Waiting
Login-Verarbeitung ...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Environment

Riverine Makroomurgasızlarının Topluluk Boyut Yapısını Belirlemek için Otomatik Görüntü İşleme

Published: January 13, 2023 doi: 10.3791/64320

Summary

Makale, yarı otomatik bir görüntüleme prosedürü kullanarak bentik nehir makroomurgasızlarına karşılık gelen sayısallaştırılmış nesneleri taramak, tespit etmek, sıralamak ve tanımlamak için uyarlanmış bir protokolün oluşturulmasına dayanmaktadır. Bu prosedür, makroomurgasız bir topluluğun bireysel boyut dağılımlarının ve boyut metriklerinin yaklaşık 1 saat içinde elde edilmesini sağlar.

Abstract

Vücut büyüklüğü, doğal topluluklardaki pertürbasyonların etkilerini değerlendirmek için biyoendikatör olarak kullanılabilecek önemli bir fonksiyonel özelliktir. Topluluk büyüklüğü yapısı, taksonlar ve ekosistemler arasındaki antropojenik pertürbasyonlar da dahil olmak üzere biyotik ve abiyotik gradyanlara yanıt verir. Bununla birlikte, bentik makroomurgasızlar gibi küçük gövdeli organizmaların (örneğin, >500 μm ila birkaç santimetre uzunluğunda) manuel ölçümü zaman alıcıdır. Topluluk büyüklüğü yapısının tahminini hızlandırmak için, burada, tatlı su ekosistemlerinin ekolojik durumunu değerlendirmek için en yaygın kullanılan biyogöstergelerden biri olan korunmuş nehir makroomurgasızlarının bireysel vücut büyüklüğünü yarı otomatik olarak ölçmek için bir protokol geliştirdik. Bu protokol, deniz mezozooplanktonlarını su örnekleri için tasarlanmış bir tarama sistemi ile taramak için geliştirilen mevcut bir metodolojiden uyarlanmıştır. Protokol üç ana adımdan oluşur: (1) nehir makroomurgasızlarının alt örneklerinin (ince ve kaba örneklem boyutu kesirleri) taranması ve her görüntüde tespit edilen her nesneyi kişiselleştirmek için sayısallaştırılmış görüntülerin işlenmesi; (2) taranan örneklerdeki makroomurgasızların bireysel görüntülerini detritus ve eserlerden yarı otomatik olarak ayırmak için yapay zeka aracılığıyla bir öğrenme seti oluşturmak, değerlendirmek ve doğrulamak; ve (3) makroomurgasız topluluklarının boyut yapısını tasvir etmek. Protokole ek olarak, bu çalışma kalibrasyon sonuçlarını içerir ve prosedürü makroomurgasız numunelere uyarlamak ve daha fazla iyileştirme için dikkate almak için çeşitli zorlukları ve önerileri sıralar. Genel olarak, sonuçlar, nehir makroomurgasızlarının otomatik vücut büyüklüğü ölçümü için sunulan tarama sisteminin kullanımını desteklemektedir ve boyut spektrumlarının tasvirinin, tatlı su ekosistemlerinin hızlı biyo-değerlendirmesi için değerli bir araç olduğunu göstermektedir.

Introduction

Bentik makroomurgasızlar, su kütlelerinin ekolojik durumunu belirlemek için biyogöstergeler olarak yaygın olarak kullanılmaktadır1. Makroomurgasız toplulukları tanımlayan endekslerin çoğu taksonomik metriklere odaklanır. Bununla birlikte, vücut büyüklüğünü bütünleştiren yeni biyodeğerlendirme araçları, taksonomik yaklaşımlara alternatif veya tamamlayıcı bir bakış açısı sağlamak için teşvik edilmektedir 2,3.

Vücut büyüklüğü, metabolizma, büyüme, solunum ve hareket4 gibi diğer hayati özelliklerle ilişkili bir metaözellik olarak kabul edilir. Ayrıca, vücut büyüklüğü trofik pozisyonu ve etkileşimleri belirleyebilir5. Bireysel vücut büyüklüğü ile bir topluluktaki boyut sınıfına göre normalleştirilmiş biyokütle (veya bolluk) arasındaki ilişki, boyut spektrumu6 olarak tanımlanır ve logaritmik bir ölçek7'de bireysel boyut arttıkça normalleştirilmiş biyokütlede doğrusal bir azalmanın genel modelini izler. Bu doğrusal ilişkinin eğimi teorik olarak kapsamlı bir şekilde incelenmiştir ve ekosistemler arasındaki ampirik çalışmalar bunu topluluk büyüklüğü yapısının ekolojik bir göstergesi olarak kullanmıştır4. Biyoçeşitlilik-ekosistem işleyişi çalışmalarında başarıyla kullanılan topluluk büyüklüğü yapısının bir diğer sentetik göstergesi, boyut spektrumunun boyut sınıflarının Shannon indeksi veya analogu olarak temsil edilen ve bireysel boyut dağılımlarına göre hesaplanan topluluk büyüklüğü çeşitliliğidir8.

Tatlı su ekosistemlerinde, farklı faunal grupların boyut yapısı, biyotik toplulukların çevresel gradyanlara 9,10,11 ve antropojenik pertürbasyonlara 12,13,14,15,16 tepkisini değerlendirmek için ataksik bir gösterge olarak kullanılır. Makroomurgasızlar bir istisna değildir ve boyut yapıları aynı zamanda çevresel değişikliklere 17,18 ve madencilik 19, arazi kullanımı 20 veya azot (N) ve fosfor (P) zenginleştirme20,21,22 gibi antropojenik bozulmalara da yanıt verir. Bununla birlikte, topluluk büyüklüğü yapısını tanımlamak için yüzlerce kişiyi ölçmek, zaman yetersizliği nedeniyle laboratuvarlarda rutin bir ölçüm olarak kaçınılan sıkıcı ve zaman alıcı bir iştir. Bu nedenle, örnekleri sınıflandırmak ve ölçmek için çeşitli yarı otomatik veya otomatik görüntüleme yöntemleri geliştirilmiştir 23,24,25,26. Bununla birlikte, bu yöntemlerin çoğu, organizmaların bireysel büyüklüğünden daha fazla taksonomik sınıflandırmaya odaklanmıştır ve her türlü makroomurgasız için kullanıma hazır değildir. Deniz plankton ekolojisinde, zooplankton topluluklarının büyüklüğünü ve taksonomik bileşimini belirlemek için bir tarama görüntü analiz sistemi yaygın olarak kullanılmıştır 27,28,29,30,31. Bu cihaz dünya çapında çeşitli deniz enstitülerinde bulunabilir ve tüm numunenin yüksek çözünürlüklü dijital görüntülerini elde etmek için korunmuş zooplankton örneklerini taramak için kullanılır. Mevcut protokol, nehirlerdeki makroomurgasız topluluk büyüklüğü spektrumunu yeni bir cihaz oluşturmaya yatırım yapmadan hızlı bir şekilde otomatik bir şekilde tahmin etmek için bu aracın kullanımını uyarlamaktadır.

Protokol, bir numunenin taranmasından ve numunedeki nesnelerin tek bir görüntüsünü (yani vinyetleri) otomatik olarak elde etmek için tüm görüntünün işlenmesinden oluşur. Şekil, boyut ve gri seviyeli özelliklerin çeşitli ölçümleri her nesneyi karakterize eder ve nesnelerin kategorilere otomatik olarak sınıflandırılmasına izin verir ve bunlar daha sonra bir uzman tarafından doğrulanır. Her organizmanın bireysel boyutu, piksel cinsinden ölçülen organizmanın alanından türetilen elipsoidal biyohacim (mm3) kullanılarak hesaplanır. Bu, numunenin boyut spektrumunun hızlı bir şekilde elde edilmesini sağlar. Bildiğimiz kadarıyla, bu tarama görüntüleme sistemi sadece mezozooplankton örneklerini işlemek için kullanılmıştır, ancak cihaz potansiyel olarak tatlı su bentik makroomurgasızlarla çalışmaya izin verebilir.

Bu nedenle bu çalışmanın genel amacı, daha önce deniz mezozooplankton 27,32,33 ile kullanılan mevcut bir protokolü uyarlayarak korunmuş nehir makroomurgasızlarının bireysel boyutlarını hızlı bir şekilde elde etmek için bir yöntem sunmaktır. Prosedür, su örneklerini taramak için bir tarama cihazı ve taranan görüntüleri işlemek için üç açık yazılım ile çalışan yarı otomatik bir yaklaşım kullanmaktan oluşur. Topluluk büyüklüğü yapısını ve ilgili boyut metriklerini otomatik olarak elde etmek için sayısallaştırılmış nehir makroomurgasızlarını taramak, tespit etmek ve tanımlamak için uyarlanmış bir protokol burada sunulmuştur. Prosedürün değerlendirilmesi ve verimliliği artırmak için kılavuzlar, Kuzeydoğu (NE) İber Yarımadası'ndaki (Ter, Segre-Ebre ve Besòs) üç havzadan toplanan nehir makroomurgasız örneklerinin taranmış 42 görüntüsüne dayanarak da sunulmaktadır.

Örnekler, İspanyol Hükümeti34'ten sürülebilir nehirlerdeki bentik nehir makroomurgasızlarının saha örneklemesi ve laboratuvar analizi protokolünü takiben 100 m nehir uzanımlarında toplandı. Örnekler, çok habitatlı bir anketi takiben bir sörber örnekleyici (çerçeve: 0.3 m x 0.3 m, ağ: 250 μm) ile toplandı. Laboratuvarda, numuneler iki alt numune elde etmek için 5 mm'lik ve 500 μm'lik bir ağ üzerinden temizlendi ve elendi: kaba bir alt numune (5 mm ağ) ve ayrı şişelerde saklanan ve% 70 etanolde saklanan ince bir alt numune (500 μm ağ). Numuneyi iki boyut fraksiyonuna ayırmak, topluluk büyüklüğü yapısının daha iyi tahmin edilmesini sağlar, çünkü büyük organizmalar küçük organizmalardan daha nadir ve daha azdır. Aksi takdirde, taranan numune büyük boyutlu fraksiyonun önyargılı bir temsiline sahiptir.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

NOT: Burada açıklanan protokol, Gorsky ve ark.27 tarafından deniz mezozooplanktonları için geliştirilen sisteme dayanmaktadır. Tarayıcı (ZooSCAN), tarama yazılımı (VueScan 9x64 [9.5.09]), görüntü işleme yazılımı (Zooprocess, ImageJ) ve otomatik tanımlama yazılımı (Plankton Identifier) adımlarının belirli bir açıklaması önceki referanslarda bulunabilir32,33. Bentik makroomurgasızların boyutlarını mezozooplanktona göre en iyi şekilde ayarlamak için, proje orijinal protokol32,33'ü izleyerek oluşturulduktan sonra, yapılandırma dosyasında minimum boyut parametresini (minsizeesd_mm) 0,3 mm ve maksimum boyut parametresini (maxsizeesd_mm) 100 mm olarak değiştirin. Protokolün izlenmesine yardımcı olmak için, bu bir çalışma çizelgesinde özetlenmiştir (Şekil 1). Oluşturulan proje bilgisayarın C klasöründe depolanır ve aşağıdaki klasörlerde düzenlenir: PID_process, Zooscan_back, Zooscan_check, Zooscan_config, Zooscan_meta, Zooscan_results ve Zooscan_scan. Her klasör, farklı yazılım uygulamalarının protokolün aşağıdaki adımlarında kullandığı birkaç alt klasörden oluşur.

1. Makroomurgasız örnekleri için dijital görüntülerin elde edilmesi

  1. Boşluğun taranması ve işlenmesi
    NOT: Taranan görüntüleri aynı gün içinde işlerken arka plan taramalarını ayıklamak için taramadan önce günde iki boş görüntü oluşturun.
    1. Tarayıcıyı açın ve üstten ve alttan beyaz ışık yansıtmak için ışığı çift konumda açın.
      NOT: Mezozooplankton örneklerini tararken, yukarı doğru ışık yönü kullanılır, ancak makroomurgasızlar daha opak olduğundan, ışığın çift konuma getirilmesi önerilir.
    2. Tarama tepsisini temizleyin ve musluk suyuyla durulayın.
    3. Oda sıcaklığında (RT) depolanan 110 mL musluk suyunu, cam kaplanana kadar tarama tepsisine dökün. Büyük çerçeveyi (24,5 cm x 15,8 cm) tarama tepsisine doğru konuma (köşesi tarama tepsisinin sol üst kısmında olacak şekilde) yerleştirin ve taranan görüntüyü değiştirecek bir menisküs etkisinden kaçınmak için çerçevenin basamağı kaplanana kadar musluk suyuyla doldurun. Tarayıcı kapağını kapatın.
      NOT: Yoğuşma ve kabarcık oluşumunu önlemek için RT'de su kullanın. Işık yansımasını önlemek için çerçeveyi iz veya damlacık olmadan temizleyin.
    4. Görüntü işleme yazılımına gidin, çalışan projeyi seçin ve Arka Plan Görüntüsünü Tara (Dönüştür) seçeneğine tıklayın.
    5. Tarama yazılımına gidin ve Önizleme'ye tıklayın. Taranan görüntüyü önizlediğinizden emin olun, çizgi veya nokta olmadığından emin olun ve başka bir taramaya başlamadan önce en az 30 saniye bekleyin. Verileri tarama yazılımından görüntü işleme yazılımına göndermek için ikinci taramadan önce Tara'ya tıklayın ve talimatlar penceresinde Tamam'a basın.
      NOT: Boşluğu oluşturacak iki arka plan taramasını elde etmek için iki kez tarayın. Bu adım, örnek işlemeye başlamadan önce günde bir kez yapılır ve görüntüler Zooscan_back klasöründe saklanır.
    6. Taramayı bitirdikten sonra tarama yazılımını kapatın.
  2. Numune hazırlama ve tarama
    DİKKAT: Etanol yanıcı bir sıvıdır ve ciddi göz hasarına / tahrişine neden olabilir.
    1. Örnek meta verileri doldurun. Görüntü işleme yazılımına gidin ve Örnek Meta Verileri Doldur'u seçin. Örnek kimliği girin, Tamam'a tıklayın ve meta verileri doldurun.
      NOT: Meta dosya özellikle mezozooplankton örnekleri için oluşturulmuştur, bu nedenle bentik makroomurgasız örnekleme metodolojisine uymaz, ancak taramadan önce dosyanın tüm alanlarının doldurulması gerekir, aksi takdirde bir hata bayrağı açılır.
    2. Cam kaplanana kadar tarama tepsisine 110 mL% 70 etanol dökün ve köşesi tarama tepsisinin sol üst kısmına gelecek şekilde büyük çerçeveyi (24,5 cm x 15,8 cm) yerleştirin.
      NOT: Makroomurgasızlar etanolde korunduğundan, su yerine etanol ile çalışın. Suda, tarama tepsisinde yüzer ve sürüklenirler, böylece keskin bir görüntü ve dolayısıyla güvenilir boyut ölçümleri önlerler. Yoğuşma ve kabarcık oluşumunu önlemek için RT'de etanol korunmalıdır.
    3. Makroomurgasızlar örneğini çerçevenin kenarındaki tarama tepsisine dökün ve gerekirse çerçeve adımını daha fazla etanol ile örtün.
      NOT: Organizmaların yüzmesini ve sürüklenmesini önlemek için çok fazla etanol eklemekten kaçının.
    4. Numuneyi çerçeve alanı boyunca homojenize edin, en büyük bireyleri uygun görüntü işleme için tepsinin ortasına yerleştirin ve yüzen organizmaları ahşap bir iğne kullanarak batırın.
      NOT: Bir alt örnek sayısal olarak 1.000'den fazla birey içeriyorsa, taranan görüntüdeki dokunan organizmaları en aza indirmek için alt numuneyi iki veya daha fazla fraksiyona bölün ve fraksiyonları ayrı ayrı tarayın.
    5. Dokunan organizmaları ve çerçeve kenarlarına dokunan organizmaları ahşap iğneyi kullanarak ayırın.
      NOT: Bu adım 5-20 dakika sürer. Dokunan organizmalar yazılım tarafından tek bir nesne olarak kabul edilir; Bu nedenle, bu durumlarda, hesaplanan bireysel boyutlar gerçek tek organizmalara karşılık gelmez ve topluluk büyüklüğü yapısının tahminini önyargılı hale getirebilir. Görüntüyü ayırmak için görüntü işleme yazılımıyla düzenleme olasılığı vardır, ancak bu ek adım en az 1,5 saat yeniden işlemeyi içerir; Bu nedenle, manuel ayırma şiddetle tavsiye edilir.
    6. Örneği taramak için tarayıcı kapağını kapatın, görüntü işleme yazılımına gidin, çalışan projeyi seçin ve Zooscan ile SCAN Sample'a tıklayın (Arşiv İçin, İşlem Yok).
    7. Örneği seçin ve yönergeleri izleyin.
    8. Tarama yazılımına gidin ve Önizleme'ye tıklayın. Taranan görüntüyü önizlediğinizden emin olun, çizgi veya nokta olmadığından emin olun ve başka bir taramaya başlamadan önce en az 30 saniye bekleyin.
    9. En az 30 saniye sonra, tarama yazılımındaki Tara düğmesine tıklayın.
      NOT: Tarama yazılımında Tara düğmesine bastıktan sonra görüntü işleme yazılımında OK düğmesine basın. Bilgisayar klavyesinde herhangi bir tuşa basmayın ve tarama sırasında taramanın titreşimlerinden kaçının. Zooscan_scan > _raw klasöründe üç dosya oluşturulur: (i) etiketli bir görüntü dosyası formatı (.tif) (16 bit); (ii) tarama parametreleri hakkında bilgi kaydeden LOG (.txt) adlı standart bir metin belgesi; ve (iii) örnekleme yöntemleri hakkında bilgi içeren META (.txt) adlı standart bir metin belgesi.
    10. Ham taramanın doğru olduğundan emin olun.
      NOT: Taramada açık çizgiler veya başka görünür sorunlar varsa, aşağıdaki adımlarda sorun yaşamamak için taramayı tekrarlamayı düşünün.
  3. Örnek kurtarma
    1. Çerçeveyi çıkarın ve bağlı makroomurgasızları kurtarmak için% 70 etanol ile doldurulmuş bir sıkma şişesi kullanarak tarama tepsisinin üzerinde durulayın.
    2. Tüm organizmaları ve etanolleri tepsiden tarama alma hunisinden bir beherin içine almak için tarayıcının üst kısmını kaldırın. Tarayıcının üst kısmı hala kaldırılıyken, kalan organizmaları süpürmek için tepsiyi sıkma şişesiyle durulayın.
    3. Omurgasızları ağda tutmak için örnekleri ve etanolleri beherden 500 μm'lik bir ağdan geçirin ve% 70 etanol içeren bir şişede saklayın.
    4. Tüm örnekler şişede geri kazanıldıktan sonra, tepsiyi musluk suyuyla temizleyin.
      NOT: Görüntü işlemeyi değiştiren etanol çökelmesini en aza indirmek için tepsiyi numuneler arasında musluk suyuyla yıkayın. Etanol kullanımıyla ilgili olası hasarları önlemek için çerçeveyi musluk suyuyla durulayın. Günün sonunda, musluk suyu kullanarak tepsiyi temizleyin ve çizilmeleri önlemek için kağıtla hafifçe kurulayın.
  4. Görüntü işleme
    1. Görüntü işleme yazılımına gidin ve Toplu Modda Görüntüleri ve Organizmaları DÖNÜŞTÜR ve İŞLEME ET'i seçin ve ardından Görüntü VE Parçacıkları Dönüştür ve İşle (RAW Klasöründeki Görüntü) öğesini seçin. Varsayılan ayarları koruyun ve Tamam'a tıklayın. NORMAL END işlemin sonunda görünecektir.
      NOT: Bir PID dosyası ve taranan görüntüdeki algılanan tüm nesnelere karşılık gelen vinyetler (bir Birleşik Fotoğraf Grubu dosyasında [.jpg]) Zooscan_scan > _work klasöründe oluşturulur. PID dosyası, tüm meta verileri (meta dosya), günlük dosyasıyla ilişkili teknik verileri ve görüntüde algılanan tüm nesnelerin 36 ölçülen değişkenini içeren bir tabloyu depolayan tek bir dosyadır. Ölçülen değişkenler gri seviye, fraktal boyut, şekil ve boyut gibi farklı tahminlere karşılık gelir. Boyut tahmini için kullanılabilecek değişkenler, nesneye eşit alana sahip bir elipsin alanı ve majör ve minör eksenleridir (protokolün 3. bölümüne bakınız). İşlem süresi, görüntü yoğunluğuna ve bilgisayar özelliklerine bağlıdır ve bir sonraki numuneyi kurtarırken ve hazırlarken numuneler arasında başlatılabilir. Aksi takdirde, her gün taranan numunelerin gece boyunca toplu modda işlenmesinin başlatılması ve ertesi sabah uygun görüntü işlemenin kontrol edilmesi önerilir.
    2. Görüntü işleme yazılımını kullanarak veya .gif bulunan maske görüntülerini (msk1 Zooscan_scan > _work sonlandırılmış) denetleyerek işlenen görüntüdeki arka planın örnek görüntüden uygun şekilde çıkarılıp çıkarılmadığını kontrol edin. Arka planda doygun alanlar veya çok sayıda nokta varsa, yüksek kaliteli görüntüler elde etmek için taramayı tekrarlamayı düşünün.
      NOT: Arka planda doymuş alanları önlemek için, tarama tepsisi etanol ile yapılan her taramadan sonra musluk suyuyla durulanmalıdır. (1) taranan bireylerin sayısını azaltmak (numuneyi parçalayarak ve farklı kıvrımlarda tarayarak); (2) büyük organizmaların tarama tepsisinin ortasına yerleştirildiğinden emin olmak; (3) temiz, filtrelenmiş etanol kullanın; (4) numunelerdeki kirliliği azaltmak; (5) tarama için etanol hacminin yeterli olduğundan emin olmak; ve (6) numunenin önizlemesi ile tarama arasındaki gecikmenin en az 30 s olmasını sağlamak.
  5. Dokunan organizmaların ayrılması
    NOT: Dokunan organizmalara sahip birkaç vinyet olduğunda, topluluk büyüklüğü yapısının doğru bir şekilde tahmin edilmesini sağlamak için dokunan organizmaların görüntülerini diğer organizmalardan ve / veya liflerden / döküntülerden ayırmak gerekir.
    1. Birden fazla nesneye sahip vinyetleri algılamak için görüntü işleme yazılımına gidin. Vinyet Kullanarak Ayırma (SEPARATION Using Vinnettes ) seçeneğini belirleyin ve OK (Tamam) düğmesine basın. Yapılandırma seçimi penceresinde, varsayılan ayarları koruyun ve Tamam'a tıklayın.
    2. VİNYETLERDEN AYIRMA penceresinde, varsayılan ayarları koruyun, ayrıca Vinyetlere Anahatlar EKLE'yi seçin ve ardından düzenlenecek örneği seçin.
    3. Açılan her vinyetteki dokunan organizmaları fare ile bir çizgi çizerek ayırın (çizmek için rulo düğmesine basın). Vinyetteki ayırma işlemi tamamlandıktan sonra, pencerenin sağ üst köşesindeki X düğmesine tıklayın ve bir sonrakini işlemek için EVET düğmesine basın. Değişiklikleri sonlandırmak ve kaydetmek için HAYIR'a basın. İşlemin sonunda, her şey doğruysa NORMAL END görünecektir.
    4. Ayırmadan sonra, güncelleştirilmiş nesne verilerini elde etmek için görüntüyü yeniden işleyin. Görüntü işleme yazılımına gidin, PROCESS (Converted) Image (Process One) üzerine tıklayın ve WORK Alt Klasörlerindeki İşlenmiş Görüntülerden Parçacıkları Yeniden İşle'yi seçin. Örneği seçin ve Tek Görüntü İşlemi penceresinde varsayılan ayarları koruyun, Ayırma Maskesiyle Çalış (CREATE-MODIFY-INCLUDE) seçeneğini işaretleyin ve ardından Tamam'a tıklayın. İşlemin sonunda, her şey doğruysa NORMAL END görünecektir.
    5. Ayırma Denetimi penceresinde, işlemeden önce görüntüyü konturlarla kaydetmek için Tamam'a basın; önceki bir görüntü varsa, değiştirilir.
    6. Ayırma Denetim Maskesi penceresinde, gerekirse, vinyet kullanarak ayırma adımında daha önce görünmeyen dokunaklı organizmaları ayırmak üzere fareyi kullanarak maskeye ayırma çizgileri eklemek için DÜZENLE'yi seçin. İşiniz bittiğinde işlemi sonlandırın ve Ayırma Maskesi Denetimi penceresinde maskeyi kabul etmek için Evet'i seçin. İşlemin sonunda, her şey doğruysa NORMAL END görünecektir.
      NOT: Bir numunenin ayırma maskesiyle yeniden işlenmesi zaman alıcıdır (bu, numune başına 1,5 saatten fazla sürebilir). Bu ek adımdan kaçınmak için adım 1.2.5'te gerekli zamanın ayrılması tercih edilir.

2. Nesnelerin otomatik olarak tanınması

NOT: Algılanan nesnelerin kimliğini otomatik olarak tahmin etmek için bir öğrenme kümesi oluşturun, böylece organizmaları numunedeki enkazdan ayırın.

  1. Öğrenme seti oluşturma
    1. Öğrenme kümesinin kategorilerini oluşturmak için kullanılacak görüntüleri ve görüntülerle ilişkili .pid dosyalarını Zooscan_scan > _work PID_process > Unsorted_vignettes_pid kopyalayın.
      NOT: Numunelerdeki organizmaların maksimum temsilini sağlamak için yüksek takson çeşitliliğine ve farklı numune alma alanlarına ve/veya numune alma mevsimlerine sahip numunelerin bir alt kümesini seçin.
    2. PID_process > Öğrenme kümesi klasöründe, yeni öğrenme kümesinin adını taşıyan bir alt klasör oluşturun (yani, yyyymmdd_raw_LS) ve içinde, öğrenme kümesinin her kategorisine karşılık gelecek alt klasörleri oluşturun (örneğin, makroomurgasızlar, enkaz, diğer omurgasızlar).
      NOT: Nehir makroomurgasız örneklerinin topluluk büyüklüğü yapısını verimli bir şekilde elde etmek için, yalnızca üç kategoriye dayanan bir öğrenme seti kullanılması önerilir: makroomurgasızlar, diğer omurgasızlar ve enkaz. Bu öğrenme seti temel olarak organizmalara karşılık gelen nesnelerin vinyetlerini enkazlara karşılık gelenlerden (örneğin, lifler, parçacıklar veya filamentli algler) ayırır.
    3. Görüntü işleme yazılımına gidin (yalnızca Gelişmiş mod) ve PLANKTON IDENTIFIER için EXTRACT Vinyetleri (eğitim için sıralanmamış vinyetler) öğesini seçin. Varsayılan seçenekleri koruyun ve Anahat Ekle kutusunu işaretleyin.
    4. Otomatik tanımlama yazılımına gidin, Öğrenme'ye tıklayın, yeni öğrenme kümesi için oluşturulan alt klasörü PID_process > Learning_set seçin (adım 2.1.2) ve Tamam'a basın.
    5. Açık pencerenin sol bölümünde (Sıralanmamış Başparmaklar), vignettes_pid Sıralanmamış klasörünü seçin. Vinyetleri seçin ve her nesneyi tanımlanmış kategorilere ayırmak için fareyle sıralanmamış başparmaklardan sağ bölümdeki ilgili kategorinin klasörüne, Sıralanmış Başparmaklar'a sürükleyin. Taşınan vinyetler kırmızı X ile işaretlenir.
      NOT: Sıralanmış başparmak klasöründe alt klasörler oluşturarak kategorileri manuel olarak tanımlayın veya yazılımdaki klasörler simgesine tıklayarak oluşturun. Aynı anda 50'den fazla vinyet taşımayın.
    6. Tüm kategoriler seçilen nesnelerle tamamlandıktan sonra (kategori başına yaklaşık 300 nesne), Öğrenme Dosyası Oluştur'a tıklayın ve istediğiniz adla kaydedin.
      NOT: Öğrenme kümesi, projenin PID_process > Öğrenme kümesi klasörüne bir .pid dosyası olarak kaydedilir. Farklı kategori seviyelerine (kabadan ince formlara) ve her kategorideki nesne sayısının farklı bir dengesine sahip birkaç öğrenme seti oluşturulması ve test edilmesi önerilir. Düşük sayıda kategori ve kategori başına en az 50 nesne içeren kaba bir öğrenme seti ile başlayın ve ardından her kategorideki nesne sayısını artırın ve / veya daha ince öğrenme kümeleri oluşturun. Bir kategori, numune kümesindeki değişkenliğini temsil etmelidir.
  2. Öğrenme setinin değerlendirilmesi
    NOT: Nesnelerin sonuçta sınıflandırılmasının bir karışıklık matrisini elde etmek için otomatik tanımlama yazılımıyla Rastgele Orman yöntemini kullanarak iki kat ve beş deneme ile çapraz doğrulama gerçekleştirin.
    1. Otomatik sınıflandırma yazılımına gidin ve Veri Analizi'ne tıklayın.
    2. Öğrenme dosyası seç'te, PID_process > Öğrenme kümesinden oluşturulan öğrenme kümesi dosyasını seçin.
    3. Bir yöntem seçin alanında, Çapraz Doğrulama Rasgele Orman yöntemini seçin. Orijinal Değişkenler'de, konum değişkenlerinin (X, Y, XM, YM, BX, BY ve Height) işaretini kaldırın. Özelleştirilmiş Değişkenler'de, yalnızca ESD'yi işaretleyin.
      NOT: Bu yöntem, diğer kısmı tanımak için öğrenme kümesinin rastgele bir bölümünü kullanır (iki kat) ve bu, istatistiksel olarak sağlam olduğundan emin olmak için beş kez tekrarlanır.
    4. Analizi Başlat'a tıklayın ve sonuçları Analysis_name.txt Tahmin klasörüne PID_process > olarak kaydedin. Analiz başarıyla tamamlandığında, veri analizinden çıkın.
    5. PID_process > Tahmin klasörüne gidin ve çapraz doğrulama dosyasına tıklayın. Gerçek sınıflandırmanın (satırlar) karışıklık matrisi ile otomatik sınıflandırmanın (sütunlar) karışıklık matrisini içeren bir pencere açılacaktır.
      NOT: Geri çağırma, otomatik olarak iyi tanınan bir gruba ait organizmaların yüzdesidir, oysa 1-hassasiyet, algoritma tarafından tanınmayan bir grup olarak sınıflandırılan organizmaların yüzdesidir (bir grupta kontaminasyon). Geri çağırma %70'in üzerinde olmalı ve kontaminasyon (1 hassasiyetli) %20'den düşük olmalıdır.
    6. Birkaç öğrenme kümesi oluşturulduysa ve her birinin geri çağırma ve 1 duyarlılığının elde edilmesi gerekiyorsa, 2.1-2.5 arasındaki adımları tekrarlayın.
      NOT: Birkaç öğrenme seti oluşturulduysa, bir sonraki adımda bir numune kümesinin otomatik tahminini test etmek için ilgili grubun (yani makroomurgasızlar) en yüksek hatırlama (iyi tanıma) ve hassasiyetine (düşük kontaminasyon) sahip olanı seçin.
  3. Makroomurgasızların tanımlanmasının tahmini
    NOT: Rastgele orman algoritmasına sahip otomatik tanımlama yazılımını kullanarak örneklerin bir alt kümesindeki tüm nesnelerin kimliğini tahmin etmek için seçilen öğrenme kümesini kullanın.
    1. Otomatik tanımlama yazılımına gidin ve Veri Analizi'ne tıklayın.
    2. Öğrenme dosyası seç'te, tahmin için kullanılması gereken PID_process > Öğrenme kümesinden öğrenme kümesi dosyasını seçin.
    3. Örnek Dosyaları Seç bölümünde, PID_results klasörden tahmin edilecek örnekleri (PID dosyaları) seçin.
      NOT: Bellek sorunlarıyla ilgili hataları önlemek için aynı anda en fazla 20 .pid dosyasını işleyin. Aynı anda çok fazla .pid dosyası işlenirse, işlem doğru bir son gösterir, ancak iyi işlenmeyebilir ve görüntü işleme yazılımıyla işlenirken sonraki adımlarda bir hata oluşabilir.
    4. Bir Yöntem Seç'te, Rastgele Orman yöntemini seçin. Her örnek için Ayrıntılı Sonuçları Kaydet'i işaretleyin. Orijinal Değişkenler'de, konum değişkenlerinin (X, Y, XM, YM, BX, BY ve Height) işaretini kaldırın. Özelleştirilmiş Değişkenler'de yalnızca ESD'yi işaretleyin.
    5. Analizi Başlat'a tıklayın ve sonuçları Analysis_name.txt Tahmin klasörüne PID_process > olarak kaydedin.
  4. El ile doğrulama
    NOT: Bir uzman, yanlış sınıflandırılmış nesneleri doğru kategoriye yeniden sınıflandırmak için önceki adımdaki tahmini el ile doğrular.
    1. Doğrulanacak Analysis_sample_dat1.txt dosyaları PID_process > Tahmini klasöründen PID_process > Pid_results klasörüne kopyalayın.
    2. Görüntü işleme yazılımına gidin ve PREDICTION veya VALIDATION'a Göre Klasörlerdeki Vinyetleri EXTRACT öğesini seçin. Ardından, " pid_results" Klasöründen PREDICTED Files Kullan'ı seçin. Varsayılan ayarları koruyun ve Tamam düğmesine basın.
    3. Yazılım , sample_yyyymmdd_hhmm_to_validate Sıralanmış vinyetler klasöründe tahmin edilen nesnelerle PID_process > adlı bir klasör oluşturur.
    4. PID_process > Sıralanmış vinyetler klasörüne gidin ve klasörü sample_yyyymmdd_ hhmm_to_validate kopyalayın. Doğrulamak _to klasör adını _validated ile değiştirin.
    5. Otomatik sınıflandırmayı el ile doğrulamak için, sample_yyyymmdd_ hhmm_validated klasörünü açın ve yanlış sınıflandırılmış nesneler olup olmadığını belirlemek için her bir alt klasördeki (kategori) tüm vinyetleri gözden geçirin. Bir nesne yanlış sınıflandırıldığında, fareyi kullanarak vinyeti doğru klasöre (kategori) sürükleyin.
    6. Görüntü işleme yazılımına gidin ve Sıralanmış Vinyetler'den YÜK Tanımlamaları'nı seçin. Varsayılan ayarları koruyun ve yyyymmdd_hhmm_name_validated seçin.
    7. PID_process > Pid_results > Dat1_validated adlı bir dosyanın ve doğrulanmış örneklerin (Id_from_sorted_vignettes_yyyymmdd_hhmm.txt) her biri için bir .txt dosyasının oluşturulduğu sample_tot_1_dat1.txt gidin.
      NOT: Bu .txt dosyaları, her nesnenin uzman sınıflandırmasını (yani, doğrulanmış sınıflandırmayı) belirten pred_valid_Id_yyyymmdd_hhmm adı verilen tahmini sunan yeni bir sütun içerir. Bu noktada, doğrulama sırasında yeni kategoriler (örneğin, daha ince taksonomik kategoriler) oluşturulabilir. Ancak, orijinal kategorinin adını yeni adda tutun (ör. macroinvertebrate_chironomidae). Bu, geri çağırma ve hassasiyeti hesaplarken orijinal kategorinin yeniden izlenmesine ve topluluk boyutu yapı parametrelerini (yani, boyut spektrumu ve boyut çeşitliliği) hesaplamak için tüm makroomurgasızların kolayca gruplandırılmasına olanak tanır. Metin dosyası, her organizmanın elipsoidal hacmini bireysel vücut boyutunun bir ölçüsü olarak elde etmek için kullanılan küçük ve büyük eksenler de dahil olmak üzere her nesneyle ilişkili verileri sağlar. Ayrıca, tablonun son iki sütunu, her nesnenin (satır) tahmin edilen ve doğrulanan kategorilerini içerir ve bu da örneklerin alt kümesindeki öğrenme kümesinin geri çağrılmasını ve hassasiyetini kategoriye göre hesaplamaya olanak tanır.Figure 1

Şekil 1: Protokolün bölüm 1 ve bölüm 2'sini temsil eden çalışma şeması. Zamanlar açıklayıcıdır ve bilgisayara, işlenecek vinyetlerin bolluğuna ve öğrenme kümesinin kategori sayısına bağlı olarak değişebilir. Bu durum, 42 alt örneklemden oluşan bir kümede (toplamda 47.473 vinyet) üç kategoriden oluşan bir öğrenme kümesinin doğrulanmasına karşılık gelir. Bu şeklin daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.

3. Tek tek boyut dağılımını, boyut spektrumlarını ve boyut metriklerini hesaplama

NOT: Bu bölümde bahsedilen hesaplamalar Matlab kullanılarak gerçekleştirilmiştir (Ek Dosya 1 olarak komut dosyasına bakın).

  1. Bireysel boyut dağılımı
    1. Id_from_sorted_vignettes_YYYYMMDD_HHHH.txt dosyasının son sütunu, nesnelerin doğrulanmış sınıflandırmasını içerir. Örnekteki bireysel boyut dağılımlarını göstermek için yalnızca makroomurgasız olarak sınıflandırılan nesneleri seçin.
      NOT: Bireysel vücut büyüklüğü, makroomurgasız organizmaların elipsoidal hacmine karşılık gelir. Sistem ölçümleri piksel cinsinden sağlar.
    2. Vektörleri her iki taramadaki boyut ölçümleriyle birleştirin, çünkü her kesirin farklı bir alt örnekleme üssü vardır. Birleştirmeden önce, boyut vektörlerini karşılık gelen alt örneklemin fraksiyone edildiği kadar çoğaltarak fraksiyonasyon için düzeltin.
      NOT: Bu adım, tarama bir numunenin bir kısmına karşılık geliyorsa (yani, kaba veya ince) gereklidir.
    3. Elipsoidal hacmi, organizmalarla aynı piksel alanlarına sahip prolat elipsoidlerin majör (M) ve minör (m) eksenlerinden hesaplayın. Elipsoidal hacmi hesaplamadan önce, aşağıdaki dönüştürme faktörü (cf) ile majör (M) ve minör (m) eksenleri pikselden milimetreye (mm) dönüştürün:
      1 piksel = 2.400 dpi
      1 inç = 25,4 mm
      cf = 25,4/2400
      Elipsoidal hacim (mm3 cinsinden birimlere sahip elipVol) aşağıdakilere karşılık gelir:
      Equation 1
    4. Günlük2 ölçeğinde tek tek boyut dağılımının olasılık yoğunluğu işlevini gösterin.
  2. Boyut çeşitliliği
    1. García-Comas et al. (2016)35'te olduğu gibi, Quintana et al. (2008)8'i takiben boyut çeşitliliğini (Sd) hesaplayın:
      Equation 2
      burada p x(x), x boyutunun olasılık yoğunluğu fonksiyonudur ve x, log2'yi (ellipVol) temsil eder. Bu nedenle, bu ölçüm, bir topluluktaki bireysel boyut dağılımı gibi sürekli bir ölçüme uyarlanmış Shannon çeşitlilik endeksidir.
  3. Normalleştirilmiş biyohacim boyutu spektrumu (NBSS)
    1. NBSS'nin boyut sınıflarını tanımlayın, spektrumun alt sınırını örneklerdeki makroomurgasız boyut dağılımının 0.01 kantilini olarak belirleyin ve örneklerdeki en büyük organizma kuşatılana kadar taban 2'nin geometrik ölçeği ile boyut sınıfları oluşturun.
      NOT: Boyut sınıfı genişliği, daha büyük boyutlarla ilişkili daha büyük değişkenliği hesaba katmak için boyutla birlikte artar. Burada analiz edilen makroomurgasız toplulukların NBSS'si 14 boyut sınıfına sahipti (Tablo 1).
    2. Her boyut sınıfındaki toplam biyohacmi boyut sınıfı genişliğine bölerek normalleştirilmiş biyohacmi elde edin.
  4. Boyut spektrum eğimi
    1. NBSS'nin doğrusal eğimini hesaplayın.
      NOT: Eğim (μ), moddan daha büyük boyut sınıflarındaki log 2 (boyut sınıfı orta noktası) ile log2 (normalleştirilmiş biyokütle) arasındaki ilişkiye dayanarak, boş olanları (bu çalışmada, 3'ten 14'e kadar olan boyut sınıfları) göz ardı ederek hesaplanır.
Boyut sınıfı sınırları (mm3) Boyut sınıfı orta noktası (mm3)
0,1236 0,1855
0,2473 0,3709
0,4946 0,7418
0,9891 1,4837
1,9783 1,4837
3,9560 5,9348
7,9131 11,8696
15,8261 23,7392
31,6522 47,4783
63,3044 94,9567
126,6089 189,9133
253,2178 379,8267
506,4300 7597,7000
1012,9000 15193,0000
2025,7000

Tablo 1: Normalleştirilmiş biyokütle boyut spektrumunun (NBSS) boyut sınıfları. Tablo ayrıca organizmaların 15 boyut sınıfı sınırını ve boyut sınıfı orta noktalarını göstermektedir.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

Makroomurgasız örneklerinin dijital görüntülerinin elde edilmesi
Tarama nüansları: Tarama tepsisinde etanol birikimi
Sistemi makroomurgasızlar için test ederken, birkaç tarama kalitesizdi. Arka plandaki koyu doymuş bir alan, görüntünün normal olarak işlenmesini ve makroomurgasızların bireysel boyutlarının ölçülmesini engelledi (Şekil 2). Arka planda doymuş alanların veya yüksek pikselli görüntülerin ortaya çıkması için çeşitli nedenler verilmiştir: (1) tarama tepsisinde çok fazla organizmanın varlığı; (2) numunelerde kirlilik varlığı; (3) numunenin önizlemesi ile taranması arasında yetersiz bir gecikme; veya (4) görüntü işlemede yoğuşma, kirlilik veya düşük su kalitesi nedeniyle düşük kalitede bir arka plan görüntüsü kullanmak33. Makroomurgasız topluluk örneklerinde, su yerine etanol kullanımı, tepside çökelmeye neden olur, bu da taramalar arasında suyla düzgün bir şekilde durulanmazsa koyu bir gölge oluşturur. Bu, keskin görüntüler elde etmek ve tarama tepsisi camının ilgili korozyonunu en aza indirmek için hayati önem taşır.

Tarama nüansları: Enkaz konsantrasyonu
47.473 vinyetin bir alt kümesinin analizinden, yüksek bir yüzde (% 86.1), detritus, lifler veya vücut parçaları (bacaklar veya solungaçlar gibi) veya tarama artefaktları (Şekil 3A-E) dahil olmak üzere enkazlara karşılık geldi. Omurgasız organizmalar, tespit edilen nesnelerin geri kalan% 13.9'una karşılık geldi (Şekil 3F-L). Bu nedenle, organizmaların laboratuvardaki organik maddeden önceki titizlikle ayrılmasına rağmen, şişede hala bol miktarda küçük kalıntı kaldı.

Tarama nüansları: Nesnelere dokunma
Enkazın önemli varlığı, organizmalar arasındaki dokunmayı ve dolayısıyla çoklu dokunan organizmaları ve parçacıklara veya liflere bağlı organizmaları içeren agregalarla vinyetlerin oluşturulmasını arttırır (Şekil 4A-C). Bu vinyetler, bireysel boyut yapısının şeklini belirlemede bir önyargı kaynağıdır. Beş örnekten oluşan bir sette (11 alt örnek), herhangi bir makroomurgasızla birlikte tüm vinyetlerin% 10'u, dokunan organizmalara veya parçacıklara veya liflere dokunan organizmalara sahip gruplara karşılık geldi. Bu vinyetler, dokunan organizmaları ve parçacıkların bağlı olduğu organizmaları ayırmak için görüntü işleme programı ile düzenlendi. Numunelerin ayırma maskesi ile yeniden işlenmesi, uygun sınıflandırmalarını sağlamak için doğrulanan yeni ayrılmış nesnelerle yeni vinyetlerin oluşturulmasını içeriyordu.

Nesnelerin otomatik olarak tanınması
Öğrenme kümesi sonuçları
Bir öğrenme seti, bir uzman tarafından farklı kategorilere ayrılan ve denetimli bir öğrenme modelinde kullanılan nesnelerin vinyet kümesidir ve buna eğitim seti27 de denebilir. Mevcut bir öğrenme seti ile çalışmak, mevcut öğrenme setini yeni vinyetler ve / veya kategorilerle güncellemek veya belirli bir proje için yeni bir öğrenme seti oluşturmak mümkündür.

Makroomurgasız boyut yapısını hızlı bir şekilde elde etmek için en iyi öğrenme kümesini belirlemek için, Rastgele Orman algoritması ile çapraz doğrulama yoluyla birkaç öğrenme kümesi oluşturulmuş ve test edilmiştir. Ortaya çıkan karışıklık matrisi, otomatik sınıflandırmaya (sütunlar) karşı gerçek sınıflandırmayı (satırlar) gösterir. Geri çağırma, otomatik olarak iyi sınıflandırılmış bir kategoriye ait organizmaların yüzdesidir, oysa 1-hassasiyet, algoritma tarafından bir kategoriye ait olarak yanlış sınıflandırılmış organizmaların yüzdesidir (bir kategoride kontaminasyon)33. Genel bir kural olarak, hatırlama %70'in üzerinde olmalı ve bir kategoriyi öğrenme kümesinde tutmak için kontaminasyon (1 hassasiyetli) %20'den düşük olmalıdır. Makroomurgasızlar için en büyük hatırlama ve hassasiyete sahip öğrenme seti, daha sonra makroomurgasız tanımlamadaki gerçek doğruluğunu belirlemek için bir örnek alt kümesi ile daha da doğrulanır.

Nesnelerin morfolojik özelliklerine dayanan kategorilere sahip üç tip ataksik öğrenme seti (ham, orta ve ince) test edildi. Ham öğrenme seti üç kategoriden oluşuyordu: makroomurgasızlar, diğer omurgasızlar (mikro kabuklular) ve enkaz (lifler, parçacıklar ve cam lekeleri gibi eserler). Ara öğrenme seti 16 kategoriden oluşuyordu: 5'i makroomurgasızlar için, 3'ü diğer omurgasızlar için ve 8'i enkaz için. İnce öğrenme seti, toplam 20 kategoriden oluşan 4 makroomurgasız kategorisini daha içeriyordu (Tablo 2).

Kategorilerin tanımlanmasına ek olarak, kategori başına vinyet sayısının etkisi de test edildi. Her öğrenme seti, her kategoride 50 vinyet, 100 vinyet ve 300 vinyet (ve üç kategorili ham öğrenme seti için 500 vinyet) kullanılarak ayrı ayrı test edilmiştir. "Ostracoda", "uzun yuvarlak makroomurgasızlar" ve "yuvarlak kabuklu makroomurgasızlar" hariç tüm kategoriler sayı olarak dengelendi ve 100 vinyet ve 300 vinyet öğrenme setinde daha az birey içeriyordu, çünkü taranan görüntülerde bu kategorilerin yeterli organizması tespit edilmedi.

Makroomurgasızlar (tüm makroinverebrate kategorileri birlikte) ve organizmalar (makroomurgasız ve diğer omurgasız kategorileri birlikte) için hatırlama ve hassasiyet, çapraz doğrulama ile belirlenen en iyi öğrenmeyi seçmek için düşünülmüştür ( Ek Dosya 2'deki tablolara bakınız). En iyi öğrenme seti, her kategoride 300 nesne bulunan üç kategorili (makroomurgasızlar, diğer omurgasızlar ve enkaz) ham öğrenme setiydi (Tablo 2). Ham öğrenme kümesi daha sonra taranan örneklerin alt kümesindeki nesnelerin otomatik sınıflandırmasını doğrulamak için kullanıldı.

Öğrenme seti Kategori sayısı Kategori başına resim sayısı Organizmaları Geri Çağırma Makro omurgasızları hatırlayın 1-hassas organizmalar 1 hassas makroomurgasızlar
Çiğ 3 50 0.97 0.84 0.12 0.24
100 0.96 0.87 0.06 0.17
300 0.95 0.91 0.09 0.15
500 0.93 0.88 0.13 0.2
Orta 16 50 0.83 0.77 0.17 0.24
100 0.84 0.79 0.15 0.21
300 0.87 0.84 0.14 0.18
İyi 20 50 0.89 0.86 0.14 0.18
100 0.9 0.87 0.11 0.14
300 0.9 0.86 0.13 0.14

Tablo 2: Her birinin içindeki kategoriler ve kategori başına nesne sayısı ile öğrenme kümeleri (ham, orta ve iyi) oluşturulmuş ve test edilmiştir. Oluşturulan öğrenme setlerinin hatırlanması ve 1 hassasiyeti. Ham öğrenme kümesinin kategorileri: Makroomurgasızlar (1), Diğer omurgasızlar (2), Enkaz (3). Orta öğrenme setinin kategorileri: Uzun makroomurgasızlar (1), Uzun pürüzsüz makroomurgasızlar (2), Uzun dikenli makroomurgasızlar (3), Yuvarlak makroomurgasızlar (4), Yuvarlak kabuklu makroomurgasızlar (5), Cladocera (6), Copepoda (7), Ostracoda (8), Agregalar (9), Lifler (10), Kafalar (11), Bacaklar (12), Lekeler (13), Koyu lekeler (14), Açık gri lekeler (15), Yuvarlak lekeler (16). İnce öğrenme setinin kategorileri: Uzun makroomurgasızlar (1), Uzun pürüzsüz makroomurgasızlar (2), Uzun pürüzsüz koyu makroomurgasızlar (3), Uzun yuvarlak makroomurgasızlar (4), Uzun dikenli makroomurgasızlar (5), Yuvarlak makroomurgasızlar (6), Yuvarlak kabuklu makroomurgasızlar (7), Yuvarlak koyu makroomurgasızlar (8), Yuvarlak kabuklu makroomurgasızlar (9), Cladocera (10), Copepoda (11), Ostracoda (12), Agregalar (13), Lifler (14), Kafalar (15), Bacaklar (16), Lekeler (17), Koyu lekeler (18), açık gri lekeler (19), Yuvarlak lekeler (20).

En iyi öğrenme seti ile otomatik tanımanın doğrulanması
42 ince ve kaba alt örneklemden oluşan bir alt kümedeki nesneler, seçilen öğrenme kümesi tarafından Rastgele Orman algoritması ile otomatik olarak sınıflandırıldı. Manuel doğrulamadan sonra, tüm kategoriler için geri çağırma yüksek (ortalama olarak, makroomurgasızlar için 0.94, diğer omurgasızlar için 0.95 ve enkaz için 0.92), diğer omurgasızlar hariç (makroomurgasızlar için 0.25, diğer makroomurgasızlar için 0.84 ve enkaz için 0.01) kontaminasyon (1-hassasiyet) oldukça düşüktü (Şekil 5 ). Diğer omurgasızlar (mikrokabuklular) örneklerde nadirdi (42 alt örnekten 17'sinde mevcut); bu nedenle, karşılaştırma sağlam değildi. Dahası, bu kategori, şekil ve gri seviyelerdeki benzerlik nedeniyle diğer nesnelere olan kontaminasyondan oldukça etkilenmiştir.

Otomatik ve doğrulanmış makroomurgasız bolluğunun karşılaştırılması, bunların yüksek oranda ilişkili olduğunu göstermiştir (Pearson'un r = 0.92, p değeri < 0.0001, kaba alt örnekler için n = 24; Pearson'ın r = 0.98, p-değeri < 0.0001, n = 18), enkazdan kaynaklanan kirlenme nedeniyle otomatik performansla hafif bir abartma ile (eğimler < 1) (Şekil 6). Ortalama elipsoidal hacmin karşılaştırılması ile ilgili olarak, korelasyon da yüksekti (Pearson'un r = 0.96, p değeri < 0.0001, kaba örnekler için n = 24; Pearson'ın r = 0.99, p-değeri < 0.0001, ince örnekler için n = 18) ve boyut spektrum eğimi -1'e yakındı (Şekil 6). İnce ve kaba fraksiyonlar arasındaki eğimlerdeki fark, düşük organizma sayımlarıyla ilişkili olan büyük boyutlu fraksiyonlardaki yanlış sınıflandırmanın daha büyük etkisini yansıtır.

Otomatik tahminin bireysel boyut dağılımlarının olasılık yoğunluğu fonksiyonları, ince alt numuneler ve kaba alt numuneler için doğrulanmış tahminlerle güçlü bir şekilde uyuşmuştur. Bununla birlikte, organizmaların sayısı ile ilgili kaba alt örnekler için bazı istisnalar vardı ve bu nedenle, daha önce vurgulandığı gibi, bu durumlarda yanlış sınıflandırmanın daha büyük etkisi vardı (Şekil 7).

Dokunan organizmaların bireysel boyut dağılımları, boyut spektrumları ve boyut metrikleri üzerindeki etkisi
Dokunan organizmaların ayrılmasından önce ve sonra ve seçilen beş numunenin bir alt kümesinde doğrulamadan önce elde edilen boyut dağılımlarının karşılaştırılması, dokunan nesnelere dokunmanın etkisini değerlendirmek için yapılmıştır. Boyut dağılımlarını karşılaştırmak için, kaba ve ince alt örnekler, makroomurgasız topluluğunu temsil eden bir örneği yeniden oluşturmak için fraksiyonasyonlarına göre birleştirildi. Üç örnekte, validasyondan sonraki bolluk artmıştır (>500 kişi) (Şekil 8A). Bu artışa rağmen, ortalama elipsoidal hacim, doğrulanmış örneklerde hesaplanana çok yakındır (Şekil 8B).

Düzeltilmiş numunelerin boyut dağılımları (dokunan organizmaların ayrılmasından sonra), doğrulanmış olanlardan biraz farklıydı. Bu nedenle, birden fazla nesnenin varlığı, bu örneklerdeki boyut dağılımları üzerinde küçük bir etkiye sahipti (Şekil 9A-E). Buna göre, düzeltilmiş örneklere dayanarak hesaplanan boyut çeşitliliği, doğrulanmış örneklerin boyut çeşitliliği ile güçlü bir şekilde korelasyon göstermiştir (Pearson'un r = 0.94, p-değeri = 0.017, n = 5) (Şekil 9F).

Teorik olarak, birkaç trofik seviyeye sahip bir topluluğun normalleştirilmiş biyohacim boyutu spektrumu (NBSS), log2 ölçeğinde kararlı durum koşullarında4 -1'e yaklaşan bir boyut spektrum eğimine sahiptir. Doğal topluluklardaki NBSS genellikle doğrusal bir dağılımdan ziyade bir yumruya sahiptir ve bu çoğunlukla en küçük boyut sınıflarının örnekleme yanlılığına atfedilir36. Bu çalışmada, üçüncü boyut sınıfı NBSS'de en yaygın olanıydı.

NBSS'ler, protokolün adımları arasında oldukça benzerdi (Şekil 10A-C), birkaç spektrumdaki birkaç boyut sınıfı dışında (Şekil 10D-E). Buna göre, düzeltilmiş numunelere dayanarak hesaplanan boyut spektrum eğimi, doğrulanmış örneklere dayanan eğimle güçlü bir şekilde korelasyon göstermiştir (Pearson'un r = 0.99, p değeri ≤ 0.0001, n = 5) (Şekil 10F).

Figure 2
Şekil 2: İşlenmeden önce ve sonra farklı niteliklere sahip taranmış görüntülere örnekler. (A,B) İyi tarama kalitesine sahip ince bir alt numunenin ham görüntüsü (solda) ve işlenmiş görüntüsü (sağda); (C,D) Kötü tarama kalitesine sahip ince bir alt örneğin ham görüntüsü (solda) ve işlenmiş görüntüsü (sağda) (koyu arka plan ve sol kenarda kesilmiş görüntü); (E,F) kötü tarama kalitesine (çok pikselli koyu arka plan) sahip ince bir alt numunenin ham görüntüsü (solda) ve işlenmiş görüntüsü (sağda). Bu şeklin daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.

Figure 3
Şekil 3: Örneklerde bulunan farklı nesneleri temsil eden kontur vinyetleri. (A-E) Enkaz (lif, yuvarlak leke, makroomurgasız bacak, lekeler ve organik döküntü); (F-I) makroomurgasızlar (Coleoptera, Diptera, Plecoptera ve Trichoptera) ve (J-L) diğer omurgasızlar (Cladocera, Copepoda ve Ostracoda). Ölçek çubukları 1 mm gma = 1.1'i gösterir. Bu şeklin daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.

Figure 4
Şekil 4: Birden fazla nesne içeren vinyet örnekleri. (A) Bir lif üzerine bağlı bir makroomurgasız (Hydracarina); (B) Bir lif tarafından toplanmış çoklu organizmalar (Caenidae); ve (C) iki dokunaklı makroomurgasız (Chironomidae ve Caenidae). Ölçek çubukları 1 mm gma = 1.1'i gösterir. Bu şeklin daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.

Figure 5
Şekil 5: Geri çağırma ve kontaminasyon kutu grafikleri (1-hassasiyet). Seçilen öğrenme kümesinin makroomurgasızlar, diğer omurgasızlar ve enkaz (kategori başına 300 vinyet) üç kategorisi için kutu grafikleri, örneklerin bir alt kümesinde (n = 42) doğrulanmıştır. Bu şeklin daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.

Figure 6
Şekil 6: Otomatik ve doğrulanmış sınıflandırmada bolluk ve ortalama elipsoidal hacim tahminleri arasındaki karşılaştırma. (A) Alt örneklerdeki bolluk tahminleri (n = 42) ve (B) alt örneklerdeki ortalama elipsoidal hacim tahminleri (n = 42). Koyu noktalar kaba alt örneklere karşılık gelir (>0,5 cm ağ); gri noktalar ince alt örneklere karşılık gelir (>500 μm ağ). Kesikli çizgi 1:1 ilişkisini temsil eder. Bu şeklin daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.

Figure 7
Şekil 7: Otomatik tahminler ile doğrulanmış tahminler arasında karşılaştırma için günlük ölçeğindeki (x ekseni) bireysel boyutun göreli katkısını (y ekseni) temsil eden olasılık yoğunluğu fonksiyonları. (A,B) Kaba alt örnekler için otomatik ve doğrulanmış tahminler (n = 18), (C,D) İnce alt örnekler için otomatik ve doğrulanmış tahminler (n = 24). (A,C) Otomatik tahminler arasındaki karşılaştırma ve doğrulanmış tahminler arasındaki (B,D) karşılaştırması. Renkler, spektrumları ayırt etmeye yardımcı olmak için her bir alt örneği temsil eder. Bu şeklin daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.

Figure 8
Şekil 8: Doğrulanmış alt örneklerdeki bolluk ve ortalama elipsoidal hacim tahminleri ile dokunulan nesnelerin seçilen doğal örneklerden (ince ve kaba alt örnekler birlikte) ayrılmasından sonra doğrulanan alt örnekler arasındaki karşılaştırma. (A) Örnekleme çerçevesi ile bolluk tahminleri (n = 5) ve (B) ortalama elipsoidal hacim tahminleri (n = 5). Kesikli çizgi 1:1 ilişkisini temsil eder. Bu şeklin daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.

Figure 9
Şekil 9: Otomatik tahmin, doğrulanmış tahmin ve ilgili boyut çeşitliliği değerleriyle doğrulanmış tahmin (Sd) için günlük2 ölçeğindeki (x ekseni) bireysel boyutun göreli katkısını (y ekseni) temsil eden olasılık yoğunluğu fonksiyonları. (A-E) Seçilen doğal numuneler için olasılık yoğunluğu fonksiyonları (ince ve kaba alt örnekler birlikte) (n = 5); kırmızı çizgi otomatik tahmine, mavi çizgi doğrulanmış tahmine ve yeşil çizgi düzeltilmiş örneklere karşılık gelir (dokunan nesnelerin ayrılmasından sonra doğrulanır). (F) Doğrulanmış ve düzeltilmiş boyut çeşitliliği tahminlerinin karşılaştırılması; kesikli çizgi 1:1 ilişkisine karşılık gelir. Bu şeklin daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.

Figure 10
Şekil 10: Normalleştirilmiş biyohacim boyutu spektrumları (NBSS) ve tedaviler arasındaki NBSS eğimlerinin (μ) karşılaştırılması. (A-E) NBSS, günlük ölçeğindeki (x ekseni) her bir boyut sınıfının orta nokta değeri ile otomatik (kırmızı çarpılar), doğrulanmış (mavi üçgenler) ve düzeltilmiş (yeşil daireler) tahminleri için seçilen beş numunenin tarama karesi (y ekseni) başına normalleştirilmiş biyohacim arasındaki ilişkiyi temsil eder. boyut sınıflarında modal boyut sınıfından yukarı doğru hesaplanan eğimler (μ) (üçüncü boyut sınıfı dikey kesikli çizgi ile gösterilir). (F) Doğrulanmış numuneler üzerinde hesaplanan eğimlerin düzeltilmiş numunelerle karşılaştırılması (dokunan nesnelerin ayrılmasından sonra). Kesikli çizgi 1:1 ilişkisine, r2'ye karşılık gelir. Bu şeklin daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.

Ek Dosya 1: Hesaplamaları gerçekleştirmek için Matlab komut dosyası. Bu Dosyayı indirmek için lütfen tıklayınız.

Ek Dosya 2: Oluşturulan öğrenme kümelerinin çapraz doğrulama, geri çağırma ve 1 duyarlıklılığı. (A) Kategori başına 3 kategori ve 50 vinyet içeren ham öğrenme seti; (B) kategori başına 3 kategori ve 100 vinyet içeren ham öğrenme seti; (C) kategori başına 3 kategori ve 300 vinyet içeren ham öğrenme seti; (D) kategori başına 3 kategori ve 500 vinyet içeren ham öğrenme seti; (E) kategori başına 5 kategori ve 50 vinyet içeren ham öğrenme seti; (F) kategori başına 5 kategori ve 100 vinyet içeren ham öğrenme seti; (G) kategori başına 5 kategori ve 300 vinyet içeren ham öğrenme seti; (H) kategori başına 16 kategori ve 50 vinyet içeren orta seviye öğrenme seti; (I) kategori başına 16 kategori ve 100 vinyet içeren orta seviye öğrenme seti; (J) kategori başına 16 kategori ve 300 vinyet içeren orta seviye öğrenme seti; (K) kategori başına 20 kategori ve 50 vinyet içeren iyi öğrenme seti; (L) kategori başına 20 kategori ve 100 vinyet içeren iyi öğrenme seti; ve (M) kategori başına 20 kategori ve 300 vinyet içeren iyi öğrenme seti. Bu Dosyayı indirmek için lütfen tıklayınız.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

Gorsky ve ark. 2010 tarafından nehir makroomurgasızları için açıklanan metodolojinin uyarlanması, tatlı su makroomurgasızlarında topluluk büyüklüğü yapısını tahmin etmede yüksek sınıflandırma doğruluğuna izin verir. Sonuçlar, protokolün bir örneklemdeki bireysel boyut yapısını tahmin etme süresini yaklaşık 1 saate indirebileceğini göstermektedir. Bu nedenle, önerilen protokol, tatlı su ekosistemlerindeki bozulmaların etkisini değerlendirmek için makroomurgasız boyut spektrumlarının hızlı ve bütünleştirici bir biyogösterge olarak rutin kullanımını teşvik etmeyi amaçlamaktadır. Makroomurgasız boyut spektrumu, kıyı lagünlerinin ekolojik durumunu değerlendirmek için başarılı bir indeks olarak kullanılmıştır22. Protokolün geliştirilmesiyle birlikte, omurgasızlar üzerinde yoğun araştırmalar, büyük mekansal ve zamansal ölçekleri kapsayan saha izleme kampanyalarını mümkün kılmak için gerçekleştirilebilir.

Bu protokolün amacı, örneklenen topluluğun bireysel boyut dağılımını hızlı bir şekilde elde etmek olduğundan, taksonomiyi göz ardı ederek, burada önerilene benzer basit bir öğrenme seti oluşturulması önerilir. Daha fazla sayıda kategoriye sahip daha ince öğrenme setlerinin testleri, bir bütün olarak makroomurgasızlar için daha düşük hatırlama ve hassasiyet sağlar (Tablo 2) ve doğrulama adımı daha fazla zaman alıcıdır.

Otomatik tahmin, farklı örnekleme bölgelerinden 42 doğal alt numunenin doğrulanmış tahmini ile güçlü bir şekilde uyuşmaktadır, bu da otomatik moddaki yöntemin doğal örneklerdeki makroomurgasızların sayılması ve ölçülmesi için uygun olduğunu düşündürmektedir (Şekil 6). Dahası, NBSS'lerdeki otomatik ve doğrulanmış tahminler ile doğrusal teorik modele yüksek uyum arasındaki benzerlik, otomatik modun teorik ekolojik çalışmaları sürdürmek için umut verici bir yöntem olduğunu göstermektedir (Şekil 10).

Bu protokolün uyarlanması sırasında çeşitli sorunlarla karşılaşılmış ve bunlar farklı şekillerde çözülmüş veya en aza indirilmiştir. Makroomurgasız örnekleri tararken dikkate alınması gereken bir konu, koyu doymuş alanların ortaya çıkmasıdır. Bu nedenle, bu sorunu tespit etmek için işlenmiş, taranmış görüntüleri mümkün olan en kısa sürede kontrol etmek ve gerekirse taramayı tekrarlamak önemlidir. Bu sorun plankton33'ü tararken de bulunmuştur, ancak musluk suyu yerine etanol kullanımı ile artmaktadır. Musluk suyunun kullanılması tavsiye edilmez, çünkü% 70 etanol içinde korunan organizmalar yüzeyde sürüklenir. Cihaz seyreltilmiş etanol'e (% 5) dayanacak şekilde tasarlanmış olsa da, omurgasız örnekleri% 70 etanol ile korunur. Daha düşük etanol konsantrasyonlarıyla çalışmak da önerilmez, çünkü organizmalar rehidrasyon ve dehidrasyon işlemleriyle zarar görebilir37. Şiddetle tavsiye edilen önerilen çözüm, etanol ile yapılan her taramadan sonra tarama tepsisini birkaç kez tatlı suyla durulamaktır. Bu, görüntü arka planını değiştirebilecek çökeltilerin birikmesini önler ve tarama tepsisinin camını korozyondan korur.

Tespit edilen bir diğer sorun, belirli boyutlardaki bireylerin hafife alınması nedeniyle boyut spektrumunu değiştirebilen çoklu organizmalara sahip vinyetlerin varlığıdır. Bu çalışmada olduğu gibi, birden fazla nesneye sahip vinyet sayısı düşük olduğunda (<%10), birden fazla nesnenin varlığı, bu örneklerdeki boyut dağılımları ve NBSS'ler üzerinde küçük bir etkiye sahiptir (Şekil 9 ve Şekil 10). Bu, makroomurgasız topluluğunun temsili bir boyut yapısını elde etmek için, görüntü yeniden işlemenin yaklaşık 1,5 saat sürdüğü protokolün 1.5. adımına (dokunan organizmaların ayrılması) zaman ayırmanın gerekli olmadığını göstermektedir. Bunun yerine, protokolün 2.5. adımında (dokunan organizmaları veya agregaları ahşap bir iğne kullanarak ayırmak) zaman ayırmanız şiddetle tavsiye edilir, bu da çok daha az zaman alır (maksimum 30 dakika) ve otomatik mod30'da boyut dağılımlarının uygun bir şekilde tahmin edilmesini sağlar. Dokunan organizmaların sayısını azaltmanın bir seçeneği, tarama başına daha az organizma ile çalışmaktır, ancak bir numuneyi çok sayıda fraksiyonda taramak için harcanan zaman taahhüdü ve organizmaların toplanma olasılığı dikkate alınmalıdır. Başka bir çözüm, bu çalışmada yapıldığı gibi, örneklenen tüm organizmaları korumak yerine, laboratuvardaki organizmaları sıralarken temsili bir boyut spektrumunun hesaplanmasına izin verecek bir alt numuneyi korumak olacaktır. Numune başına düşen organizma sayısındaki azalma, organizmalara dokunma olasılığını azaltacaktır. Dahası, daha az kişi depolandığında, numune, özellikle liflerden kaçınılabiliyorsa, ayırmayı kolaylaştıran daha az döküntü içerir.

Otomatik sınıflandırma yönteminin gözlemlenen sınırlaması, kullanılan örneklerde mikrokabukluların (kategori: diğer makroomurgasızlar) düşük varlığı ile ilgilidir. Mikrokabukluların temsil edilmemesi, doğru sınıflandırmalarını etkileyebilir ve bu kategori için otomatik tahminin hassasiyetini sınırlayabilir. Bununla birlikte, bu çalışmanın temel amacı olan diğer kategoriler, enkaz ve makroomurgasızlar, yüksek hatırlama ve hassasiyet göstermektedir. Bu tarayıcı cihazını kullanmanın alternatifleri, su çerçevelerini tutmak için ortak bir tarayıcıyı uyarlamak, burada sağlananlar gibi numune işleme ve makine öğrenimi için açık kaynaklı kodları teşvik etmek ve organizmaları mikroskop altında bir kamerayla veya bir dizi kamerayla akı yoluyla ölçmek için kodlar yazmak olacaktır. Bu, birkaç kez 23,24,25,26,38,39,40 olarak yapılmıştır, ancak önerdiğimiz yöntem, diğer sistemlerle kontrol edilmesi zor olan karşılaştırılabilir boyut tahminleri elde etmek için tarama parametrelendirmesini düzenler. Ayrıca, önerilen protokol ve tarama cihazı kullanıma hazır, açık kaynaklı ve deniz mezozooplankton topluluğunda zaten kurulmuştur. Genel olarak, bu protokolün uyarlanması, tatlı su makroomurgasızlarının boyut yapısını verimli bir şekilde elde etmek ve tatlı su biyodeğerlendirmesi için boyut metriklerinin potansiyelini test etmek için bu otomatik görüntüleme yöntemini kullanmak için umut verici bir yol göstermektedir.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

Yazarlar potansiyel rakip çıkarlar olmadığını beyan ederler.

Acknowledgments

Bu çalışma İspanya Bilim, İnovasyon ve Üniversiteler Bakanlığı tarafından desteklenmiştir (hibe numarası RTI2018-095363-B-I00). CERM-UVic-UCC üyeleri Èlia Bretxa, Anna Costarrosa, Laia Jiménez, María Isabel González, Marta Jutglar, Francesc Llach ve Núria Sellarès'e makroomurgasız alan örneklemesi ve laboratuvar sıralamasındaki çalışmaları için ve David Albesa'ya örnek taramasında işbirliği yaptıkları için teşekkür ederiz. Son olarak Josep Maria Gili'ye ve Institut de Ciències del Mar'a (ICM-CSIC) laboratuvar tesislerinin ve tarayıcı cihazının kullanımı için teşekkür ederiz.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Beaker Labbox Other containers could be used
Dionized water Icopresa  8420239600123 To dilute the ethanol
Funnel Vitlab 41094
Glass vials 8 ml Labbox SVSN-C10-195 1 vial/subsample
ImageJ Software  Free access Version 4.41o/ Image processing software
Large frame Hydroptic  Provided by ZooScan 24.5 cm x 15.8 cm
Monalcol 96 (Ethanol 96) Montplet 1050JE001
Plankton Identifier Software Free access Version 1.2.6/ Automatic identification software
Sieve Cisa 26852.2 Nominal aperture 500µ and nominal aperture 0,5 cm
Tweezers Bondline B5SA Stainless, anti-magnetic, anti-acid
VueScan 9 x 64 (9.5.09) Software Hydroptic Version 9.0.51/ Sacn software
Wooden needle Any plastic or wood needle can be used
Zooprocess Software  Free access Version 7.14/Image processing software
ZooScan  Hydroptic 54 Version III/ Scanner

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Birk, S., et al. Three hundred ways to assess Europe's surface waters: An almost complete overview of biological methods to implement the Water Framework Directive. Ecological Indicators. 18, 31-41 (2012).
  2. Basset, A., Sangiorgio, F., Pinna, M. Monitoring with benthic macroinvertebrates: advantages and disadvantages of body size descriptors. Aquatic Conservation: Marine and Freshwater Ecosystems. 14, S43-S58 (2004).
  3. Reyjol, Y., et al. Assessing the ecological status in the context of the European Water Framework Directive: Where do we go now. Science of the Total Environment. 497-498, 332-344 (2014).
  4. Brown, J. H., Gillooly, J. F., Allen, A. P., Savage, V. M., West, G. B. Toward a metabolic theory of ecology. Ecology. 85 (7), 1771-1789 (2004).
  5. Woodward, G., et al. Body size in ecological networks. Trends in Ecology & Evolution. 20 (7), 402-409 (2005).
  6. Sprules, W. G., Barth, L. E. Surfing the biomass size spectrum: Some remarks on history, theory, and application. Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences. 73 (4), 477-495 (2016).
  7. White, E. P., Ernest, S. K. M., Kerkhoff, A. J., Enquist, B. J. Relationships between body size and abundance in ecology. Trends in Ecology & Evolution. 22 (6), 323-330 (2007).
  8. Quintana, X. D., et al. A nonparametric method for the measurement of size diversity with emphasis on data standardization. Limnology and Oceanography - Methods. 6 (1), 75-86 (2008).
  9. Blanchard, J. L., Heneghan, R. F., Everett, J. D., Trebilco, R., Richardson, A. J. From bacteria to whales: Using functional size spectra to model marine ecosystems. Trends in Ecology & Evolution. 32 (3), 174-186 (2017).
  10. Petchey, O. L., Belgrano, A. Body-size distributions and size-spectra: Universal indicators of ecological status. Biology Letters. 6 (4), 434-437 (2010).
  11. Emmrich, M., et al. Geographical patterns in the body-size structure of European lake fish assemblages along abiotic and biotic gradients. Journal of Biogeography. 41 (12), 2221-2233 (2014).
  12. Arranz, I., Brucet, S., Bartrons, M., García-Comas, C., Benejam, L. Fish size spectra are affected by nutrient concentration and relative abundance of non-native species across streams on the NE Iberian Peninsula. Science of the Total Environment. 795, 148792 (2021).
  13. Vila-Martínez, N., Caiola, N., Ibáñez, C., Benejam, L. l, Brucet, S. Normalized abundance spectra of the fish community reflect hydropeaking on a Mediterranean large river. Ecological Indicators. 97, 280-289 (2019).
  14. Benejam, L. l, Tobes, I., Brucet, S., Miranda, R. Size spectra and other size-related variables of river fish communities: systematic changes along the altitudinal gradient on pristine Andean streams. Ecological Indicators. 90, 366-378 (2018).
  15. Sutton, I. A., Jones, N. E. Measures of fish community size structure as indicators for stream monitoring programs. Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences. 77 (5), 824-835 (2019).
  16. Murry, B. A., Farrell, J. M. Resistance of the size structure of the fish community to ecological perturbations in a large river ecosystem. Freshwater Biology. 59, 155-167 (2014).
  17. Townsend, C. R., Thompson, R. M. Body size in streams: Macroinvertebrate community size composition along natural and human-induced environmental gradients. In Body Size: The Structure and Function of Aquatic Ecosystems. Hildrew, A. G., Raffaelli, D. G., Edmonds-Brown, R. , Cambridge University Press. Cambridge, UK. (2007).
  18. Gjoni, V., et al. Patterns of functional diversity of macroinvertebrates across three aquatic ecosystem types, NE Mediterranean. Mediterranean Marine Science. 20 (4), 703-717 (2019).
  19. Pomeranz, J. P. F., Warburton, H. J., Harding, J. S. Anthropogenic mining alters macroinvertebrate size spectra in streams. Freshwater Biology. 64 (1), 81-92 (2019).
  20. García-Girón, J., et al. Anthropogenic land-use impacts on the size structure of macroinvertebrate assemblages are jointly modulated by local conditions and spatial processes. Environmental Research. 204, 112055 (2022).
  21. Demi, L. M., Benstead, J. P., Rosemond, A. D., Maerz, J. C. Experimental N and P additions alter stream macroinvertebrate community composition via taxon-level responses to shifts in detrital resource stoichiometry. Functional Ecology. 33 (5), 855-867 (2019).
  22. Basset, A., et al. A benthic macroinvertebrate size spectra index for implementing the Water Framework Directive in coastal lagoons in Mediterranean and Black Sea ecoregions. Ecological Indicators. 12 (1), 72-83 (2012).
  23. Ärje, J., et al. Automatic image-based identification and biomass estimation of invertebrates. Methods in Ecology and Evolution. 11 (8), 922-931 (2020).
  24. Raitoharju, J., et al. Benchmark database for fine-grained image classification of benthic macroinvertebrates. Image and Vision Computing. 78, 73-83 (2018).
  25. Lytle, D. A., et al. Automated processing and identification of benthic invertebrate samples. Journal of the North American Benthological Society. 29 (3), 867-874 (2010).
  26. Serna, J. P., Fernández, D. S., Vélez, F. J., Aguirre, N. J. An image processing method for recognition of four aquatic macroinvertebrates genera in freshwater environments in the Andean region of Colombia. Environmental Monitoring and Assessment. 192, 617 (2020).
  27. Gorsky, G., et al. Digital zooplankton image analysis using the ZooScan integrated system. Journal of Plankton Research. 32 (3), 285-303 (2010).
  28. Marcolin, C. R., Schultes, S., Jackson, G. A., Lopes, R. M. Plankton and seston size spectra estimated by the LOPC and ZooScan in the Abrolhos Bank ecosystem (SE Atlantic). Continental Shelf Research. 70, 74-87 (2013).
  29. Silva, N., Marcolin, C. R., Schwamborn, R. Using image analysis to assess the contributions of plankton and particles to tropical coastal ecosystems. Estuarine, Coast and Shelf Science. 219, 252-261 (2019).
  30. Vandromme, P., et al. Assessing biases in computing size spectra of automatically classified zooplankton from imaging systems: A case study with the ZooScan integrated system. Methods in Oceanography. 1-2, 3-21 (2012).
  31. Naito, A., et al. Surface zooplankton size and taxonomic composition in Bowdoin Fjord, north-western Greenland: A comparison of ZooScan, OPC and microscopic analyses. Polar Science. 19, 120-129 (2019).
  32. García-Comas, C., Picheral, E. Zooprocess/Plankton Identifier protocol for computer assisted zooplankton sorting. , Available from: https://manualzz.com/doc/43116355/zooprocess—plankton-identifier-protocol-for (2013).
  33. Picheral, E. ZooSCAN: Manual to scan and process samples. Quantitative Imaging Platform of Villefranche sur Mer (PlQv). , Available from: http://www.hydroptic.com/assets/uploads/files/documentations/ae4e0-zooscan_user_manual.pdf (2020).
  34. Protocolo de muestreo y laboratorio de fauna bentónica de invertebrados en ríos vadeables. CÓDIGO: ML-Rv-I-2013. Ministerio de Agricultura, Alimentación y Medio Ambiente. , Available from: https://www.miteco.gob.es/es/agua/temas/estado-y-calidad-de-las-aguas/ML-Rv-I-2013_Muestreo%20y%20laboratorio_Fauna%20bent%C3%B3nica%20de%20de%20invertebrado_%20R%C3%Ados%20vadeables_24_05_2013_tcm30-175284.pdf (2013).
  35. García-Comas, C., et al. Prey size diversity hinders biomass trophic transfer and predator size diversity promotes it in planktonic communities. Proceedings of the Royal Society Biological Sciences. 283 (1824), 20152129 (2016).
  36. García-Comas, C., et al. Mesozooplankton size structure in response to environmental conditions in the East China Sea: How much does size spectra theory fit empirical data of a dynamic coastal area. Progress in Oceanography. 121, 141-157 (2014).
  37. Marquina, D., Buczek, M., Ronquist, F., Lukasik, P. The effect of ethanol concentration on the morphological and molecular preservation of insects for biodiversity studies. PeerJ. 9, 10799 (2021).
  38. Bell, J. L., Hopcroft, R. R. Assessment of ZooImage as a tool for the classification of zooplankton. Journal of Plankton Research. 30 (12), 1351-1367 (2008).
  39. Colas, F., et al. The ZooCAM, a new in-flow imaging system for fast onboard counting, sizing and classification of fish eggs and metazooplankton. Progress in Oceanography. 166, 54-65 (2018).
  40. Bachiller, E., Fernandes, J. A., Irigoien, X. Improving semiautomated zooplankton classification using an internal control and different imaging devices. Limnology and Oceanography Methods. 10 (1), 1-9 (2012).

Tags

Çevre Bilimleri Sayı 191
Riverine Makroomurgasızlarının Topluluk Boyut Yapısını Belirlemek için Otomatik Görüntü İşleme
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Gurí, R., Arranz, I., Ordeix,More

Gurí, R., Arranz, I., Ordeix, M., García-Comas, C. Automatic Image Processing to Determine the Community Size Structure of Riverine Macroinvertebrates. J. Vis. Exp. (191), e64320, doi:10.3791/64320 (2023).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter