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Methodenartikel

Eine robuste Methode für die großtechnische Produktion von Sphäroiden für High-Content-Screening- und Analyseanwendungen

3.4K Aufrufe

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DOI:

10.3791/63436

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28. Dezember 2021

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In diesem Artikel

Zusammenfassung

Dieses Protokoll beschreibt ein Verfahren zur Herstellung von drei verschiedenen Arten von Sphäroiden in einer Weise, die sie für ein groß angelegtes High-Content-Screening und -Analyse geeignet macht. Darüber hinaus werden Beispiele vorgestellt, die zeigen, wie sie auf Sphäroid- und Einzelzellebene analysiert werden können.

Zusammenfassung

High-Content-Screening (HCS) und High-Content-Analyse (HCA) sind Technologien, die Forschern die Möglichkeit geben, groß angelegte quantitative phänotypische Messungen aus Zellen zu extrahieren. Dieser Ansatz hat sich als wirksam erwiesen, um unser Verständnis einer breiten Palette von grundlegenden und angewandten Ereignissen in der Zellbiologie zu vertiefen. Bis heute stützte sich die Mehrheit der Anwendungen für diese Technologie auf die Verwendung von Zellen, die in Monoschichten gezüchtet wurden, obwohl zunehmend erkannt wird, dass solche Modelle viele der Wechselwirkungen und Prozesse, die in Geweben auftreten, nicht rekapitulieren. Daher hat sich bei der Entwicklung und Verwendung von 3-dimensionalen (3D) Zellanordnungen wie Sphäroiden und Organoiden eine Entstehung herausgebildet. Obwohl diese 3D-Modelle im Kontext von Krebsbiologie- und Drug-Delivery-Studien besonders leistungsfähig sind, stellen ihre Herstellung und Analyse in einer reproduzierbaren Weise, die für HCS und HCA geeignet ist, eine Reihe von Herausforderungen dar. Das hier beschriebene Protokoll beschreibt eine Methode zur Erzeugung von multizellulären Tumorsphäroiden (MCTS) und zeigt, dass es auf drei verschiedene Zelllinien in einer Weise angewendet werden kann, die mit HCS und HCA kompatibel ist. Das Verfahren erleichtert die Herstellung von mehreren hundert Sphäroiden pro Bohrloch und bietet den spezifischen Vorteil, dass bei Verwendung in einem Screening-Regime Daten aus mehreren hundert Strukturen pro Bohrloch gewonnen werden können, die alle auf identische Weise behandelt werden. Es werden auch Beispiele bereitgestellt, die detailliert beschreiben, wie die Sphäroide für die hochauflösende Fluoreszenzbildgebung verarbeitet werden und wie HCA quantitative Merkmale sowohl auf Sphäroidebene als auch aus einzelnen Zellen innerhalb jedes Sphäroides extrahieren kann. Dieses Protokoll könnte leicht angewendet werden, um eine Vielzahl wichtiger Fragen in der Zellbiologie zu beantworten.

Einleitung

Traditionell wurden zellbasierte Assays in Monoschichten durchgeführt, die auf einem festen Substrat wachsen, das effektiv als zweidimensionale (2D) Umgebung betrachtet werden kann. Es wird jedoch zunehmend erkannt, dass 2D-Zellkulturmodelle in einigen Kontexten keine physiologische Relevanz haben und viele der komplexen Interaktionen, die zwischen Zellen auftreten, nicht replizieren können1. Dreidimensionale (3D) Zellkulturmethoden werden bei Forschern immer beliebter, und 3D-Zellmodelle zeigen ein hohes Potenzial, die physiologischen Bedingungen, mit denen Zellen in der Gewebeumgebung konfrontiert sind, besser nachzuahmen2.<....

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Protokoll

1. Zellkultur

  1. Medien vorbereiten
    1. Bereiten Sie je nach Art der Zelllinie spezifische Zellkulturmedien vor. Stellen Sie sicher, dass alle Medien für die Zellerhaltung 10% fötales Rinderserum (FBS) enthalten.
      HINWEIS: Verschiedene Zelllinien verwenden unterschiedliche Medien. HT-29 Dickdarmkarzinomzellen (ATCC HTB-38) werden in McCoys 5A + 10% FBS gezüchtet. HepG2 hepatozelluläre Karzinomzellen (ATCC HB-8065) werden in Minimum Essential Medium + 1% L-Glutamin + 10% FBS gezüchtet. H358 bronchoalveoläre Karzinomzellen (ATCC CRL-5807) werden in RPMI 1640 medium + 1% L-Glutamin + 10% FBS gezüchtet. Alle Medien, die L-Glutamin und FBS ent....

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Ergebnisse

In diesem Protokoll wird eine robuste Methode zur Herstellung von 3D-Zellkulturanordnungen in Form von Sphäroiden beschrieben, bei denen verschiedene Zelltypen verwendet werden, um verschiedene Tumorgewebe darzustellen. Diese Methode ermöglicht die Erzeugung von Hunderten von Sphäroiden pro Well, wodurch zellbasierte Assays in einer High-Content-Weise durchgeführt werden können (Abbildung 1). Dieser Ansatz wurde zuvor verwendet, um die Aufnahme von Nanopartikeln in HT.......

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Diskussion

Der hier beschriebene Ansatz beschreibt eine Plattform zur Erzeugung von mehreren hundert Sphäroiden pro Bohrloch in einer Weise, die für HCS und HCA geeignet ist. Im Vergleich zu anderen populären Methoden, wie der Verwendung von ULA-Platten mit flachem und rundem Boden, die die Bildung von nur einem Sphäroid pro Bohrloch ermöglichen18,19, bietet diese Methode die Möglichkeit, hochauflösende Informationen aus einer großen Anzahl von Sphäroiden in einem Screening.......

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Offenlegungen

Die Autoren erklären, dass mit dieser Arbeit keine konkurrierenden Interessen verbunden sind.

Danksagungen

Die Autoren würdigen die Unterstützung eines Infrastrukturforschungszuschusses der Science Foundation Ireland (SFI) (16/RI/3745) an JCS. Die Arbeit im UCD Cell Screening Laboratory wird vom UCD College of Science unterstützt. ASC wird durch ein Postgraduiertenstipendium der irischen Regierung des Irish Research Council (IRC) (GOIPG/2019/68) finanziert. Die Autoren danken auch allen Mitgliedern des Labors für ihren Input und ihre hilfreichen Diskussionen. Das Bildmaterial in Abbildung 1 wurde in BioRender generiert.

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Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
0,05 % Trypsin-EDTA (1x), PhenolrotGibco25300054
Rinderserumalbumin (BSA)Sigma AldrichA6003
CalciumchloridFisher Scientific10050070
CellCarrier-96 Ultra Microplates, gewebekulturbehandelt, schwarz, 96-well mit DeckelPerkin Elmer6055302Diese Platten wurden umbenannt in Phenoplates
Dimethylsulfoxid (DMSO)Sigma AldrichD2650
Fötales Kälberserum (FBS), qualifiziert, EU-zugelassen, Herkunft aus Südamerika, hitzeinaktiviertesGibco10500064
GlycinFisher ScientificBP381-1
Ziegen-Anti-Maus-IgG (H+L) Hochgradig kreuzadsorbierter Sekundärantikörper, Alexa Fluor 488InvitrogenA-11029
L-Glutaminlösung, 200 mMGibco25030024
Hoechst 33342Sigma Aldrich14533
MagnesiumchloridFisher Scientific10647032
Matrigel Basalmembran Matrix, Phenol Red-frei, LDEV-frei, 10 mLCorning356237Diese Matrigel-Formulierung finden Sie unter der gleichen Katalognummer auch bei BD Biosciences
Matrigel Growth Factor Reduced MatrigelBD Biosciences356231Diese Matrigel-Formulierung ist unter der gleichen Katalognummer auch bei Corning
McCoy's 5A MediumGibco26600023
McCoy's 5A Medium mit L-Glutamin und Natriumbicarbonat, ohne phenolrotesHyclone10358633
Minimum Essential Medium (MEM)Gibco21090022
Minimum Essential Medium (MEM), ohne Glutamin, ohne PhenolrotGibco51200046
Maus monoklonaler Anti-LAMP1-Antikörper (Konzentrat)Entwicklungsstudien Hybridom BankH4A3-a
Neubauer ZählkammerHirschmann8100203
Nunclon Gewebekulturschale mit Deckel, Polystyrol, 92 mm x 17 mmThermoFisher Scientific150350
Opera Phenix HCS System und Harmony HCA SoftwarePerkin ElmerHCSHH14000000
Paraformaldehyd (PFA)Sigma AldrichP6148
Phalloidin Alexa Fluor 568InvitrogenA12380
Phosphatgepufferte Kochsalzlösung (PBS) TablettenSigma AldrichP4417
Polysorbat 20Sigma AldrichP5927
RPMI 1640 Medium, GlutaMAX SupplementGibco61870010
RPMI 1640 Medium, ohne Glutamin, ohne PhenolrotGibco11835063
Triton X-100Sigma AldrichT9284
Stericup sterile VakuumfiltereinheitenMilliporeSCGVU05RE

Referenzen

  1. Jensen, C., Teng, Y. Is it time to start transitioning from 2D to 3D cell culture. Frontiers in Molecular Biosciences. 7, 33(2020).
  2. Langhans, S. A. Three-dimensional in vitro cell culture models in drug discovery and drug repositioning....

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Nachdrucke und Genehmigungen

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