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Beginnen Sie mit einer mikrofluidischen Platte, die mit einem vorgewärmten Nährmedium gefüllt ist.
Befestigen Sie die Platte am Verteilersystem und versiegeln Sie das Setup. Treiben Sie das Medium durch die Kanäle, um Luftblasen zu entfernen.
Stellen Sie das Setup auf einen Mikroskoptisch und heizen Sie es vor, um eine Ausdehnung der Platte während der Bildgebung zu verhindern.
Entfernen Sie dann das Medium, führen Sie eine Bakterienkultur in die Zelleinlässe und ein stressinduzierendes Medium in die Lösungseinlässe ein.
Das stressauslösende Medium enthält ein Antibiotikum, das die Zellteilung stoppt, ohne eine Zunahme der Zellmasse zu hemmen.
Versiegeln Sie das System und initiieren Sie dann die Zellbeladung, um die Bakterien in die Kulturkammer der Platte zu übertragen.
Lokalisieren Sie mit Durchlicht ein Sichtfeld mit gleichmäßig verteilten Einzelzellen.
Injizieren Sie das stressauslösende Medium in die Kammer, um die Zellen dem Antibiotikum auszusetzen.
Nehmen Sie im Phasenkontrastmodus Zeitrafferbilder auf, um die Bildung länglicher filamentöser Zellen mit erhöhtem DNA-Gehalt zu beobachten, die durch die durch Antibiotika vermittelte Hemmung der Zellteilung verursacht werden.
Entfernen Sie zunächst die Konservierungslösung von der mikrofluidischen Platte und ersetzen Sie sie durch frisches, auf 37 Grad Celsius vorgewärmtes Medium, wie im Benutzerhandbuch der Mikrofluidik-Software beschrieben. Befestigen Sie die mikrofluidische Platte am Verteilersystem.
Klicken Sie in der mikrofluidischen Software auf die Schaltfläche Versiegeln, um die Platte mit dem Verteilersystem abzudichten. Klicken Sie danach auf die Schaltfläche Priming. Positionieren Sie die Mikrofluidikplatte mit dem Verteilersystem auf dem Mikroskoptisch und heizen Sie sie zwei Stunden lang bei 37 Grad Celsius vor, um eine Ausdehnung der mikrofluidischen Kammer zu vermeiden.
Versiegeln Sie die mikrofluidische Platte auf dem mikrofluidischen System, indem Sie auf die Schaltfläche Versiegeln klicken. Ersetzen Sie das Medium von Vertiefung acht durch 150 Mikroliter Kulturprobe und ersetzen Sie das Medium von Vertiefung eins bis fünf durch das gewünschte Medium, mit oder ohne das stressauslösende Reagenz. Verschließen Sie die mikrofluidische Platte und legen Sie sie auf den Mikroskoptisch.
Führen Sie in der mikrofluidischen Software den Zellladevorgang aus. Überprüfen Sie, ob die Beladung der Zellen zufriedenstellend ist, indem Sie unter dem Mikroskop im Durchlicht schauen. Fokussieren Sie vorsichtig im Durchlichtmodus und wählen Sie mehrere Sichtfelder aus, die isolierte Bakterien zeigen und nicht überfüllt sind, etwa 10 bis 20 Zellen pro 100 Quadratmikroliter.
Klicken Sie in der mikrofluidischen Software auf die Schaltfläche Benutzerdefinierte Sequenz ausführen und programmieren Sie dann die Injektion des stressauslösenden Mediums während 10 Minuten bei zwei PSI, gefolgt von der Injektion bei einem PSI für die gewünschte Dauer der Stressbehandlung. Führen Sie Mikroskopie-Bildgebung im Zeitraffermodus mit einem Bild alle 10 Minuten durch, wobei Sie bei Bedarf den Phasenkontrast im Durchlicht und eine 560-Nanometer-Anregungslichtquelle für das mCherry-Signal verwenden. Starten Sie gleichzeitig die mikroskopische Bildaufnahme und das mikrofluidische Injektionsprotokoll.