Dieses Verfahren demonstriert den transversalen Transport des Tibiakortex bei Ratten und ermöglicht so die Visualisierung und Analyse der Revaskularisation während einer Gliedmaßenischämie.
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Methodenartikel
Ein Rattenmodell des transversalen Transports des Tibialkortex zur Behandlung von Ischämie der unteren Extremitäten
* These authors contributed equally
In diesem Artikel
Zusammenfassung
Zusammenfassung
Der transversale Transport des Tibialkortex (TTT) ist eine aufkommende chirurgische Technik, die zur Förderung der Revaskularisation in ischämischen unteren Gliedmaßen eingesetzt wird. Dieses Video demonstriert ein reproduzierbares Rattenmodell der TTT, das die chirurgische Entstehung eines kortikalen Knochenfragments, das Transportprotokoll und postoperative Beurteilungen detailliert darstellt. Das Verfahren ermöglicht einen kontrollierten Aufwärts- und Abwärtstransport eines Knochenfragments, um angiogene Reaktionen zu stimulieren. Repräsentative Röntgenaufnahmen, die an den postoperativen Tagen 1, 7 und 12 aufgenommen wurden, sowie mikrovaskuläre Perfusionsbildgebung am Tag 19 nach der Euthanasie, zeigen eine klare Bewegung des Knochenfragments und eine verbesserte Gliedmaßenperfusion nach TTT.
Dieses Modell bietet eine praktische und reproduzierbare Plattform, um die molekularen Mechanismen, die der TTT-induzierten Angiogenese zugrunde liegen, zu untersuchen und potenzielle therapeutische Strategien für ischämische Erkrankungen zu evaluieren. Um dieses Modell zu erstellen, simulierten wir das klinische TTT-Verfahren bei Sprague-Dawley-Ratten, das drei Hauptoperationsschritte umfasst: Ligation der oberflächlichen Oberschenkelarterie, Erzeugung und Mobilisation eines kortikalen Knochenfragments sowie Anwendung eines maßgeschneiderten externen Fixators. Über 12 Tage hinweg wurde das Fragment allmählich vorwärts und dann rückwärts transportiert. Die Perfusionsbildgebung bestätigte eine verstärkte Gefäßbildung in der ischämischen Gliedmaße nach Abschluss des Transportzyklus. Insgesamt ahmt dieses standardisierte Rattenmodell klinische TTT-Verfahren eng nach und bietet ein wertvolles experimentelles System zur Untersuchung der Mechanotransduktion, Angiogenese und Gefäßregeneration bei ischämischen Gliedmaßenerkrankungen.
Einleitung
Ischämische Erkrankungen der unteren Gliedmaßen, wie Arteriosklerose obliterans (ASO), thromboangiitis obliterans (TAO) und diabetischer Fuß (DF), zeichnen sich durch eine eingeschränkte arterielle Durchblutung zu den unteren Extremitäten 1,2 aus. In den frühen Stadien erleben Patienten typischerweise intermittierende Claudicatio und Ruheschmerzen. Im Verlauf der Krankheit kann eine anhaltende Ischämie zu Gewebenekrose, Infektionen und in schweren Fällen zu einer Amputation der Gliedmaßeführen. Aktuelle Standardbehandlungen – darunter pharmakologische Therapien, endovaskuläre Eingriffe und offene chirurgische Eingriffe – zeigen oft nur begrenzte Wirksamkeit, insbesondere in fortgeschrittenen Stadiender Erkrankung.
Tibialkortex transversaler Transport (TTT) ist eine innovative therapeutische Strategie zur Behandlung verschiedener ischämischer Erkrankungen der unteren Extremitäten4. Diese Technik basiert auf der Ilizarov-Methode und der "Spannungs-Stress-Regel"5,6 und beinhaltet die Erzeugung eines mobilen kortikalen Knochenlappenfragments im Schienbein mittels Osteotomie. Anschließend wird eine kontinuierliche, langsame und kontrollierte Ablenkungskraft angewendet, um die Regeneration von Knochen, Blutgefäßen und dem umliegenden Weichgewebe anzuregen. Dieser regenerative Prozess erleichtert die Wiederherstellung der Mikrozirkulation und hilft, das Gleichgewicht der Sauerstoffversorgung im betroffenen Gliedmaß wiederherzustellen. Letztlich führt TTT zu einer verbesserten Blutperfusion und funktioneller Erholung in ischämischen Geweben7.
Konventionelle Gefäßrekonstruktionstechniken bei Ischämie der unteren Extremitäten können den Blutfluss in großen Arterien der Wade wiederherstellen, sind jedoch oft nicht wirksam bei der Revaskularisation kleinerer Arterien im Fuß oder bei der Förderung der Reparatur und Regeneration beschädigter Mikrogefäße, was deren Fähigkeit einschränkt, die Ischämie8 vollständig zu beheben. TTT übt kontinuierlich Traktion auf den Knochen und das umliegende Weichgewebe aus und induziert so die robuste Freisetzung von chemotaktischen Faktoren und Zytokinen9. Diese chemotaktischen Faktoren regulieren verschiedene Funktionen von Stammzellen und werden unter ischämischen Bedingungen reichlich in den Kreislauf ausgeschieden. Sie rekrutieren aktiv endogene Stammzellen an Verletzungsstellen und ermöglichen so die Gefäßreparatur und -regeneration, ohne eine direkte Stammzelltransplantation zu benötigen. Aufgrund dieser Vorteile hat sich TTT als vielversprechende therapeutische Strategie für Ischämie der unteren Gliedmaßen etabliert und wird zunehmend zur Behandlung verschiedener ischämischer Erkrankungen eingesetzt, die die unteren Extremitätenbetreffen.
Obwohl Kaninchen und Hunde häufig in der grundlegenden TTT-Forschung verwendet werden, schränkt das Fehlen geeigneter analytischer Werkzeuge für diese Arten mechanistische Untersuchungen ein. Im Gegensatz dazu bietet das Ratten-TTT-Modell eine größere Kompatibilität mit verfügbaren molekularen und bildgebenden Techniken, während es Praktikabilität und geringere Kosten beibehält, was es zu einer zugänglicheren und reproduzierbareren Plattform für mechanistische Studien macht. Bis heute hat jedoch keine Studie systematisch die Wirksamkeit von TTT in einem Rattenmodell der unteren Extremitätenischämie beschrieben oder bewertet.
Das Ratten-TTT-Modell erfordert aufgrund der kleinen Tibia-Größe und des dünnen Kortex verfeinerte mikrochirurgische Fähigkeiten, und sein Ablenkungsbereich ist durch die kortikale Dicke begrenzt. Diese praktischen Einschränkungen sollten bei der Bewertung der Eignung des Modells für bestimmte Forschungsumgebungen berücksichtigt werden.
In dieser Studie entwickelten wir ein rattenspezifisches TTT-Modell, indem wir die Kernstruktur und die operativen Prinzipien des klinischen tibialen transversalen Transportapparats replizierten. Das Verfahren wurde aus klinisch validierten Protokollen verfeinert, um Machbarkeit und Konsistenz bei Kleintieren sicherzustellen. Unser Ziel ist es, ein standardisiertes und reproduzierbares TTT-Modell der Ratten zu etablieren und zu validieren, das sich für die Untersuchung von Angiogenese und Mechanotransduktion bei ischämischen Gliedmaßenerkrankungen eignet.
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Protokoll
Alle Tierversuche wurden vom Tierethikkomitee des ersten angeschlossenen Krankenhauses der Guangxi Medizinischen Universität genehmigt (genehmigt Nr. 2025-E0642). Männliche Sprague-Dawley-Ratten (300–350 g) wurden im Tierforschungszentrum der Guangxi Medical University unter standardisierten Bedingungen untergebracht. Die Ratten erhielten regelmäßiges Futter und sauberes Trinkwasser ad libitum und wurden in einem 12-Stunden-Zyklus von künstlichem Licht/Dunkel gehalten. Die Tieranlage wurde bei einer kontrollierten Temperatur von 20–26 °C gehalten, mit einer relativen Luftfeuchtigkeit von 40 % bis 70 %. Alle chirurgischen Instrumente wurden vor der Anwendung gründlich sterilisiert. Detaillierte Informationen zu allen in dieser Studie verwendeten Reagenzien und Materialien finden Sie in Tabelle 1.
Die Euthanasie erfolgte durch intraperitoneale Injektion einer Überdosis von Natriumpentobarbital. Der Tod wurde durch das dauerhafte Stillstand von Herzschlag und Atmung, Pupillenerweiterung und das Ausbleiben einer Reaktion auf schädliche Reize bestätigt. Alle Verfahren wurden von geschultem Personal durchgeführt, um Tierbelastung zu minimieren, und das Euthanasieprotokoll wurde im Voraus vom Institutional Animal Care and Use Committee überprüft und genehmigt.
1. Externer Fixator für TTT
- Verwenden Sie eine verkleinerte, speziell entwickelte Version des klinischen Tibialkortex transversalen Transport-externen Fixators (TTT-EF), bestehend aus einer Knochenfragment-Traktionseinheit und einem externen Fixationsrahmen.
- Vertikale Mobilisierung beider Komponenten durch die Integration eines internen Schraubgewindemechanismus ermöglicht (Abbildung 1).
- Bohren Sie auf jeder Seite der Querschnitte sowohl der Traktionseinheit als auch des Fixierungsrahmens zwei Durchgangslöcher, um das Einführen von Kirschner-Drähten zu ermöglichen.
- Führen Sie die Kirschner-Drähte durch die vorgesehenen Löcher ein und sichern Sie sie seitlich mit sechseckigen Schrauben, um die Stabilisierung sicherzustellen.
- Verbinden Sie die Traktionskomponente des TTT-EF mit dem Knochenfragment mit 0,8-mm-Kirschner-Drähten.
- Verankern Sie die Fixationskomponente mit 1,0-mm-Kirschner-Drähten an den proximalen und distalen Enden der Tibia.
2. Chirurgischer Eingriff
- Führen Sie das TTT-Verfahren an 8 Wochen alten männlichen Sprague-Dawley (SD) Ratten durch. Betäuben die Ratten durch intraperitoneale Injektion von 0,35 mg/kg Natriumpentobarbital und 0,3 mg/kg Chloralhydrat.
- Bewerten Sie die anästhetische Wirkung durch Testen des Pedalrückzugsreflexes und des Hornhautreflexes. Überwachen Sie während des gesamten Eingriffs kontinuierlich die Vitalzeichen und die Tiefe der Anästhesie. Tragen Sie vor der Operation eine Augensalbe auf die Augen der Ratte auf, um die Hornhaut zu schützen, und folgen Sie den Richtlinien für die Verwendung von Labortieren.
- Rasieren Sie den Operationsbereich und geben Sie 0,5 % Lidocain, um postoperative Schmerzen zu minimieren.
- Machen Sie einen 10 mm langen Hautschnitt im rechten Leistenbereich mit einem Skalpell Nr. 11.
- Schneide die Faszie stumpf auf, um die oberflächliche Femoralarterie freizulegen.
- Isolieren Sie die Arterie zwischen dem Oberschenkelnerv und der oberflächlichen Oberschenkelvene mit einer ophthalmischen Zange. Ligate und durchschneide beide Enden der Arterie.
- Nähen Sie den Schnitt mit einer 4-0 resorbierbaren Naht an.
- Machen Sie mit einem Skalpell Nr. 11 einen vertikalen 15-mm-Schnitt am medialen oberen Schienbein.
- Trennen Sie das subkutane Gewebe und den darunterliegenden Muskel sorgfältig, um periostale Verletzungen zu vermeiden. Sezieren Sie vorsichtig das Weichgewebe, um die mediale Tibia-Oberfläche vollständig freizulegen.
- Umrisse den Bereich des Knochenfragments (8 mm × 4 mm) auf der medialen Schienbeinfläche mit einer chirurgischen Klinge. Bohren Sie dicht beieinander liegende Perforationen entlang der markierten Grenze mit einem 0,6-mm-Bohrer. Erstelle ein Knochenfensterfragment (8 mm × 4 mm) am oberen medialen Tibia.
- Implantieren Sie zwei 0,8 mm geschraubte Kirschner-Drähte in das Knochenfragment, 0,5 mm auseinander, um den Transport zu erleichtern. Verbinden Sie die Kirschner-Drähte mit dem TTT-EF und sichern Sie sie.
- Führen Sie zwei 1,0 mm dicke Kirschner-Drähte auf jede Seite des Fragments ein, die in den hinteren Kortex des Schienbeins eindringen.
- Assembleren und installieren Sie das TTT-EF.
- Führen Sie eine Osteotomie entlang der markierten Linien mit einer Augenschere durch.
- Heben Sie das Knochenfragment vorsichtig an, um die vertikale Beweglichkeit zu ermöglichen und so eine Markverletzung zu vermeiden.
- Bespülen Sie die Operationsstelle mit 10 % Povidon-Jod und anschließend steriler Kochsalzlösung.
- Nähen Sie den Schnitt in mehreren Schichten mit 4-0 absorbierbarer Naht.
- Buprenorphin (0,05 mg/kg) unmittelbar nach der Operation subkutan verabreichen. Dosieren Sie weiterhin alle 12 Stunden bis zu 3 Tage, um eine wirksame Analgesie zu gewährleisten.
3. Postoperative Überwachung
- Überwachen Sie die Tiere nach der Operation genau, um eine ordnungsgemäße Genesung sicherzustellen und potenzielle Komplikationen frühzeitig zu erkennen. Untersuchen Sie Tiere alle 6–8 Stunden während der ersten 48 Stunden postoperativ. Beurteile allgemeine Aktivität, Haltung, Pflegeverhalten, Nahrungs- und Wasseraufnahme sowie den Zustand des chirurgischen Schnitts.
- Führen Sie mindestens einmal täglich eine Überwachung vom postoperativen Tag 3 bis zu den Ablenkungs- und Konsolidierungsphasen durch. Bestätigen Sie eine ausreichende Genesung, indem Sie normalen Gehweg, stabiles Körpergewicht, regelmäßige Nahrungs- und Wasserzufuhr sowie das Fehlen von Wundausfluss, übermäßiger Schwellung oder Verhaltensanzeichen von Schmerzen überprüfen.
- Setzt die Analgesie bei Bedarf gemäß den institutionellen Richtlinien fort.
- Behandeln Sie Wundinfektionen (z. B. Erythem, Schwellungen, eitrigen Ausfluss) mit lokaler Wundversorgung und systemischen Antibiotika, nach veterinärärztlicher Empfehlung.
- Korrigieren Sie etwaige Lockerung oder Verschiebung des äußeren Fixators sofort unter kurzer Betäubung, um die Ausrichtung zu erhalten und eine genaue Ablenkung zu ermöglichen.
- Beurteilen und behandeln Sie umgehend mögliche Komplikationen. Bewerten Sie Tiere mit schweren Komplikationen, die Mobilität, Fütterung oder Wundheilung beeinträchtigen, in Absprache mit dem tierärztlichen Personal.
- Tiere human einschläfern, wenn sie vordefinierte humane Endpunktkriterien erfüllen.
4. Knochenfragmenttransportprotokoll
- Verwenden Sie den transversalen Transportfixator des Tibialkortex (TTT-EF), um postoperative Knochenfragmente zu transportieren.
- Setze Tag 1 nach der Operation als Latenzzeit.
HINWEIS: Manipulieren Sie das Knochenfragment während dieser Zeit nicht. - Starte die Aufwärtstransportphase am Tag 2. Das Knochenfragment werden alle 12 Stunden mit einer Geschwindigkeit von 0,5 mm für 5 aufeinanderfolgende Tage (Tag 2 – Tag 6) vorgeschoben. Pausieren Sie den Transportvorgang am Tag 7, um die Stabilisierung zu ermöglichen.
- Starte die Abwärtstransportphase am Tag 8.
- Ziehe das Knochenfragment alle 12 Stunden mit der gleichen Geschwindigkeit von 0,5 mm für 5 Tage (Tag 8 – Tag 12) zurück. Stellen Sie sicher, dass das Knochenfragment bis zum Ende von Tag 12 wieder an seine ursprüngliche Position zurückkehrt.
- Fahren Sie mit einer zweitägigen Konsolidierungsphase fort (Tage 13-14), ohne weiteren Transport.
- Entfernen Sie den externen Fixator am Ende der Konsolidierungsphase.
HINWEIS: Siehe Abbildung 2 für eine visuelle Zeitleiste des TTT-Transportverfahrens und des Bewertungsplans.
5. Bewertung
HINWEIS: Verwenden Sie bildgebende Techniken, um sowohl die Position des Knochenfragments als auch die Wiederherstellung des Blutflusses zu bewerten.
- Röntgenaufnahmen der unteren Gliedmaßen an den Tagen 1, 7 und 12 durchführen, um den Verlauf und die endgültige Position des transportierten Knochenfragments zu überwachen.
- Betäuben Ratten zu festgelegten Bildzeitpunkten mit 2,0 % Isofluran in Sauerstoff.
- Platzieren Sie jede Ratte auf eine temperaturbeständige Bildgeräteplattform, die mit einer Wärmepolster ausgestattet ist, um eine Unterkühlung während des Eingriffs zu verhindern.
- Überwachen Sie die Anästhesietiefe durch Beurteilung der Atemfrequenz und des Pedalreflexes, um eine stabile Immobilisierung sicherzustellen.
- Positionieren Sie die Gliedmaßen und den äußeren Fixator in einer standardisierten Ausrichtung über alle Tiere hinweg, um die Variabilität bei der Röntgenaufnahme zu minimieren.
- Machen Sie Röntgenaufnahmen, um die Verschiebung und Neupositionierung des Knochenfragments zu bestätigen.
- Führen Sie am 19. Tag postoperativ eine Gefäßperfusionsbildgebung durch, um die mikrovaskuläre Perfusion in der unteren Gliedmaße zu beurteilen.
- Euthanasieren Sie die Ratten und perfundieren Sie Kontrastmittel über die Oberschenkelarterie, um die Gefäßstruktur zu visualisieren.
- Legen Sie die eingeschläferten Ratten in eine standardisierte Rückenposition für eine konsistente Bildgebungseinrichtung.
- Vollständige Gefäßfüllung durch Perfundation des Kontrastmittels durch die Oberschenkelarterie unter konstanten Raumtemperaturbedingungen ermöglichen.
- Führen Sie Gefäßbildgebung durch, um die mikrovaskuläre Architektur und Perfusion zu beurteilen. Stellen Sie sicher, dass alle Proben einheitlich mit identischer Gliedmaßenausrichtung und Fixatorausrichtung ausgerichtet sind, um die Reproduzierbarkeit während der Bildgebungssitzungen zu unterstützen.
- Verwenden Sie die resultierenden Bilder, um die Wiederherstellung des Blutflusses und der Gefäßstruktur in den unteren Gliedmaßen zu bewerten.
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Ergebnisse
Abbildung 3 veranschaulicht das Verfahren zur Erstellung eines mit TTT behandelten Tiermodells der unteren Extremitätenischämie. In unseren Händen zeigte das Verfahren eine chirurgische Erfolgsquote von etwa 90 %. Die begrenzte Anzahl der Ausfälle war größtenteils auf technische Probleme zurückzuführen, wie etwa das Lockern des äußeren Fixators oder einen Bruch eines intraoperativen Knochenfragments, was eine anschließende Ablenkung unmöglich machte. Das Mode...
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Diskussion
Alle Verfahren mit Anästhesie und Operation wurden mit großer Aufmerksamkeit auf Tiersicherheit und institutionelle Tierpflegerichtlinien durchgeführt. Die Tiefe der Anästhesie wurde vor dem Schnitt mittels Pedalrückzug oder Hornhautreflextests bestätigt und während des gesamten Eingriffs regelmäßig überwacht. Ausreichende thermische Unterstützung (wie ein Heizkissen) wurde bereitgestellt, um Unterkühlung zu verhindern, und eine Augensalbe wurde aufgetragen, um die Hornhäute während läng...
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Offenlegungen
Die Autoren haben keine konkurrierenden Interessen zu deklarieren.
Materialien
| Name | Unternehmen | Katalognummer | Kommentare |
|---|---|---|---|
| Mikro-Transversal-Retraktor | Tianjin Xinzhong Medical Equipment Co., Ltd | A61B17/66 | Knochenfragment-Traktion durchführen |
| Kleiner Orthopädischer Bohrer | Yancheng Ruiao Technology Co. LTD | RA-II | Für die Tibia-Drilling Osteotomie |
| 0,6 mm Edelstahlbohrer | Changzhou Borche Medical Equipment Co., Ltd | - | Für die Tibia-Drilling Osteotomie |
| 0,8 mm Gewindetyp Kirschner-Draht | Changzhou Borche Medical Equipment Co., Ltd | - | Zur Befestigung von Knochenlappen und Retraktoren |
| 1,0 mm Gewindetyp Kirschner-Draht | Changzhou Borche Medical Equipment Co., Ltd | - | Zur Fixierung des Retraktors |
| Pentobarbitalnatrium | Shanghai Pharmaceuticals Holding Co., Ltd | - | Für betäubende Tiere |
| Allbusschlüssel | Changzhou Borche Medical Equipment Co., Ltd | - | Zum Betätigen von Schrauben |
| Buprenorphin | Shanghai Pharmaceuticals Holding Co., Ltd | Für Analgesie-Tiere | |
| MICROFIL | Flow Tech, Inc Co., Ltd | Angiographie der Tiere | |
| Isoflurane | Hebei Yipin Pharmaceutical Co., Ltd. | Zur Einleitung und Aufrechterhaltung der Inhalationsanästhesie | |
| Lidocain-Hydrochlorid (0,5 %) | Hebei Yipin Pharmaceutical Co., Ltd. | Wird zur lokalen Infiltration verwendet, um postoperative Schmerzen zu reduzieren und Gewebereizungen während chirurgischer Eingriffe zu minimieren |
Referenzen
- Jones, D. W., Farber, A. Review of the global vascular guidelines on the management of chronic limb-threatening ischemia. JAMA Surg. 155 (2), 161(2020).
- Levin, S. R., Arinze, N., Siracuse, J. J. Lower extremity critical limb ischemia: a review of clinical features and management. Trends Cardiovasc Med. 30 (3), 125-130 (2020).
- Aboyans, V., Chastaingt, L. What LEADs to the under-treatment of patients with lower-extremity artery disease. Eur J Prev Cardiol. 30 (11), 1090-1091 (2023).
- Liu, Z., Xu, C., Yu, Y., Tu, D., Peng, Y., Zhang, B. Twenty years development of tibial cortex transverse transport surgery in PR China. Orthop Surg. 14 (6), 1034-1048 (2022).
- Ilizarov, G. A. The tension-stress effect on the genesis and growth of tissues: part II. The influence of the rate and frequency of distraction. Clin Orthop Relat Res. 239, 263-285 (1989).
- Ilizarov, G. A. The tension-stress effect on the genesis and growth of tissues: part I. The influence of stability of fixation and soft-tissue preservation. Clin Orthop Relat Res. 238, 249-281 (1989).
- Chen, Y., et al. Proximal tibial cortex transverse distraction facilitating healing and limb salvage in severe and recalcitrant diabetic foot ulcers. Clin Orthop Relat Res. 478 (4), 836-851 (2020).
- Beckman, J. A., Schneider, P. A., Conte, M. S. Advances in revascularization for peripheral artery disease: revascularization in PAD. Circ Res. 128 (12), 1885-1912 (2021).
- Zhu, Y. L., Qu, L., Ye, Z. M. Tibial cortex transverse distraction for primary lymphoedema in the lower limb: a case report. J Orthop Transl. 25, 25-27 (2020).
- Yang, Y., et al. Tibial cortex transverse transport accelerates wound healing via enhanced angiogenesis and immunomodulation. Bone Joint Res. 11 (4), 189-199 (2022).
- Hasanpour, M., Mitricheva, E., Logothetis, N., Noori, H. R. Intensive longitudinal characterization of multidimensional biobehavioral dynamics in laboratory rats. Cell Rep. 35 (2), 108987(2021).
- Modlinska, K., Pisula, W. The Norway rat, from an obnoxious pest to a laboratory pet. eLife. 9, e50651(2020).
- Su, H., et al. Finite element analysis safety of tibial cortex transverse transport. Bone Joint Res. 14 (4), 281-291 (2025).
- Zhen, P., et al. Finite element analysis of biomechanical effects in rat tibia during tibial cortex transverse transport. Front Bioeng Biotechnol. 13, 1670040(2025).
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