Isolierung von antibiotikaresistenten Bakterien aus einer Wasserprobe für die molekulare Analyse

0 Ansichten3:16 Min. • September 26th, 2025

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Beginnen Sie mit einer Wasserprobe, die Bakterien im Wasser enthält, und filtern Sie sie, um Schmutz zu entfernen.

Das verdünnte Filtrat wird auf nährstoffarme Agarplatten überführt, die jeweils mit einem spezifischen Antibiotikum ergänzt werden. Filtrat verteilen und inkubieren.

Bakterien, die ein spezifisches Antibiotikaresistenz-Gen tragen, wachsen auf den entsprechenden Antibiotikaplatten und bilden Kolonien.

Zählen Sie die Kolonien, um die koloniebildenden Einheiten (KBE) zu bestimmen, die die Anzahl der antibiotikaresistenten Bakterien darstellen.

Wählen Sie aus jeder Platte eine einzelne Kolonie aus und suspendieren Sie sie in sterilem destilliertem Wasser.

Erhitzen Sie die Suspension, um die Zellen zu lysieren und intrazelluläre Inhalte freizusetzen, einschließlich bakterieller DNA, die das Antibiotikaresistenz-Gen enthält.

Zentrifugieren Sie die Röhrchen, um die Ablagerungen zu trennen und den Überstand mit der DNA zu sammeln.

Fügen Sie der extrahierten DNA Amplifikationsreagenzien hinzu.

Legen Sie die Röhrchen in einen Thermocycler und führen Sie das Programm aus, um eine bestimmte Region der bakteriellen DNA zu amplifizieren.

Die amplifizierte DNA ist bereit für die Sequenzanalyse zur Identifizierung des Antibiotikaresistenzgens.

Verarbeiten Sie die Wasserprobe aseptisch, indem Sie sie durch ein steriles Musselintuch filtrieren, um Partikel zu entfernen. Verdünnen Sie dann die gefilterte Wasserprobe für die weitere Analyse seriell. Um die Anzahl antibiotikaresistenter Bakterien zu bestimmen, geben Sie die Antibiotika separat in Röhrchen mit 20 Millilitern sterilem geschmolzenem R2A-Agar, der bei etwa 40 Grad Celsius modifiziert wurde.

Schwenken Sie, um sich gleichmäßig zu vermischen, und gießen Sie es auf sterile Petriplatten, bevor der Agar fest wird. Verteilen Sie 100 Mikroliter Bakteriensuspension auf die jeweiligen Antibiotikum-haltigen R2A-Agar-modifizierten Platten. Inkubieren Sie die Platten 48 Stunden lang bei 35 bis 37 Grad Celsius und bestimmen Sie dann die Keimzahl.

Um die DNA-Vorlage aus den Isolaten für die PCR vorzubereiten, wird mit einem sterilen Zahnstocher eine einzelne isolierte reine Kolonie des Isolats entnommen, die auf einer Petriplatte wächst. Suspendieren Sie die Bakterienkolonie in 100 Mikrolitern sterilem doppelt destilliertem Wasser in einem Mikrozentrifugenröhrchen und kochen Sie es in einem kochenden Wasserbad oder einem trockenen Bad für 10 Minuten bei 100 Grad Celsius. Die Suspension wird zwei Minuten lang bei 10.000 g zentrifugiert, um die Rückstände zu pelletieren, und der Überstand wird in ein frisches steriles Mikrozentrifugenröhrchen überführt, das als Roh-DNA-Matrize verwendet wird.

Um die V3-Region des 16S rRNA-Gens durch PCR zu amplifizieren, bereiten Sie 40 Mikroliter des Reaktionsgemisches in einem PCR-Röhrchen vor. Platzieren Sie das Röhrchen in den Thermoblock und führen Sie das entsprechende Programm im PCR-Thermocycler aus.

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Zuletzt aktualisiert: 15 August 2026