Dieses Protokoll wurde von Lutz et al angepasst worden. 1
Ernte und Verarbeitung von Knochenmark
- Die Isolierung der Tibia und Femur: Euthanize des Spenders Maus und besprühen Sie die Beine mit 70% Ethanol. Fassen Sie den ersten Knöchel fest mit einer stumpfen Zange und fangen an, schneiden Sie die Haut und die zugrunde liegenden Muskulatur der Tibia freizulegen. Um eine Beschädigung des Knochens, langsam und parallel geschnitten, um das Schienbein, so dass das Kniegelenk intakt.
Zur Reinigung des Oberschenkelknochens, Immobilisierung des Kniegelenks durch Greifen mit einer stumpfen Zange. Entfernen Sie vorsichtig die Muskulatur mit einer scharfen Schere und einer gebogenen Pinzette. Weiter nach oben, bis das Hüftgelenk ausgesetzt ist und eine Schere zwischen dem Kopf des Oberschenkelknochens und des Hüftgelenks gelegt werden. Entfernen Sie die Knochen, indem zwischen Oberschenkel und Hüftgelenk und Ort in Phosphat-gepufferter Kochsalzlösung (PBS) auf Eis. - Entfernung von Knochenmark: Sauberkeit übrigen Muskulatur von den Knochen mit einer Schere und einer gebogenen Pinzette. Schneiden Sie die Epiphysen der einzelnen Knochen und suchen Sie das Zentrum Hohlraum. Mit einem 10 mL Spritze mit PBS geladen und ein 25G0.5 "Nadel, spülen Sie die Knochenmark in einem nicht-Gewebe beschichtete Petrischale.
- Die Verarbeitung von Knochenmark: Verwenden Sie die Gummi-Ende des Kolbens aus einer 1 ml Spritze mit dem Knochenmark in eine Single-Zellsuspension distanzieren (verwenden Sie ein nach oben und unten, nicht kratzen Bewegung). Sammeln Knochenmark in eine konische Falcon-Röhrchen, und spülen verbleibende Knochenmark mit PBS.
Kultur von dendritischen Zellen
- Die Zellen in DC Medien und zählen DC Vorläufern auf einer Zählkammer (Abbildung 1). Sie werden sehen, Zellen unterschiedlicher Größe, die Vorläufer der DC sind die größten und hellsten. Unterschiedlich zählen nur diese Zellen. Von zwei Oberschenkelknochen und zwei Unterschenkelknochen eines Wildtyp C57BL / 6 Mäuse (6-8 Wochen alt), sollten Sie zwischen 25-40 x 10 6 insgesamt DC-Vorstufen zu erwarten.

Abbildung 1
- Kultur-Zellen bei einer Dichte von 2 x 10 5 DC Vorläufern / mL in DC-Medien mit 40 ng / mL rekombinantem murinen GM-CSF ergänzt. Platte Zellen in nicht-Gewebe beschichtete Polystyrol Petrischalen.
Add media (Tag 3)
Zur Aktualisierung der Medien, die Hälfte des Gesamtvolumens von frischen Medien mit 40 ng / mL GM-CSF ergänzt.
Ersetzen Sie ein Drittel der Medien (Tag 6) und Reifung
Zur Aktualisierung der Medien, vorsichtig ein Drittel des Gesamtvolumens von Medien und ersetzen dieses Volumen mit frischem DC-Medien mit 40 ng / mL GM-CSF am Tag 6 der Kultur ergänzt.
Falls gewünscht, können dendritische Zellen zur Reifung mit Zytokinen oder Toll-like-Rezeptor-Liganden stimuliert werden. In dem Video wurden DCs durch Übernacht-Stimulation mit 5 ng / mL CpG gereift.
Ernte von dendritischen Zellen
DC Kultur abgeschlossen ist (Abbildung 2). Zellen sowohl in Suspension und locker auf die Platte geklebt werden. Anhaftenden Zellen kann durch Abkratzen der Schale mit einer Gewebekultur Schaber und Spülen mit PBS entfernt werden. Die Gesamtzahl der Zellen 5-8 fache während der einwöchigen Kultur und Differenzierung Zeitraum zu erhöhen, daher erwarten, 1-1,6 x 10 6 Zellen / ml zu ernten.

Abbildung 2
Reagenzien
- DC Medien
- RPMI-1640 Medium, ergänzt mit:
- 10% Fötales Rinderserum
- 100 IU / ml Penicillin
- 100 ug / ml Streptomycin
- 1% L-Glutamin
- 0,1% 2-Mercaptoethanol
- 1X nicht-essentiellen Aminosäuren
- 1X Natriumpyruvat
- Rekombinantes murines GM-CSF
- rmGM-CSF (PeproTech inc, New Jersey, Katalog-Nr. 315-03)