Ein Abonnement von JoVE ist erforderlich, um diesen Inhalt anzuzeigen. Melden Sie sich an oder beginnen Sie noch heute mit einer kostenlosen Testphase.

Methodenartikel

Intra-arterielle Lieferung von neuronalen Stammzellen an das Ratten- und Maushirn: Anwendung auf zerebrale Ischämie

10.2K Aufrufe

⸱

DOI:

10.3791/61119

⸱

26. Juni 2020

In diesem Artikel

Zusammenfassung

Eine Methode zur Abgabe neuronaler Stammzellen, anpassungsfähig für Injektionslösungen oder Suspensionen, durch die gemeinsame Halsschlagader (Maus) oder externe Halsschlagader (Ratte) nach ischämischem Schlaganfall wird berichtet. Injizierte Zellen sind breit über das Gehirn Parenchym verteilt und kann bis zu 30 d nach der Geburt nachgewiesen werden.

Zusammenfassung

Die Therapie mit neuronalen Stammzellen (NSC) ist eine neue innovative Behandlung bei Schlaganfall, traumatischen Hirnverletzungen und neurodegenerativen Erkrankungen. Im Vergleich zur intrakraniellen Verabreichung ist die intraarterielle Verabreichung von NSCs weniger invasiv und erzeugt eine diffusere Verteilung von NSCs innerhalb des Gehirnparenchyms. Darüber hinaus ermöglicht die intraarterielle Abgabe den Erstpasseffekt in der Hirnzirkulation, wodurch das Potenzial für das Einfangen von Zellen in peripheren Organen, wie Leber und Milz, verringert wird, eine Komplikation, die mit peripheren Injektionen verbunden ist. Hier beschreiben wir die Methodik, sowohl bei Mäusen als auch bei Ratten, für die Lieferung von NSCs durch die gemeinsame Halsschlagader (Maus) oder externe Halsschlagader (Ratte) an die ipsilaterale Hemisphäre nach einem ischämischen Schlaganfall. Anhand von GFP-markierten NSCs veranschaulichen wir die weitverbreitete Verteilung, die in der ipsilateralen Hemisphäre des Nagetiers bei 1 d, 1 Woche und 4 Wochen nach der postischen Verabreichung erreicht wird, mit einer höheren Dichte an oder in der Nähe der ischämischen Verletzungsstelle. Neben dem Langzeitüberleben zeigen wir Nachweise für eine Differenzierung von GFP-markierten Zellen nach 4 Wochen. Der hier für NSCs beschriebene intraarterielle Verabreichungsansatz kann auch für die Verabreichung therapeutischer Verbindungen verwendet werden und hat somit eine breite Anwendbarkeit auf verschiedene ZNS-Verletzungs- und Krankheitsmodelle über mehrere Arten hinweg.

Einleitung

Die Stammzelltherapie (SC) birgt ein enormes Potenzial zur Behandlung neurologischer Erkrankungen wie Schlaganfall, Kopftrauma und Demenz1,2,3,4,5,6., Eine effiziente Methode zur Lieferung exogener SCs an das erkrankte Gehirn bleibt jedoch problematisch2,6,7,8,9,10,<....

Zugriff eingeschränkt. Bitte melden Sie sich an oder starten Sie eine Testversion, um diesen Inhalt anzuzeigen.

Protokoll

Alle Verfahren zu tierischen Themen wurden vom Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC) der University of Kentucky genehmigt, und es wurde entsprechend darauf geachtet, Stress oder Schmerzen im Zusammenhang mit einer Operation zu minimieren.

1. Herstellung von Injektionskatheter und chirurgischen Haken

  1. Konstruieren Sie den Injektionskatheter (Abbildung 1). Sammeln Sie notwendige Materialien wie: MRE010, MRE025 und MRE050 Rohre, 20 G, 26 G und 27 G Injektionsnadeln (Abbildung 2A), 600 Sandpapier, Superkleber und Zweikomponenten 5-Minuten-Epoxid.
    1. 20 G und....

Zugriff eingeschränkt. Bitte melden Sie sich an oder starten Sie eine Testversion, um diesen Inhalt anzuzeigen.

Ergebnisse

GFP-markierte NSCs wurden im ischämischen Gehirn leicht nachgewiesen, vor allem in der ipsilateralen Hemisphäre, insbesondere im Penumbra und entlang des Verletzungsrands (Abbildung 6). Der Prüfer wurde während der Bildgebung und Analyse einmalig blind.

Zum Beispiel wurden bei 1 d nach der Injektion NSCs innerhalb des Maus-Hippocampus nachgewiesen. Eine Teilmenge von NSCs zeigte die Koexpression des unreifen Neuronenmarkers DCX im Dentate-Gyrus bereits zu diesem f.......

Zugriff eingeschränkt. Bitte melden Sie sich an oder starten Sie eine Testversion, um diesen Inhalt anzuzeigen.

Diskussion

Die Stammzelltherapie bei neurologischen Erkrankungen befindet sich noch in einem frühen explorativen Stadium. Ein großes Problem ist, dass es keine etablierte Methode für eine ausreichende Bereitstellung von SCs oder NSCs in das Gehirn gibt.

Obwohl exogene SCs/NSCs im Gehirn nach intravenöser (IV), intraperitonealer (IP) oder intraparenchymaler/intracerebraler Injektion nachgewiesen werden können, hat jeder Verabreichungsansatz Nachteile. Die nachweisbare Population im Gehirn wird mit einer p.......

Zugriff eingeschränkt. Bitte melden Sie sich an oder starten Sie eine Testversion, um diesen Inhalt anzuzeigen.

Danksagungen

Diese Forschung wurde unterstützt von den folgenden: AHA Award 14SDG20480186 für LC, Subject Innovation Team der Shanxi University of Chinese Medicine 2019-QN07 für BZ, und Kentucky Spinal Cord and Head Injury Research Trust Grant 14-12A für KES und LC.

....

Zugriff eingeschränkt. Bitte melden Sie sich an oder starten Sie eine Testversion, um diesen Inhalt anzuzeigen.

Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
20 G NadelBecton & DickinsonBD PrecisionGlide 305175Vorbereitung des Injektionskatheters
26 G NadelBecton & DickinsonBD PrecisionGlide 305111Vorbereitung des Injektionskatheters
27 G NadelBecton & DickinsonBD PrecisionGlide 305136Vorbereitung des Injektionskatheters
4-0 NFS-2 Naht mit NadelHenry Schein Animal Health56905Chirurgie
6-0 NylonnahtTeleflex/Braintree Scientific104-sChirurgie
AccutaseSTEMCELL Technologies7922für Zellablösungslösung
Bard-Parker10Chirurgie
Buprenorphin-SR LabZooPharmBuprenorphin-SR Lab®Analgesie (0,6-1 mg/kg über 3 d)
Calcium/Magnisum-frei PBSVWR02-0119-0500NSC-Dissoziation
DCX-AntikörperMilliporeAB2253Immunfärbung
GFAP-AntikörperInvitrogen180063Immunfärbung
IsofluranHenry Schein Animal Health50562-1Chirurgie
MCAO-Filament für MausDoccol702223PK5ReChirurgie
MCAO-Filament für RattenDoccol503334PK5Re Chirurgie
MRE010 KatheterBraintree ScientificMRE010Vorbereitung des Injektionskatheters
MRE025 KatheterBraintree ScientificMRE025Vorbereitung des Injektionskatheters
MRE050 KatheterBraintree ScientificMRE050Vorbereitung des Injektionskatheters
Nu-Tears SalbeNuLife PharmaceuticalsNu-Tears SalbeAugenpflege während der
Operation S& T Pinzette - SuperGrip Tips JF-5TC AbgewinkelteFine Science Tools00649-11
Chirurgie S& T-Pinzette - SuperGrip-Spitzen JF-5TC GeradeFeinmechanik-Werkzeuge00632-11Chirurgie
SekundenkleberPacer Technologie15187Vorbereitung der Injektionskatheter-Spritzenpumpe
Kent ScientificGenieTouchChirurgie
Tuj1 AntikörperMilliporeMAb1637Immunfärbung
Zweikomponenten-5-Minuten-EpoxidharzDevcon20445Vorbereitung des Injektionskatheters
Vannas Federschere FineScience Tools15000-08
Chirurgie GefäßklemmenFine Science Tools00400-03Chirurgie
Zeiss MikroskopZeissAxio Imager 2Mikroskopie
Klinge

Referenzen

  1. Wang, Y. Stroke research in 2017: surgical progress and stem-cell advances. The Lancet. Neurology. 17, 2-3 (2018).
  2. Bliss, T., Guzman, R., Daadi, M., Steinberg, G. K. Cell transplantation therapy for stroke. Stroke. 38, 817-826 (2007).
  3. Boese, A. C., Le, Q. E., Pham, D.,....

Zugriff eingeschränkt. Bitte melden Sie sich an oder starten Sie eine Testversion, um diesen Inhalt anzuzeigen.

Nachdrucke und Genehmigungen

Tags

Gemeinsame HalsschlagaderÄußere HalsschlagaderVerschluss der mittleren HirnarterieGFP-markierte Zellenchirurgische HakenInjektionskatheterStammzelltherapie