultraschall-gesteuerte Injektion von Krebszellen, unter Verwendung der Nebenniere für NB und renale Sub Kapsel für ES. Diese minimal-invasive Ansatz überwindet mühsam offene Operation Implantation von Krebszellen im Gewebe-spezifische Standorte für Wachstum und Metastasierung und morbide Erholungsphasen nachlässt. Wir beschreiben die Verwendung von etablierten Zelllinien und Patienten abgeleitete Zellinien zur orthotopen Injektion. Vorgefertigte kommerziellen Kits sind erhältlich für Tumor Dissoziation und Luciferase tagging von Zellen. Injektion von Zellsuspension mit Bildführung bietet eine minimalinvasive und reproduzierbare Plattform für die Erstellung von präklinischen Modellen. Diese Methode wird genutzt, um zuverlässige präklinischen Modellen für andere Krebsarten wie Blase, Leber und Bauchspeicheldrüse Veranschaulichung seiner ungenutzte Potenzial für zahlreiche Krebs-Modelle zu erstellen.

Einleitung

Tierische Xenograft Modelle sind unverzichtbare Werkzeuge für präklinische Studien neuartiger Anti-Krebs-Therapien. Standard murinen Xenotransplantate setzen auf subkutane Flanke Implantation von Zellen, die vorsieht, dass einer effiziente und leicht zugänglichen Website Überwachung Tumorwachstum. Der Nachteil der subkutanen Modelle ist ihr Mangel an Tumor-spezifische biologische Merkmale, die ihr Potenzial metastasize1eingeschränkt werden kann. Solche Einschränkungen sind durch den Einsatz von orthotopen Xenotransplantate in welchem, die Tumor Zellen bei nativen Gewebe, die relevanten Mikroumgebung mit metastasierendem potenzielle

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Protokoll

Alle Arbeit erfolgte in Übereinstimmung mit der University of Michigan Institutional Review Board (HUM 00052430) und entspricht den Verfahren, die von der Universität Ausschuss für Gebrauch und Pflege von Tieren (UCUCA) genehmigt. Die Einheit für Labor von Tier Medizin (ULAM) beaufsichtigte Tierpflege.

Alle Arbeit wurde mit Genehmigung von der University of Michigan Institutional Review Board (HUM 00052430) getan und alle Humanforschung Ethik Komitee Vorschriften entspricht. Menschliche Zellen gelten als potenziell biogefährliches Material sein, also folgen alle Vorsichtsmaßnahmen und entsprechende Biosafety-Praktiken, die von Ihrer Institu....

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Ergebnisse

Mit den beschriebenen Verfahren vorgestellt, erfolgte Ultraschall-geführte Implantation von NB-Zellen in der Nebenniere in einem speziellen Verfahren Raum verfügt über eine beheizte OP-Tisch. Arm und Fuß-Pads stellte für die Überwachung der murinen Herztätigkeit (Abbildung 1A). Das Tier blieb unter kegelkonus Inhalation mit Isofluran betäubt. Mit einer hochauflösenden Ultraschallsonde, wurde die linke Niere mit Nebenniere nur cranial der Niere (

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Diskussion

Ultraschall-geführte Implantation von NB und ES Zellen ist eine effiziente und sichere Methode, um zuverlässige murinen Xenotransplantate für präklinische Studien in der Krebsbiologie zu etablieren. Entscheidend für den Erfolg des Ultraschall-geführte Gewebe gezielt Implantation ist die Präsenz und Verfügbarkeit von geschultem Personal mit Fachwissen in anatomisch Lokalisierung der Orgel von Interesse und Stereotaktische Injektion von Tumorzellen.

Die Dissoziation des Tumorgewebes erwies sich .......

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Offenlegungen

Die Autoren haben keine Angaben.

Danksagungen

Diese Arbeit wurde von der Robert Wood Johnson Foundation/Amos medizinische Fakultät Entwicklung Programm, Taubman Research Institute, und die Sektion für Kinderchirurgie, der University of Michigan unterstützt. Die Autoren möchten Kimber Converso-Baran und Dr. Marcus Jarboe danken für die Unterstützung bei der Ultraschall-Injektionsverfahren und imaging Plattform. Wir danken Paul Trombley für seine Unterstützung bei der Abbildung Grafiken. Gewähren Sie wir danken auch die Abteilung für Radiologie an der University of Michigan für den Einsatz des Center für Molekulare Bildgebung und der Tumor-Imaging-Kern, die teilweise durch umfassende Cancer Center NIH unterstützt w....

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Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
Mäuse
NOD-SCIDCharles River394
NSGThe Jackson Laboratory5557
Cell Line  <
strong>NB
IMR-32ATCCCCL-127Etablierte humane Neuroblastom-Zelllinie
SH-SY5YATCCCRL-2266Etablierte humane Neuroblastom-Zelllinie
SK-N-Be2ATCCCRL-2271Etablierte humane Neuroblastom-Zelllinie
ES
TC32 Etablierte humane Ewing-Sarkom-Zelllinie
A673COGcell.ORGEtablierte humane Ewing-Sarkom-Zelllinie
CHLA-25COGcell.ORGEtablierte humane Ewing-Sarkom-Zelllinie
A4573COGcell.ORGEtablierte humane Ewing-Sarkom-Zelllinie
Zelllinie media
RPMILife Technologies11875-093
MatrigelBD BioSciences354234
Dissoziation
DissektionswerkzeugeKentScientificINSMOUSEKIT
Dissoziationskit für menschliche Tumore MACS Miltenyi Biotec130-095-929
gentleMACS DissoziatorMACS Miltenyi Biotec130-093-235
gentleMACS C RöhrchenMACS Miltenyi Biotec130-096-334
ZellsiebCorning431751
Luciferase Tagging
Lenti-GFP1 VirusUniversität of Michigan, Vector CoreLuciferase Virus
Steady Glo-Luciferase Assay KitPromegaE2510
Bioluminescence Imaging
Ivis Spectrum Imaging SystemPerkinElmer124262
D-LuciferinPromegaE160X
Anästhesie
Inhaliertes Isofluran Piramal Critical Care Inc66794-0017-25
Ultrasound Guided Injection
Vevo 2100 High Resolution ImagingVevo2100
Hamilton Spritzen (27 Gauge Nadel)Hamilton80000
22 Gauge AngiokatheterBD Biosciences381423
Optische SalbeGroße Pharmaunternehmen301909
NairChurch & Dwight CoHaarentfernungsmittel
Aquasonic 100 Ultraschall Transmission GelParkerUltraschall gel
Histology
CD99DAKOM3601Primärer Antikörper
Tyrosin HydroxylaseSigma-AldrichT2928Primärer Antikörper
Sekundärer HRP-Polymer AntikörperBiocareBRR4056KG
Miscelleneous
10 mL PipettenFisher Scientific13-676-10J
5 mL PipettenFisher Scientific13-676-10H
1,5 mL MikrozentrifugenröhrchenFisher Scientific05-408-129
P1000 PipetteEppendorf
P200 PipetteEppendorf3120000054
P1000 PipettenspitzenFisher Scientific21-375E
P200 PipettenspitzenFisher Scientific21-375D
Tragbare PipettierhilfeDrummond4-000-101
digitale TierwaageKentScientificSCL-1015
MessschieberFisher Scientific06-664-16
6well niedrige AufsatzplattenCorning07-200-601
10 cm Mit Gewebekulturen behandelte SchalenFisher ScientificFB012924
PolybreneSigma-AldrichTR-1003-G
COGcell.ORG 3120000062

Referenzen

  1. Sanmamed, M. F., Chester, C., Melero, I., Kohrt, H. Defining the optimal murine models to investigate immune checkpoint blockers and their combination with other immunotherapies. Ann Oncol. 27 (7), 1190-1198 (2016).
  2. Fidler, I. J., Hart, I. R.

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Nachdrucke und Genehmigungen

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