Chemische Trocknung: Biologische Probenvorbereitung für die Rasterelektronenmikroskopie (REM)

0 Ansichten4:17 Min. • April 30th, 2023

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- Beginnen Sie mit dem Dehydrieren und Trocknen einer fixierten Probe, um den Probenverzerrung zu reduzieren, der durch die Entfernung von Gasen und flüssigem Wasser bei dem reduzierten Betriebsdruck herkömmlicher Rasterelektronenmikroskope (REM) verursacht wird.

Um die Probe zu dehydrieren, waschen Sie sie mit steigenden Ethanolkonzentrationen in Wasser, bis 100 % Ethanol erreicht sind. Wiederholen Sie dann diesen Vorgang mit einem chemischen Trocknungsmittel in Ethanol, bis die Probe mit reinem Trocknungsmittel gewaschen wird. Übertragen Sie die Probe und das Trocknungsmittel in eine Verdunstungsschale. Decken Sie es mit minimalem zusätzlichem Trockenmittel ab und lassen Sie es über Nacht in einem Abzug trocknen.

Montieren Sie anschließend die vorbereitete Probe mit Kohleklebeband auf die Oberseite eines Mikroskopstumpfes. Tragen Sie schließlich Silberfarbe auf die Ränder des Stummels und dann vom Rand des Stummels auf jede der Proben auf, um die Ansammlung von überschüssigen Elektronen zu reduzieren, die zu unerwünschten Bildartefakten führen könnten.

In diesem Experiment werden Fruchtfliegen, Drosophila melanogaster, für die REM-Analyse mit dem Trocknungsmittel HMDS vorbereitet.

- Zur Zubereitung von Drosophila melanogaster tauchen Sie betäubte Fliegen 2 Stunden lang bei 4 Grad Celsius in 1 Milliliter Fixiermittel und stellen Sie sicher, dass sie vollständig untergetaucht sind.

Verwenden Sie eine Glaspipette, um das Fixiermittel zu entfernen. Waschen Sie die fixierte Drosophila-Probe in einem 1,5-Milliliter-Mikrozentrifugenröhrchen dreimal mit 1 Milliliter 0,1 molaren Phosphatpuffer pH 7,2 bei Raumtemperatur für 10 Minuten. Verwenden Sie eine Glaspipette, um jede Wäsche zu entfernen, und achten Sie darauf, die Probe nicht zu entfernen.

Anschließend wird die Probe in einem Mikrofuge-Röhrchen mit einem Volumen von 1 Milliliter unter Verwendung einer abgestuften Ethanolreihe für jeweils 10 Minuten dehydriert. Verwenden Sie eine Glaspipette, um jede Wäsche zu entfernen, und achten Sie darauf, die Probe nicht zu entfernen. Bewahren Sie die Probe im 1,5-Milliliter-Mikrozentrifugenröhrchen mit gerade genug 100 % Ethanol auf, um sie zu bedecken.

Um die Fliegen chemisch mit HMDS zu trocknen, ersetzen Sie zunächst die 100%ige Ethanollösung für 20 Minuten durch eine 1 bis 2 Lösung aus HMDS und 100% Ethanol. Ersetzen Sie dann die Lösung 20 Minuten lang durch eine 2 zu 1 Lösung aus HMDS und 100% Ethanol. Ersetzen Sie diese Lösung schließlich 20 Minuten lang durch 100 % HMDS und wiederholen Sie den Vorgang dann einmal.

Übertragen Sie die Probe, die sich in einem 1,5-Milliliter-Mikrozentrifugenröhrchen und HMDS befindet, in eine Einweg-Aluminium-Wiegeschale. Ersetzen Sie das 100 % HMDS durch gerade genug frisches 100 % HMDS, um die Probe abzudecken. Legen Sie die Probe in die Aluminiumschale direkt in einen chemischen Abzug, um sie mit einem losen Deckel, z. B. einer Box, zu trocknen, um zu verhindern, dass Schmutz auf die Probe fällt, und lassen Sie sie 12 bis 24 Stunden trocknen.

Um Drosophila zu montieren, beschriften Sie die Unterseite eines Aluminium-Montagestummels. Platzieren Sie die getrockneten Fliegen mit einer Präzisionspinzette in der gewünschten Position auf einer Carbon-Klebelasche, die an der Oberseite eines Stummels unter einem Präpariermikroskop befestigt ist. Tragen Sie silbernen leitfähigen Klebstoff um die Außenkanten der Stummel auf.

Verwenden Sie einen Zahnstocher, um die silberne Farbe mit den Fliegen zu verbinden, um die Leitfähigkeit sicherzustellen und sicherzustellen, dass die Farbe den gewünschten Bildbereich nicht berührt. Legen Sie die Stummel in eine Stichhalterbox. Und dann legen Sie die offene Stummelhalterbox in einen Exsikkator und lassen Sie die silberne Farbe mindestens drei Stunden trocknen.

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Zuletzt aktualisiert: 15 August 2026