Quantifizierung von bakteriellem Alginat mit einem Antikörper-basierten enzymgebundenen Immunsorbent-Assay

0 Ansichten3:20 Min. • September 26th, 2025

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Nehmen Sie eine Mikroplatte mit einer Probe, die Alginat enthält, ein schützendes Exopolysaccharid, das vom Bakterium Pseudomonas aeruginosa produziert wird.

Bereiten Sie eine serielle Verdünnung eines aus Alginat abgeleiteten Standards vor, um die Alginatkonzentration in der Probe zu quantifizieren.

Fügen Sie einen Beschichtungspuffer hinzu und inkubieren Sie, um die Haftung der Moleküle an der Well-Oberfläche zu erleichtern.

Waschen, um ungebundene Moleküle zu entfernen.

Inkubieren Sie mit einem Blockiermittel, um unspezifische Bindungsstellen zu maskieren.

Waschen und dann mit alginatspezifischen Primärantikörpern inkubieren.

Erneut waschen und dann mit enzymkonjugierten Sekundärantikörpern inkubieren, die auf die Primärantikörper abzielen.

Waschen und dann mit einem chromogenen Substrat inkubieren, das das Enzym oxidiert, um ein farbiges Produkt herzustellen.

Fügen Sie eine saure Lösung hinzu, die die Reaktion stoppt und die Farbe verbessert, um eine kolorimetrische Detektion zu ermöglichen.

Messen Sie mit einem Mikroplatten-Reader die Farbintensität.

Erstellen Sie eine Standardkurve aus den Intensitäten der Standardverdünnungen und stellen Sie die Probenintensität grafisch dar, um die Alginatkonzentration zu bestimmen.

Geben Sie mit einer Mikropipette 50 Mikroliter der gesammelten Probe auf eine unbehandelte 96-Well-Platte.

Geben Sie dann 50 Mikroliter ELISA-Beschichtungspuffer in die Vertiefungen. Inkubieren Sie die Platte zwei Stunden lang bei 37 Grad Celsius. Waschen Sie die Plattenvertiefungen mit einer Spritzflasche zweimal mit PBS-T, indem Sie die Vertiefungen füllen und dann durch Umdrehen der Platte entleeren.

Geben Sie mit einer Mikropipette 200 Mikroliter Blockierungspuffer in die Vertiefungen und inkubieren Sie über Nacht bei vier Grad Celsius. Am nächsten Tag den Teller wie zuvor zweimal mit PBS-T waschen. Geben Sie dann 100 Mikroliter verdünnten Primärantikörper in die Vertiefungen und inkubieren Sie ein bis zwei Stunden lang bei 37 Grad Celsius.

Waschen Sie die Plattenvertiefungen nach der Inkubation wie zuvor dreimal mit PBS-T. Geben Sie anschließend 100 Mikroliter verdünnten Sekundärantikörper in die Vertiefungen und inkubieren Sie ein bis zwei Stunden lang bei 37 Grad Celsius. Nachdem Sie die Platte erneut dreimal gewaschen haben, fügen Sie mit einer Mikropipette 100 Mikroliter TMB ELISA-Lösung hinzu.

Inkubieren Sie die Platte 30 Minuten lang bei Raumtemperatur im Dunkeln, indem Sie die Platte in eine Schublade legen oder in Folie einwickeln. Fügen Sie dann 100 Mikroliter Stopplösung hinzu. Verwenden Sie ein Plattenlesegerät, um den Außendurchmesser bei 450 Nanometern zu messen.

Erstellen Sie eine Standardkurve, indem Sie den OD450 der seriellen Verdünnungen bekannter Konzentrationen von d-Mannuronsäure messen. Wiederholen Sie die Messungen zweimal und extrahieren Sie eine lineare Gleichung. Berechnen Sie die Konzentration des Alginats in jeder Probe unter Verwendung der Standardkurve und dividieren Sie die Alginatkonzentration aus der linearen Gleichung durch OD600 , um die Gesamtmenge an Alginat pro OD600 zu erhalten.

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Zuletzt aktualisiert: 1 August 2026