Inaktivierung von Bakterien mit lichtaktiviertem Flavin-Mononukleotid

0 Ansichten3:19 Min. • September 26th, 2025

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Beginnen Sie damit, ein pathogenes Bakterium in ein Röhrchen zu impfen, das ein flüssiges Medium enthält.

Inkubieren, um die Bakterienvermehrung zu fördern, und dann die Kultur in frische Röhrchen überführen.

Schleudern Sie die Zellen zu Pellets und entsorgen Sie den Überstand.

Resuspendieren Sie die Bakterienpellets in Pufferlösungen, die steigende Konzentrationen von Flavinmononukleotid (FMN), einem Photosensibilisator und einer Pufferlösung ohne FMN enthalten, um als Kontrolle zu dienen.

Mischen Sie den Röhrcheninhalt gründlich und geben Sie die Suspensionen in Glasröhrchen.

Setzen Sie die Röhren sichtbarem Licht aus, um FMN zu photoaktivieren, das mit molekularem Sauerstoff reagiert, um reaktive Sauerstoffspezies (ROS) zu erzeugen.

Die ROS schädigt bakterielle Zellbestandteile und verringert dadurch die Lebensfähigkeit der Bakterien.

Übertragen Sie die Probenaliquote auf feste Medien, verteilen Sie sie gleichmäßig und inkubieren Sie, damit überlebende lebensfähige Bakterien zu Kolonien heranwachsen können.

Quantifizieren Sie nach der Inkubation die Kolonien und berechnen Sie die prozentuale Verringerung der bakteriellen Lebensfähigkeit im Vergleich zur Kontrolle, um die dosisabhängige Wirkung von FMN zu beurteilen.

Impfen Sie eine Kolonie von Staphylococcus aureus in 10 Milliliter Lysogenbrühe in einem 15-Milliliter-Reagenzglas mit Schraubverschluss. Lassen Sie die Kultur bei 37 Grad Celsius für 16 Stunden in einem Shaker züchten. Übertragen Sie 0,5 Milliliter der Kultur in ein 1,5-Milliliter-Zentrifugenröhrchen.

Verdünnen Sie die Kultur auf eine optische Dichte von 0,5 bei 600 Nanometern, indem Sie sterilisiertes Wasser hinzufügen. Übertragen Sie dann 0,5 Milliliter der Kultur in ein 1,5-Milliliter-Zentrifugenröhrchen. Bei 14.000 g 10 Minuten zentrifugieren und den Überstand dekantieren.

Geben Sie einen Milliliter gepufferte FMN-Lösung zum Zellpellet und zum Vortex. Für die bestrahlte Kontrolle fügen Sie einen Milliliter Phosphatpuffer hinzu. Einen Milliliter bakterielle Zelllösung, die 30-mikromolares FMN und Phosphatpuffer enthält, in Glasröhrchen überführen.

Stellen Sie sie für eine Bestrahlung 30 Minuten lang unter violettes Licht bei 10 Watt pro Quadratmeter auf. Übertragen Sie dann einen Milliliter bakterielle Zelllösung mit 30, 60 und 120 mikromolaren FMN und Phosphatpuffer in Glasröhrchen. Bestrahlen Sie 120 Minuten lang mit blauem Licht bei 20 Watt pro Quadratmeter.

Bestrahlen Sie außerdem ein Röhrchen mit einem Milliliter 120-mikromolaren FMN für 60 Minuten. Nach der Bestrahlung werden 0,2 Milliliter der Reaktionslösung auf eine Luria-Agar-Platte gegeben. Verteilen Sie die Lösung mit einem L-förmigen Glasstab und inkubieren Sie sie über Nacht bei 37 Grad Celsius.

Berechnen Sie am nächsten Tag die Anzahl der lebensfähigen Keimzellen und die Inaktivierungsrate von Staphylococcus aureus.

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Zuletzt aktualisiert: 22 August 2026