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Methodenartikel

Analyse des Sauerstoffverbrauchs der nichtmenschlichen Primaten-Pankreas-Islet

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DOI:

10.3791/60696

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18. Dezember 2019

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In diesem Artikel

Zusammenfassung

Dieses Protokoll demonstriert die genaue und reproduzierbare Messung des Sauerstoffverbrauchs in nichtmenschlichen Pankreasinseln. Die Beladetechniken der Isleten und die Beschichtung der Mikroplatte bieten einen Rahmen für eine effiziente Messung der Atmung in anderen Arten von kultivierten Sphäroiden.

Zusammenfassung

Die Messung des Sauerstoffverbrauchs in Sphäroid-Clustern von Zellen, wie ex vivo Pankreasinseln, war historisch eine Herausforderung. Wir demonstrieren die Messung des Sauerstoffverbrauchs der Islet enmitieren mit einer 96-Well-Mikroplatte, die für die Messung des Sauerstoffverbrauchs in Sphäroiden entwickelt wurde. In diesem Test werden Sphäroid-Mikroplatten am Tag vor dem Test mit einem Zell- und Gewebekleber beschichtet. Wir verwenden ein kleines Volumen an Klebstofflösung, um die Befolgung der Leten nur an der Unterseite des Brunnens zu fördern. Am Tag des Assays werden 15 Inselchen mit einer Technik, die eine optimale Positionierung der Inselchen und eine genaue Messung des Sauerstoffverbrauchs gewährleistet, direkt in die Basis jedes Brunnens geladen. Verschiedene Aspekte der mitochondrialen Atmung werden pharmakologisch in nichtmenschlichen Primateninseln untersucht, einschließlich ATP-abhängiger Atmung, maximaler Atmung und Protonenleck. Diese Methode ermöglicht konsistente, reproduzierbare Ergebnisse mit nur einer kleinen Anzahl von Inselchen pro Bohrplatz. Es kann theoretisch auf alle kultivierten Sphäroide ähnlicher Größe angewendet werden.

Einleitung

Um den normalen Blutzuckerspiegel aufrechtzuerhalten, muss die Pankreas-Zelle Erhöhungen in Glukose spüren und Insulin entsprechend absondern. Die Kopplung der Insulinsekretion mit dem Glukosespiegel ist direkt mit dem Glukosestoffwechsel und der Produktion von ATP durch mitochondriale oxidative Phosphorylierung verbunden. Daher spielen Mitochondrien eine entscheidende Rolle bei der Stimulus-Sekretionskopplung1. Die Beurteilung der mitochondrialen Funktion der Zelle kann Defekte aufdecken, die zu einer beeinträchtigten Insulinsekretion führen. Die Sekretion von Glucagon durch Pankreaszellen ist ebenfalls eng mit der mitochondrialen Funktion

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Protokoll

1. Vorbereitung von Mikroplatte und Sensorpatrone am Tag vor dem Ausführen des Assays

Inselchen wurden von dreijährigen japanischen Makaken isoliert, wie zuvor beschrieben13. Diese Methode ist sehr ähnlich der, die verwendet wird, um menschliche Inselchen von Kadaverspendern zu isolieren, unterscheidet sich aber von Mäusen, bei denen Pankreata oft mit Kollagenaselösung aufgeblasen werden, während das Tier unter Sedierung und vor der Organentfernung steht. Der Islet Retrieval wurde in Übereinstimmung mit den Richtlinien des Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC) des Oregon National Primate Research Center (....

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Ergebnisse

Um Inselchen in Mikroplatten zu laden, sollten 15 Inselchen in 15 l Medien angesaugt werden, wie in Abbildung 1Adargestellt. Inselchen werden sich natürlich innerhalb weniger Sekunden zur Unterseite der Pipettenspitze absetzen. Dann wird die Pipettenspitze auf den Boden des Brunnens abgesenkt. Die Spitze ist sehr leicht angehoben, und ein kleines Volumen (ca. 5 l) wird zusammen mit den Inselchen herausgepfetet. Diese Technik führt zu einer ko.......

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Diskussion

Die Untersuchung des Sauerstoffverbrauchs der Insel wurde bisher durch die kugelförmige Form von Inselchen, deren mangelnde Haftung an Kulturoberflächen und die Anzahl der pro Brunnen benötigten Inselchen behindert. In diesem Protokoll unterstreichen wir die Wirksamkeit der 96-Well-Sphäroid-Mikroplatte zur Messung des Sauerstoffverbrauchs von Inselchen auf einer kleinen Anzahl von Inselchen und zeigen eine Technisch machbare und konsistente Technik zum Um- und Laden von Inselchen Ergebnisse.

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Offenlegungen

Die Autoren haben nichts zu verraten.

Danksagungen

Die Autoren möchten den Vanderbilt High Throughput Screening Core für die Nutzung ihrer Einrichtungen, Agilent Biotechnologies, Dr. Paul Kievit (Oregon Health and Science University) für nichtmenschliche Primaten-Islet-Isolierungen und Eric Donahue (Vanderbilt University) für die Unterstützung von Abbildung 1 würdigen. J.M.E. wurde von NIGMS der National Institutes of Health unter der AuszeichnungT32GM007347 unterstützt. M.G. wurde vom NIH/NIDDK (R24DK090964-06) und dem Department of Veterans Affairs (BX003744) unterstützt.

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Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
Zellkulturschale, 60 mm x 15 mm AusführungCorning430166
Cell-Tak Zell- und GewebekleberCorning354240
Konisches Röhrchen, 50 mLFalcon352070
wasserfreie DextroseFisher ScientificBP350-1Für Glukoselösung, 200 mg/ml, steril fileteriert
Einweg-Reservoire (steril), 25 MLVistalab3054-1033zum Beladen von Mehrkanalpipetten
EZFlow Sterile 0,45 μ m PES Spritzenvorsatzfilter, 13 mmFoxx Life Sciences371-3115-OEM
L-GlutaminGibco25030-081200 mM (100x)
Mehrkanal-PipettenspitzenThermoFisher Scientific94410810
Mehrkanalpipette, 15-1250 μ LThermoFisher Scientific4672100BTEmpfohlene
P20-, P200- und P1000-PipettenEppendorf2231000602
pH-SondeHanna InstrumentsHI2210-01
Pipettenspitzen, 20 & mu; L, 200 μ L, 1000 μ LOlympus24-404, 24-412, 24-430
Seahorse XF Base MediaAgilent103334-100
Seahorse XF Cell Mito Stress Test KitAgilent103015-100Enthält Oligomycin, FCCP und Rotenon/Antimycin A
Seahorse XFe96 AnalyzerAgilentS7800BInklusive Vorbereitungsstation mit 37 > C Nicht-CO2-Inkubator
Seahorse XFe96 Spheroid Fluxpak MiniAgilent102905-100Enthält Sensorpatrone, Sphäroid-Mikrotiterplatte und Kalibrant
NatriumbicarbonatFisher ScientificBP328-500
NatriumpyruvatGibco11360-070100 mM (100x)
StereomikroskopOlympusSZX9
Spritze (steril), 5 mLBD309603Für die Sterilfiltration
Wasser (steril)SigmaW3500-500mL

Referenzen

  1. Mulder, H. Transcribing β-cell mitochondria in health and disease. Molecular Metabolism. 6 (9), 1040-1051 (2017).
  2. Maechler, P., Wollheim, C. B. Mitochondrial signals in glucose-stimulated insulin secretion in the beta cell. The Journal of Physiology

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Nachdrucke und Genehmigungen

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