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Methodenartikel

Herstellung von 3D-Cardiac Microtissue Arrays unter Verwendung von humanen iPSC-abgeleiteten Kardiomyozyten, kardialen Fibroblasten und Endothelzellen

7K Aufrufe

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DOI:

10.3791/61879

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14. März 2021

In diesem Artikel

Zusammenfassung

Hier beschreiben wir eine einfach zu bedienende Methodik zur Erzeugung von 3D-selbstorganisierten kardialen Mikrogewebe-Arrays, die aus vordifferenzierten humaninduzierten pluripotenten Stammzell-abgeleiteten Kardiomyozyten, Herzfibroblasten und Endothelzellen bestehen. Diese benutzerfreundliche und zellarme Technik zur Erzeugung kardialer Mikrogewebe kann für die Krankheitsmodellierung und frühe Stadien der Arzneimittelentwicklung implementiert werden.

Zusammenfassung

Die Erzeugung von humanen Kardiomyozyten (CMs), kardialen Fibroblasten (CFs) und Endothelzellen (ECs) aus induzierten pluripotenten Stammzellen (iPSCs) bot eine einzigartige Gelegenheit, das komplexe Zusammenspiel zwischen verschiedenen kardiovaskulären Zelltypen zu untersuchen, das die Gewebeentwicklung und -krankheit antreibt. Im Bereich der Herzgewebemodelle verwenden mehrere ausgeklügelte dreidimensionale (3D) Ansätze induzierte pluripotente Stammzell-abgeleitete Kardiomyozyten (iPSC-CMs), um die physiologische Relevanz und die native Gewebeumgebung mit einer Kombination aus extrazellulären Matrizen und Vernetzern nachzuahmen. Diese Systeme sind jedoch ohne Mikrofabrikationskenntnisse komplex herzustellen und benötigen mehrere Wochen für die Selbstmontage. Am wichtigsten ist, dass vielen dieser Systeme Gefäßzellen und Herzfibroblasten fehlen, die über 60% der Nichtmyozyten im menschlichen Herzen ausmachen. Hier beschreiben wir die Ableitung aller drei Herzzelltypen aus iPS-Zellen zur Herstellung kardialer Mikrogewebe. Diese einfache Replik-Formgebungstechnik ermöglicht die kardiale Mikrobearbeitungskultur in Standard-Multi-Well-Zellkulturplatten für mehrere Wochen. Die Plattform ermöglicht eine benutzerdefinierte Kontrolle über Mikrogewebegrößen basierend auf der anfänglichen Seeding-Dichte und benötigt weniger als 3 Tage für die Selbstorganisation, um beobachtbare kardiale Mikrogewebekontraktionen zu erreichen. Darüber hinaus können die kardialen Mikrogewebe leicht verdaut werden, während eine hohe Zelllebensfähigkeit für die Einzelzellbefragung unter Verwendung von Durchflusszytometrie und Einzelzell-RNA-Sequenzierung (scRNA-seq) erhalten bleibt. Wir stellen uns vor, dass dieses In-vitro-Modell von kardialen Mikrogeweben dazu beitragen wird, Validierungsstudien in der Arzneimittelentdeckung und Krankheitsmodellierung zu beschleunigen.

Einleitung

Die Wirkstoffforschung und Krankheitsmodellierung im Bereich der kardiovaskulären Forschung steht aufgrund des Mangels an klinisch relevanten Proben und unzureichender translationaler Werkzeuge vor mehreren Herausforderungen1. Hochkomplexe präklinische Modelle oder stark vereinfachte in vitro Einzelzellmodelle zeigen keine pathophysiologischen Bedingungen in reproduzierbarer Weise. Daher haben sich mehrere miniaturisierte Tissue-Engineering-Plattformen entwickelt, um die Lücke zu schließen, mit dem Ziel, ein Gleichgewicht zwischen einfacher Anwendung in hochdurchsatziger Weise und einer getreuen Rekapitulation der Gewebefunktion zu

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Protokoll

1. Medium, Reagenz, Zuchtplattenvorbereitung

  1. Zellwaschlösung für die Zellkultur: Verwenden Sie 1x phosphatgepufferte Kochsalzlösung (PBS) oder Hanks Balanced Salt Solution (HBSS) ohne Calcium oder Magnesium.
  2. Kardiomyozyten-Differenzierungsmedien
    1. Bereiten Sie das Differenzierungsmedium Nr. 1 vor, indem Sie 10 ml Ergänzung (50x B27 plus Insulin) zu 500 ml Kardiomyozyten-Basalmedium (RPMI 1640) hinzufügen.
    2. Bereiten Sie das Differenzierungsmedium Nr. 2 vor, indem Sie 10 ml Ergänzung (50x B27 minus Insulin) zu 500 ml Kardiomyozyten-Basalmedium (RPMI 1640) hinzufügen.
    3. Bereiten Sie das Reinigungsmedium Nr. 3 vor, indem Sie er....

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Ergebnisse

Immunstaining und Durchflusszytometrie Charakterisierung von iPSC-abgeleiteten CMs, ECs und CFs
Um kardiale Mikrogewebe zu erzeugen, die aus iPSC-CMs, iPSC-ECs und iPSC-CFs bestehen, werden alle drei Zelltypen einzeln differenziert und charakterisiert. Die In-vitro-Differenzierung von iPS-Zellen zu iPSC-CMs hat sich in den letzten Jahren verbessert. Die Ausbeute und Reinheit von iPSC-CMs unterscheiden sich jedoch von Linie zu Linie. Das aktuelle Protokoll liefert über 75% reine iPSC-CMs, die .......

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Diskussion

Um kardiale Mikrogewebe aus vordifferenzierten iPSC-CMs, iPSC-ECs und iPSC-CFs zu erzeugen, ist es unerlässlich, eine hochreine Kultur zur besseren Kontrolle der Zellzahlen nach kontaktinhibierter Zellverdichtung innerhalb der kardialen Mikrogewebe zu erhalten. Kürzlich haben Giacomelli et. al.18 haben die Herstellung von kardialen Mikrogeweben unter Verwendung von iPSC-CMs, iPSC-ECs und iPSC-CFs demonstriert. Kardiale Mikrogewebe, die mit der beschriebenen Methode erzeugt werden, bestehen aus ~5........

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Offenlegungen

J.C.W. ist Mitbegründer von Khloris Biosciences, hat aber keine konkurrierenden Interessen, da die hier vorgestellte Arbeit völlig unabhängig ist. Die anderen Autoren berichten von keinen Konflikten.

Danksagungen

Wir danken Dr. Amanda Chase für ihr hilfreiches Feedback zum Manuskript. Finanzielle Unterstützung wurde durch das Tobacco-Related Disease Research Program (TRDRP) der University of California, T29FT0380 (D.T.) und 27IR-0012 (J.C.W.); American Heart Association 20POST35210896 (H.K.) und 17MERIT33610009 (J.C.W.); und National Institutes of Health (NIH) R01 HL126527, R01 HL123968, R01 HL150693, R01 HL141851 und NIH UH3 TR002588 (J.C.W).

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Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
12-Well-PlattenFisher Scientific08-772-29
3D-MikroformenMikrogewebe12-81 Format
6-Well-PlattenFisher Scientific08-772-1B
AutoMACS SpüllösungThermo Fisher ScientificNC9104697
B27 Supplement minus InsulinLife TechnologiesA1895601
B27 Supplement plus InsulinLife Technologies17504-044
BD CytofixBD Biosciences554655
BD Matrigel, hESC-qualifizierte MatrixBD Biosciences354277
Cardiac Troponin T AntikörperMiltenyi130-120-403
CD144 (VE-Cadherin)MicroBeads Miltenyi130-097-857
CD31 AntikörperMiltenyi130-110-670
CD31 MikrokügelchenMiltenyi130-091-935
CHIR-99021SelleckchemS2924
DDR2Santa Cruz Biotechnologiesc-81707
Totzell-Apoptose Kit mit Annexin V FITC und PIThermo Fisher ScientificV13242
Dispase IMillipore Sigma4942086001
DMEM, hoher Glukosegehalt (4,5 g/L) ohne Glutaminmedium11960044
DMEM/F-12 BasalmediumGibco11320033
Dulbecco's phosphatgepufferte Kochsalzlösung (DPBS), kein Kalzium, kein MagnesiumLife Technologies14190-136
EGM2 BulletKitLonzaCC-3124
Fötales Rind serumLife Technologies10437
FibroLife serum-free Fibroblast LifeFactors KitLifeBone Cell TechnologyLS-1010
Glukosefreies RPMI MediumLife Technologies11879-020
ZiegenserumLife Technologies16210-064
Human FGF-basicThermo Fisher Scientific13256029
Human VEGF-165PeproTech100-20
IWR-1-endoSelleckchemS7086
Liberase TLMillipore Sigma5401020001
LS SortierkolonnenMiltenyi130-042-401
MACS BSA StammlösungMiltenyi130-091-376
MACS SpülpufferMiltenyi130-091-222
MidiMACS SeparatorMiltenyi130-042-302
RPMI mediumLife Technologies11835055
SB431542SelleckchemS1067
TO-PRO 3Thermo Fisher ScientificR37170
Triton X-100Millipore SigmaX100-100ML
TrypLE Select 10XThermo Fisher Wissenschaftlichrot
Vimentin Alexa Fluor® 488-konjugierter AntikörperR& D SystemsIC2105G

Referenzen

  1. Neofytou, E., O'Brien, C. G., Couture, L. A., Wu, J. C. Hurdles to clinical translation of human induced pluripotent stem cells. Journal of Clinical Investigation. 125 (7), 2551-2557 (2015).
  2. Lancaster, M. A., Knoblich, J. A. Organogenesis in a....

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Nachdrucke und Genehmigungen

Tags

Kardiale Mikrogewebestromale vaskuläre FraktionDurchflusszytometrieEinzelzell-RNA-SequenzierungKonfokalmikroskopieAgarose-Form-TechnikZellaussaatdichteAnalyse der kontraktilen FunktionImmunfluoreszenzfärbung