Methodenartikel

Kombinierte Anwendung von Technetium-99m-Schwefelkolloid und blauem Farbstoff zur Erkennung von Sentinel-Lymphknoten bei Brustkrebs im Frühstadium

DOI:

10.3791/69027

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19. Dezember 2025

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1Department of Nuclear Medicine, The First Affiliated Hospital, Zhejiang University School of Medicine, 2Department of Breast Surgery, The First Affiliated Hospital, Zhejiang University School of Medicine

In diesem Artikel

Zusammenfassung

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Dieser Artikel beschreibt ausführlich das Protokoll der Sentinel-Lymphknotenkartierung (SLN) mit kombinierter Anwendung von Technetium-99m-Schwefelkolloid (99mTc-SC) und Methylenblau, einschließlich der Herstellung von 99mTc-SC, Medikamenteninjektion, Bildaufnahme und -rekonstruktion, Methylenblau-Kartierung und intraoperativer Lokalisierung von SLNs.

Zusammenfassung

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Die Sentinel-Lymphknotenbiopsie (SLNB) ist das Standardverfahren für die Stadieneinteilung der axillaren Lymphknoten bei Brustkrebspatientinnen, und ihre Anwendung hat in den vergangenen Jahrzehnten eine unnötige axillare Lymphknotendissektion (ALND) bei Brustkrebs im frühen Stadium verhindert. Eine genaue Lokalisierung von Sentinel-Lymphknoten (SLNs) trägt dazu bei, die Erfolgsrate von SLNB zu verbessern. Die Dual-Tracer-Technik (Radiokolloid plus blauer Farbstoff) für SLN-Kartierung verbessert die Identifikationsrate im Vergleich zu Single-Tracer-Methoden erheblich. Das am weitesten verbreitete Radiokolloid ist 99mTc-SC, und Methylenblau wird häufig in der visuellen Kartierung verwendet. Frühere Studien haben jedoch gezeigt, dass die Identifikationsrate der SLN-Bildgebung stark variiert, was eng mit dem Vorbereitungsprozess und der Erfahrung des Bedieners zusammenhängen kann. Die Standardisierung des SLN-Mapping-Protokolls ist entscheidend, um die Identifikationsrate zu maximieren und falsch-negative Ergebnisse zu minimieren. Dieser Artikel bietet einen detaillierten Prozess mit 99mTc-SC kombiniert mit Methylenblau für die SLN-Kartierung bei Brustkrebs im Frühstadium, einschließlich Verfahren zur Herstellung von 99mTc-SC, Injektion, SLN-Bildaufnahme, Methylenblau-Kartierung und intraoperativer Lokalisierung.

Einleitung

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Beim Brustkrebs im Frühstadium treten nur eine Minderheit der Fälle mit einer metastaseren axillären Lymphknoten auf. Für diese Patienten bringt die axilläre Lymphknotendissektion (ALND) keine zusätzlichen Überlebensvorteile und kann zu schweren Komplikationen wie dem oberen Lymphödem 1,2 führen. Der Sentinel-Lymphknoten (SLN) ist definiert als der "First-Station"-Lymphknoten, der lymphatischen Abfluss aus dem Brusttumorerhält 3. Wenn der SLN keine Metastasen zeigt, ist die Wahrscheinlichkeit einer Metastase in nachgeschalteten Lymphknoten extrem gering4. Laut den Leitlinien von 2021 mit dem Titel Management of the Axilla in Early-Stadium Breast Cancer: Ontario Health (Cancer Care Ontario) und ASCO Guideline1 können Patienten mit negativen Sentinel-Lymphknotenbiopsieergebnissen (SLNB) ALND erspart bleiben, während Personen mit 1-2 metastatischen SLNs ALND unter bestimmten Bedingungen vermeiden können. Studien haben gezeigt, dass SLNB etwa 70 % der Brustkrebspatientinnen im Frühstadium von unnötigem ALND 5,6,7 verschont. Daher spielt die SLN-Detektion eine entscheidende Rolle bei der Bestimmung der Notwendigkeit von ALND und verbessert die lebensqualität der postoperativen Operationenerheblich.

Verschiedene Studien haben ultraschallgeleitete Lymphknotenbiopsie untersucht, um die metastasen der Knoten bei Brustkrebspatientinnen zu bestimmen, aber diese Methode ergibt eine hohe Falsch-Negativ-Rate (FNR) von 6,4 % bis 40,8 %. Darüber hinaus stellt die Anwesenheit eines erfahrenen Sonographen während der Operation erhebliche Herausforderungen für eine umfassende klinische Umsetzung dar. Eine Vielzahl von Tracern steht für SLN-Kartierung bei Brustkrebs 8,9,10, Radiokolloid- und/oder Blaufarbe, Fluorescein, Indokyaningrün (ICG) und Mitoxantronhydrochlorid-Injektion zur Verfügung. Tausch et al. berichteten eine Identifizierungsrate (IR) von 82 % ausschließlich mit blauem Farbstoff, 85 % mit Radiokolloid allein und 94 % bei der Verwendung von doppelten Tracern (Radiokolloid plus blauer Farbstoff)11. Eine Metaanalyse von 13 Studien zeigte vergleichbare IR für Radiokolloid (96 %) und blauen Farbstoff (96 %), während die Kombination 97 % erreichte. Die kombinierte Tracer-Verabreichung reduziert signifikant die Falsch-Negativ-Raten (FNR), wobei Radiokolloid-Only-Ansätze FNRs von 16 %–20,3 % gegenüber 5,2 %–10,8 % für duale Tracer 13,14,15,16,17 aufweisen. Fluorescein ist nicht unterlegen gegenüber 99mTc-SC und kosteneffektiver. Allerdings begrenzt die schlechte Gewebepenetration ihre Anwendung beim Nachweis tieferer SLNs18. ICG zeigt eine diagnostische Wirksamkeit, die mit 99 mTc-SC vergleichbar ist, was es besonders geeignet für Institutionen macht, denen die nuklearmedizinischen Ressourcenfehlen 19,20. Dennoch ist seine Wirksamkeit bei Patienten mit BMI > 30 oder zentral gelegenen Tumoren21 gering. Einige Studien haben bestätigt, dass die diagnostische Leistung der Mitoxantronhydrochlorid-Injektion ähnlich ist wie 99mTc-SC für SLN-Kartierung 8,10. Die begrenzte Anzahl der Studien erfordert jedoch weitere klinische Validierung.

Obwohl in den letzten Jahrzehnten viele Bildgebungsmittel zur Erkennung von SLNs verfügbar sind, empfehlen die Leitlinien dennoch die Kombination aus Radiokolloid und blauem Farbstoff zur SLN-Lokalisierung bei Brustkrebs, aufgrund ihrer hohen diagnostischen Wirksamkeit, umfangreicher evidenzbasierter medizinischer Unterstützung und minimaler schwerer Nebenwirkungen 1,20,22. Alternative Wirkstoffe sind Fluorescein oder ICG ohne Unterstützung durch eine nuklearmedizinische Abteilung. 99 mTc-SC ist das am häufigsten verwendete Radiokolloid. Im Vergleich zu anderen blauen Farbstoffen wird Methylenblau in den meisten Zentren Asienshäufiger verwendet, da es eine ähnliche SLN-Lokalisierungswirksamkeit wie Isosulfanblau oder Patentblau zeigt, aber kostengünstiger ist.

Die berichtete IR von SLN mit entweder Radiokolloid oder blauem Farbstoff allein variiert signifikant (von 69,8 % bis 90,8 %) zwischen den Studien und hängt stark von Verfahrensprotokollen und der Erfahrung des Bedienersab. Daher sind standardisierte Betriebsverfahren entscheidend, um eine konsistente IR sicherzustellen. Mehrere verschiedene Protokolle sind derzeit verfügbar, was die Standardisierungsbemühungen erschwert. Zuerst die Heizzeit während der Vorbereitung von 99 mTc-SC. Studien haben gezeigt, dass reduzierte 3-minütige Erwärmung die Syntheseeffizienz von 99 mTc-SC25 verbessern kann. 99 mTc-SC, hergestellt durch reduzierte 3-minütige Erhitzung, hatte eine vergleichbare radiochemische Reinheit (RCP) wie die Standard-5-Minuten-Erhitzung (beide >92 %) bei 0 und 6 Stunden26. Außerdem zeigte 99 mTc-SC bei 3 Minuten Erhitzung eine höhere Lymphknotenretention nach 24 Stundenund 27 Stunden. Daher halten wir das 3-Minuten-Heizprotokoll für überlegen. Zweitens werden periareoläre und peritumorale Injektionen bei der Verabreichung von 99 mTc-SC empfohlen. Studien zeigen, dass die periareoläre Injektion einen höheren IR für die axilläre SLN aufwies als die peritumorale Injektion (99,3 % gegenüber 91,1 %, P < 0,001)28. Die periareoläre Technik ist technisch einfacher und zeigt besondere Vorteile für nicht tastbare Tumore oder Läsionen im oberen äußeren Quadranten, hauptsächlich durch die Verhinderung des "Shine-Through"-Phänomens29. Zusätzlich deckt die periareoläre Injektion auf natürliche Weise den Lymphabfluss aus allen Brustquadranten ab, was möglicherweise die Fehlerkennungsrate von SLNs senkt und besonders vorteilhaft bei multifokalen Tumoren30,31 ist. Daher betrachten wir die periareoläre Injektion als vorteilhafter.

In diesem Artikel haben wir ein Dual-Tracer-Protokoll mit präoperativem 99mTc-SC (periareoläre Injektion) kombiniert mit intraoperativem Methylenblau (periareoläre Injektion) übernommen. 99 mTc-SC wurde mit einem reduzierten 3-minütigen Heizprotokoll vorbereitet.

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Protokoll

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Diese Studie wurde vom Clinical Research Approval Committee des First Affiliated Hospital, Zhejiang University School of Medicine [2025B] IIT Ethics Approval Nr. 0125, genehmigt. Von allen Probanden wurde eine schriftliche informierte Zustimmung eingeholt. Der gesamte Syntheseprozess muss in einer Abzugshaube durchgeführt werden. Die Bleiglasplatte der Haube schützt gegen Strahlung, während ihr Unterdruck-Luftstromdesign die Verbreitung radioaktiver Aerosole oder flüchtiger Stoffe verhindert und so das Einatmen durch das Personal verhindert. Entsorgen Sie Fläschchen, Spritzen und Nadeln in einem 99 mTc radioaktiven Abfallbehälter gemäß den einschlägigen Vorschriften. Andere Materialien sollten als normaler medizinischer Abfall behandelt werden. Gewährleisten Sie während des gesamten Prozesses den Strahlenschutz und die Privatsphäre der Patienten.

1. Patientenauswahl

HINWEIS: Laut den Richtlinien von 2021 mit dem Titel Management of the Axilla in Early-Stage Breast Cancer: Ontario Health (Cancer Care Ontario) und den ASCO-Richtlinien werden Brustkrebspatientinnen im Frühstadium, die eine SLN-Lokalisation benötigen, vom Chirurgenidentifiziert 1. Die SLN-Kartierung von 99 mTc-SC wurde 3–18 Stunden vor der Operation durchgeführt.

  1. Setzen Sie folgende Einschlusskriterien: (1) Brustkrebs im Frühstadium mit klinischen Axillar-Lymphknoten (ALNs) negativ (cN0). cN0 wird definiert als negative Ergebnisse bei klinischer Untersuchung und Bildgeben, oder ALN war pathologisch negativ durch ultraschallgeführte Nadelbiopsie. (2) Negatives ALN nach neoadjuvanter Therapie bei cN0-Patienten. (3) ALN-Metastase bestätigt durch Biopsie bei cN1-Patienten und klinisch negativ nach neoadjuvanter Therapie.
  2. Setzen Sie folgende Ausschlusskriterien: (1) Entzündlicher Brustkrebs. (2) Patienten mit metastasiertem ALN, bestätigt durch Biopsie ohne neoadjuvante Therapie. (3) Patienten mit positiver ALN-Metastase und dennoch positiv nach neoadjuvanter Therapie.

2. Vorbereitung von 99 mTc-SC

  1. Vorbereitungen vor der Kennzeichnung von 99mTc-SC erforderlich
    1. Vorbestellen Sie das Kit des Prodrugs mit drei Phiolen: Fläschchen A mit 2,0 mL 0,15 mol/L Salzsäure (HCl); Fläschchen B mit 2,0 mL einer Pufferlösung, bestehend aus 49,2 mg Natriumdihydrogenphosphat (NaH2PO4) und 15,8 mg Natriumhydroxid (NaOH); Fläschchen C, ein lyophilisiertes Produkt, das ein weißes, wasserlösliches Pulver enthält, das aus 2,0 mg Natriumthiosulfat (Na2S2O3), 2,3 mg Edetatdisodium (Na2EDTA) und 18,1 mg Gelatine besteht. Lagern Sie das Set in einem Kühlschrank mit 4 °C.
    2. Auftauen des Sets: Entferne es 1 Stunde vor der Medikamentenzubereitung, um Raumtemperatur zu erreichen.
    3. Bestellung von Technetium-99m am Tag der Bildgebung: Stellen Sie sicher, dass die Technetium-99m-Injektion innerhalb von 24 Stunden aus einem Mo-Tc-Generator elutiert wird und frei von Oxidationsmitteln ist.
    4. Zubereitung des Wasserbades: Füllen Sie das Wasserbad mit ausreichendem Wasser und erhitzen Sie es auf 100 °C, wobei der Siedezustand erhalten bleibt.
      HINWEIS: Das beordnete Natriumpertechnetat [99mTc] erfordert ausreichende Aktivität, um den Syntheseverlust auszugleichen, und für die Bestellung wird eine Aktivität von 185 MBq pro Patient empfohlen, mit einem Gesamtvolumen von 0,5–1 mL. Bei der Vorbereitung für mehrere Patienten sollte die Gesamtdosierung von 99 mTc entsprechend der Patientenzahl erhöht werden, mit einem Gesamtvolumen von höchstens 1 mL und einer radioaktiven Konzentration von maximal 18,5 GBq/mL.
  2. Beschriftungsprozess
    1. Bereiten Sie die 99mTc-SC-Injektion unter Strahlenschutzbedingungen vor, typischerweise in einer Abzugshaube. Unter aseptischen Bedingungen wird Natriumpertechnetat [99mTc] in das Fläschchen C gespritzt. Gründlich geschüttelt, um das lyophilisierte Pulver aufzulösen, und es 5 Minuten stehen lassen.
      HINWEIS: Führen Sie alle Operationen unter aseptischen Bedingungen durch und desinfizieren Sie vor jedem Entzug der Lösung. Wenn Desinfektionsabstüpfer mit Radionukliden kontaminiert sind, entsorgen Sie sie als radioaktiven Abfall. Stellen Sie sicher, dass beim Einspritzen von 99 mTc in die Kit-Fläschchen die Luft strikt ausgestoßen wird. Halte den Unterdruck in den Phiolen bis zum letzten Schritt der Entnahme der Lösung aufrecht.
    2. Entnehmen Sie 1,5 ml Lösung aus Fläschchen A und injizieren Sie es in das Reaktionsfläschchen. Gut rühren und weitere 5 Minuten stehen lassen, um Mischung D zu erhalten.
    3. Kochendes Wasserbad: Stellen Sie das Fläschchen mit Mischung D in das Wasserbad und erhitzen Sie es 3 Minuten lang (Abbildung 1A).
      HINWEIS: Die Heizzeit sollte 3 Minuten nicht überschreiten, da längere Erhitzung den Prozentsatz der Partikel < 0,2 μm 99mTc-SC25, 26, 27 erheblich verringern kann. Verwenden Sie eine Pinzette, um die Fläschchen nach dem Kochen zu handhaben, um Verbrennungen zu vermeiden.
    4. Mischung E vorbereiten: Entferne das Fläschchen mit Mischung D und lasse es 2–5 Minuten abkühlen. Dann entnehmen Sie 1,5 ml Lösung aus dem Fläschchen B und injizieren Sie es in das Fläschchen mit Mischung D. Gründlich mischen, um Mischung E zu erhalten. Verwenden Sie eine 5-ml-Spritze, um die gesamte Mischung E zu entnehmen.
    5. Filtration: Befestigen Sie einen speziellen Filter an der Spritze. Setze die Nadel wieder ein und führe sie in eine Vakuumflasche. Langsam Mischung E filtern, ohne Druck auszuüben, um die 99 mTc-SC Lösung zu erhalten (Abbildung 1B).
  3. Vorbereitung der letzten Injektion:
    1. Verwenden Sie eine 2-ml-Spritze, um die 99mTc-SC-Lösung zu entnehmen. Stellen Sie sicher, dass jeder Patient 37–55,5 MBq in einem Gesamtvolumen von 0,4–1,0 ml erhält, vorzugsweise nahe 0,1 mL pro Stelle, um Injektionsunbehagen zu minimieren. Nach dem Ziehen der Lösung wird die Nadel durch eine 4,5-Gauge-(26 G) Nadel zur Anwendung ersetzt.
      HINWEIS: Eine insgesamt injizierte Dosis von 37 MBq gilt allgemein als ausreichend32.

3. Qualitätskontrolle von 99 mTc-SC

HINWEIS: Ein kleiner Aliquot des radiopharmazeutischen Medikaments wird vor der Anwendung zur Qualitätskontrollprüfung in eine Spritze aspiriert.

  1. Physikalisch-chemische Eigenschaften
    1. Bestätigen Sie, dass die vorbereitete Injektion eine gelatinestabilisierte, sterile und pyrogenfreie kolloidale Suspension ist, die für intravenöse Verabreichung geeignet ist. Gemäß den Anforderungen der United States Pharmacopeia (USP)33 sollten Sie sicherstellen, dass der pH-Wert zwischen 4,5 und 7,5 liegt.
      HINWEIS: Der pH-Wert von 99 mTc-SC, der in dieser Studie synthetisiert wurde, betrug ~6,0.
  2. Radiochemische Reinheit (RCP)
    1. Führen Sie die Bestimmung der radiochemischen Reinheit (RCP) von 0-Stunden- und 6-Stunden-Proben sowohl aus den 3-Minuten- als auch 5-Minuten-Heizprotokollen gemäß den Anforderungen von USP33 durch.
      1. Entziehe 0,1 mL 99mTc-SC Injektion mit 3 Minuten Erhitzung und 5 Minuten Erhitzen bei 0 und 6 Stunden nach der Vorbereitung und verdünne sie dann entsprechend (ca. 1:10).
      2. Die verdünnten Injektionen werden mit einem 10-μL-Kapillarrohr auf einem chromatographischen Papierstreifen (25 mm × 300 mm) an einem Punkt etwa 20 mm von einem Ende entfernt eingesetzt und anschließend getrocknet.
      3. Mit 85 % Methanol als Zellphase entwickelt man das Chromatogramm mittels aufsteigender Chromatographie über einen geeigneten Zeitraum und trocknet.
      4. Bestimmen Sie die radioaktive Verteilung auf dem Chromatogramm durch Scannen mit einem radioaktiven Scanner. Berechnen Sie das RCP mit der Formel: RCP = 100 % - (% freies Pertechnetat).
        HINWEIS: Ein RCP-Wert von über 92 % wurde als akzeptabel angesehen (Abbildung 2). Wenn der RCP unter 92 % liegt oder ein anderer Qualitätskontrollparameter nicht den Standards entspricht, muss die Injektion bedingungslos neu vorbereitet und einer Requalifikationsprüfung unterzogen werden, bis alle Spezifikationen erfüllt sind.

4. Patientenvorbereitung und Verabreichung von 99 mTc-SC

  1. Bestätigen Sie die Patientenidentität, die Krankenaktennummer, die Diagnose und die präoperative Lokalisierung des Brusttumors (typischerweise vom Chirurgen markiert).
  2. Informieren Sie den Patienten über das Verfahren zur Kartierung des Sentinel-Lymphknotens (SLN), einschließlich möglicher Injektionsschmerzen, Injektionsstellen und Bildgebungszeit.
  3. Missen Sie die Radioaktivdosis von 99 mTc-SC vor der Injektion an jeden Patienten (Abbildung 3A), um eine angemessene Dosis zu gewährleisten, um eine hervorragende Bildgebung und möglichst geringe Strahlenschäden am Patienten zu erreichen. Stellen Sie sicher, dass jeder Patient eine insgesamt injizierte Dosis von 37 MBq in einem Gesamtvolumen von 0,4 mL32 erhält. Desinfizieren Sie die Haut mit jodierten Abstrichern und verabreichen Sie anschließend 99 mTc-SC per subkutaner Injektion im periareolaren Bereich (3, 6, 9 und 12 Uhr) der betroffenen Brust (Abbildung 3B).
  4. Üben Sie 5 Minuten lang Druck auf die Injektionsstelle mit einem sterilen Wattestäbchen aus. Nach der Hämostase sollten Sie die Patientin anweisen, eine sanfte Brustmassage durchzuführen, um den Lymphabfluss zu verbessern, und im Wartebereich auf die nächsteBildgebung 32 zu warten.
    HINWEIS: Während der Injektion von 99 mTc-SC verwenden Sie Bleischutzschilde, um die Strahlenbelastung zu verringern.

5. Bildaufnahme und Rekonstruktion

  1. Für die Bildaufnahme32 beginnen Sie die Bildgebung ~30 Minuten nach der Injektion (üblicherweise zwischen 20 und 40 Minuten) mit SPECT/CT.
    1. Bitten Sie den Patienten, eine liegende und laterale Dekubitusposition (die injizierte Seite neben dem Detektor) einzunehmen, mit abduktierten Armen und Händen in der Nähe des Kopfes.
    2. Verwenden Sie folgende planare Bildparameter: H-Modus, niedrigenergetischer hochauflösender (LEHR) Kollimator, 140-keV-Photopeak mit ±10%-Fenster, 256 × 256-Matrix, ZOOM 1,0, 300K-Zählungen, Sichtfeld vom supraklavikulen Bereich bis zum Diaphragma.
    3. Führen Sie sofort eine Tomo-Fusionsbildgebende Aufnahme durch, wenn SLNs auf der planaren Bildgebung visualisiert werden. Falls nicht, führen Sie eine verzögerte Bildgebung 1 Stunde nach der Injektion mit den folgenden Tomo-Fusionsbildparametern durch: LEHR-Kollimator, 140 keV Photopeak, ±10%-Fenster, 128 × 128-Matrix, ZOOM 1,0, 60 Projektionen (6°-Intervalle, 16 s/Bild). CT-Parameter: 120 kV, 150 mA, 2,5 mm Schnittdicke.
  2. Für die Bildrekonstruktion werden Bilder auf einer Arbeitsstation verarbeitet, um planare und fusionierte SPECT/CT-Datensätze zu erzeugen. Lokalisieren Sie SLNs auf verschmolzenen Bildern und messen Sie die Dimensionen der Knotenlänge.
  3. Wenn SLNs bei 99mTc-SC-Bildgebung nicht sichtbar sind, schließen zunächst korrigierbare Faktoren32 aus.
    1. Bestätigen Sie erneut mit dem Pflegepersonal, dass die Injektion subkutan im periareolären Bereich und nicht tief im Drüsengewebe verabreicht wurde (falls falsch, erneut 99mTc-SC injizieren).
    2. Prüfen Sie lokale Kompressionen an der Injektionsstelle, die den Lymphabfluss beeinträchtigen könnte. Falls vorhanden, lösen Sie die Kompression sofort und weisen Sie die Patienten an, die Brust sanft zu massieren, um den Lymphfluss zu fördern.
    3. Bei einigen Patienten mit langsamem Lymphabfluss wird die Bildungszeit auf 2 Stunden verlängert und, falls negativ, eine zusätzliche präoperative Bildgebende 2 Stunden vor der Operation, innerhalb von 24 Stunden nachder Injektion, durchgeführt. Wenn SLN nach diesen Schritten immer noch negativ ist, verwenden Sie Methylenblau36.

6. Intraoperative Methylenblaukartierung und SLN-Identifikation

  1. Am Tag der Operation (innerhalb von 24 Stunden nach radiopharmazeutischer Verabreichung): 1 ml Methylenblau in das subkutane Gewebe injizieren, in der periareolaren Position20,29 um 3,6,9,12 Uhr.
  2. Nach 10–15 Minuten werden blau gefärbte lymphatische Kanäle abgezeichnet, um SLNs zu lokalisieren.
  3. Bestätigen Sie SLNs mit einem Gamma-Detektionssystem (positives Signal: der heißeste Knoten und alle anderen heißen Knoten mit mehr als 10 % der Zählungen des heißesten Knotens).
  4. Entfernen Sie SLNs für die Frorenschnittanalyse und stellen Sie sicher, dass die endgültige chirurgische Behandlung von den pathologischen Ergebnissen des SLN geleitet wird.
    HINWEIS: Wenn die Dual-Tracer-Methode SLNs nicht lokalisieren kann, kann ein dritter Tracer, wie ICG, versucht werden. In den meisten Fällen kann jedoch die Ursache des bildgebenden Versagens Faktoren wie Metastasen der Lymphknoten, eine Lymphblockade oder eine Störung des Lymphabflusses durch eine vorherige Operationsein. Daher können zusätzliche SLN-Nachverfolgungsmethoden weiterhin versagen. Daher empfehlen die aktuellen Richtlinien in den meisten Fällen, mit einem ALND20,38 fortzufahren; die letztendliche Verantwortung für diese chirurgische Entscheidung liegt beim operierenden Chirurgen.

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Ergebnisse

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Wir haben erfolgreich 99 mTc-SC mit RCP > 92 % synthetisiert, die Kurve des RCP ist in Abbildung 2 dargestellt. Wir erhielten eine hochwertige SLN-Kartierung von 99mTc-SC zur Erkennung von SLNs bei Brustkrebspatientinnen im Frühstadium (Abbildung 4). Die Methylenblau-Kartierung war hilfreich für die schnelle Lokalisierung von SLNs während des Betriebs (Abbildung 5). Die SLNs wu...

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Diskussion

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In dieser Studie erzielte die kombinierte Anwendung von präoperativem 99mTc-SC und intraoperativem Methylenblau eine Identifikationsrate von 99,8 % für SLN, während Radiokolloid allein eine ähnlich hohe Rate von 99,1 % zeigte. So können Chirurgen allein mit Radiokolloid eine nahezu optimale SLN-Erkennungsrate erreichen. In Fällen, in denen die Radiokolloidkartierung fehlschlug, half Methylenblau jedoch bei der SLN-Detektion, was mit früheren SLN-Kartierungsstudien

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Offenlegungen

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Die Autoren haben keine Interessenkonflikte, die offengelegt werden müssen.

Danksagungen

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Diese Arbeit wurde von der Zhejiang Natural Science Foundation finanziert (Zuschuss Nr. LTGY23H180014); Zhejiang Programm für Medizin- und Gesundheitswissenschaften und -technologie (Fördernr. 2023KY694).

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Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
0,9 % KochsalzlösungChina Otsuka Pharmaceutical Co., Ltd.24a75B3Verdünnungslösung
Acrodisc-SpritzenfilterPALLPN46120,2 μ m Supor-Membran
Chromatografie-PapierCytiva09927854Für die Analyse der radiochemischen Reinheit
AbzugshaubeQingdao Qingdun Medical Technology Co., Ltd.20150710Strahlenschutz bei der Arzneimittelsynthese
Glasflecken-KapillareSinopharm Chemical Reagent Co., Ltd20250510Probe der Injektion für die radiochemische Reinheitsanalyse
FührschildSuzhou Hengkang Medical Devices Co., Ltd5mm PbStrahlenschutz bei der Injektion
Medizinische Einweg-Sterilisations-GummihandschuheSri Trang Gloves (Thailand) Public Company Limited  F840Schützt die Hände vor Kontamination.
MethanolHuzhou Shuanglin Chemical Technology Co., Ltd20251021Für die Analyse der radiochemischen Reinheit
MethylenblauJumpcan Pharmaceutical Co., Ltd.240812Intraoperative Methylen-Blue-Kartierung und SLN-Identifikation
MiniGita radioaktiver TLC-Dünnschicht-ScannerSepate Technology Co., LtDTLC für radiochemische Reinheit
  NadelJiangsu Kangbao Medical Equipment Co., Ltd.202407224,5-Spur (26 G)
Neoprobe Gamma-Detektionssystem (GDS)Mammotome2331609Erkennung intraoperativer Sentinel-Lymphknoten 
PH-TestpapierSinopharm Chemical Regent  Co.,LTD72002361Umfang: 1-14
SPECT/CTGE Health CareDiscovery NM/CT 670Bildaufnahme
  SpritzeZhejiang Longde Pharmaceutical Co., Ltd. 202404004, 2024120141 mL, 5 mL
Technetium-99MBeijing Atom High-Tech Co., Ltd.241020-111  Sie sollte innerhalb von 24 Stunden aus einem Mo-Tc-Generator eluiert werden und frei von Oxidationsmitteln sein.
Fläschchen ABeijing Shihong Pharmaceutical Co., Ltd.2410202,0 mL 0,15 mol/L Salzsäure (HCl)
Fläschchen BBeijing Shihong Pharmaceutical Co., Ltd.2410202,0 ml einer Pufferlösung, bestehend aus 49,2 mg Natriumdihydrogenphosphat (NaH2PO4) und 15,8 mg Natriumhydroxid (NaOH).
Fläschchen CBeijing Shihong Pharmaceutical Co., Ltd.241020Lyophilisiertes Produkt enthält ein weißes, wasserlösliches Pulver, das aus 2,0 mg Natriumthiosulfat (Na2S2O3), 2,3 mg Dinatriumätat (Na2EDTA) und 18,1 mg Gelatine besteht
Xeleris-ArbeitsstationGE Health CareBildgebungssoftwareVerarbeitung von Bildern zur Erzeugung von planaren und fusionierten SPECT/CT-Datensätzen, Lokalisierung von SLNs 

Referenzen

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
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