Stereotaktische Injektion von Viren für eine stabile genetische Veränderung in einem Mausmodell

0 Ansichten4:12 Min. • August 29th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Beginnen Sie mit einer anästhesierten Maus mit einem freiliegenden Schädel in einem stereotaktischen Rahmen.

Senken Sie den Spritzenhalter, bis die Nadelspitze mit dem Bregma, einem Referenzpunkt des Schädels, ausgerichtet ist.

Lokalisieren Sie anhand der vorgegebenen stereotaktischen Koordinaten die ventrikulär-subventrikuläre Zone oder

V-SVZ, eine neurogene Nische, die hauptsächlich neurale Stammzellen oder NSCs enthält, und markieren Sie diese Region.

Entfernen Sie die Spritze und bohren Sie vorsichtig ein kleines Loch, um Hirnschäden zu vermeiden.

Füllen Sie eine sterile Spritze mit Viren, die das Transgen tragen, und positionieren Sie die Nadel über der Gehirnoberfläche.

Setzen Sie die Spritze wieder auf und senken Sie sie, bis die Spitze die innerste Oberflächenschicht des Gehirns berührt.

Dringen Sie in das Gehirn ein, um die V-SVZ zu erreichen, injizieren Sie das Virus langsam, halten Sie es kurz und ziehen Sie dann die Spritze zurück.

In der V-SVZ gelangt das Virus über die Membranfusion in NSCs. Seine RNA-Reverse wird in DNA transkribiert.

Diese DNA integriert sich dann in das NSC-Genom und ermöglicht so eine stabile genetische Modifikation von NSCs.

Nach der Narkose rasiert eine sechs bis acht Wochen alte Maus den Bereich zwischen ihren Ohren. Desinfizieren Sie anschließend die Haut mit einem Iodophor wie Jod, Povidon oder 70% Ethanol. Platzieren Sie dann das Tier in Bauchlage auf einem stereotaktischen Rahmen.

Fixieren Sie den Kopf vorsichtig mit den Ohrstangen und der Gaumenstütze des Geräts. Halten Sie die Maus auf ein Heizkissen, das auf 37 Grad Celsius eingestellt ist, und tragen Sie Augenschmiermittel auf die Augen auf.

Machen Sie als Nächstes einen 1 Zentimeter langen Schnitt auf der Kopfhaut und ziehen Sie die Haut vorsichtig zurück, um den Schädel freizulegen. Reinigen Sie die Knochenoberfläche vorsichtig mit einem sterilen Applikator mit Wattespitze und entfernen Sie jegliches restliches Gewebe. Montieren Sie danach die sterilisierte Spritze mit dem Spritzenhalter auf das stereotaktische Gerät. Positionieren Sie die Nadel auf dem Bregma und stellen Sie sicher, dass die Position 0 der dorsalen ventralen Achse an der Schädeloberfläche am Bregma liegt.

Bewegen Sie nun die Spritze auf die angegebenen x- und y-Koordinaten, markieren Sie dann die x-, y- und z-Zielkoordinaten in der Nonius-Skala als Injektionsstelle und markieren Sie den Knochen mit einem chirurgischen Markierungsstift.

Die Nonius-Skala ist ein genaues Messwerkzeug, das es uns ermöglicht, die stereotaktischen Koordinaten aus Bregma mit hoher Präzision zu bestimmen. Die 0 auf der Hauptskala markiert die Einheiten, und die Zahl, die an der Hauptskala ausgerichtet ist, bestimmt den Zehntelmillimeter.

Bewegen Sie anschließend die Spritze aus dem Arbeitsbereich weg. Bohren Sie vorsichtig ein Loch in den Schädel, ohne das Gehirn zu beschädigen.

Der Bohrer muss horizontal zur Schädeloberfläche verwendet werden, und es muss eine kontinuierliche Überwachung der Fortschritte durchgeführt werden, um das Bohren zu stoppen, sobald die Pialoberfläche freigelegt ist. Schädigen Sie nicht das darunterliegende Gehirn.

Laden Sie dann die Spritze mit einer scharfen, abgeschrägten 33-Gauge-Nadel mit 1 Mikroliter der Viruslösung. Positionieren Sie die Spritzennadel in einem 90-Grad-Winkel zur Gehirnoberfläche. Bewegen Sie die Spritze zurück zur Injektionsstelle und senken Sie sie, bis die Spitze die Pialoberfläche berührt und in das Gehirn eindringt.

Um die Schädigung des Hirngewebes durch übermäßigen Flüssigkeitsdruck zu minimieren, setzen Sie die Virussuspension langsam frei. Warten Sie nach der Injektion 5 bis 10 Minuten, um den Rückfluss der Virussuspension zu minimieren, bevor Sie die Spritze langsam zurückziehen.

09:06

Stereotaktische Injektion von microRNA-exprimierenden Lentiviren der Maus Hippocampus CA1 Region und Beurteilung der Behavioral Outcome

Ähnliche Videos

0 Aufrufe

11:28

Planung, Verpackung und Lieferung von hohen Titern CRISPR Retro und Lentiviren über stereotaktische Injektion

Ähnliche Videos

0 Aufrufe

10:21

Lentivirale vermittelte Produktion von transgenen Mäusen: eine einfache und hocheffiziente Methode für die direkte Untersuchung der Gründer

Ähnliche Videos

0 Aufrufe

04:15

Stereotaktische Mikroinjektion eines viralen Vektors zur Genmanipulation in einem Striatum eines Maus-Jungtiers

Ähnliche Videos

0 Aufrufe

03:58

Stereotaktische Injektion von viralen Vektoren für die Reprogrammierung von Gliazellen in einem Mausmodell

Ähnliche Videos

0 Aufrufe

04:17

Stereotaktische Virusinjektion zur gezielten neuronalen Geneditierung im Gehirn von Mäusen

Ähnliche Videos

0 Aufrufe

08:39

Stereotaktische Injektion eines viralen Vektors für Conditional Gene Manipulation im Maus-Rückenmark

Ähnliche Videos

0 Aufrufe

08:22

Stereotaktische Mikroinjektion von viralen Vektoren ausdrücken Cre-Rekombinase, um die Rolle der Zielgene in Cocaine konditionierte Platzpräferenz Studieren

Ähnliche Videos

0 Aufrufe

10:15

Intracerebroventricular Viral Injektion der Neonatal Maus Gehirn für anhaltenden und verbreiteten Neuronale Transduction

Ähnliche Videos

0 Aufrufe

07:54

Anwenden Stereotaktische Injektionstechnik zu genetischen Auswirkungen auf die Tier Behaviors Studie

Ähnliche Videos

0 Aufrufe

Zuletzt aktualisiert: 15 August 2026